肖亦辰 杨颖 马平 赵冬敏 章丽娇 刘青涛 杨婧 李银 刘宇卓 韩凯凯 黄欣梅

摘要：新型鹅星状病毒（goose astrovirus，GoAstV）感染引起的鹅痛风病，是近年严重危害我国养鹅业的传染病之一，给我国养鹅产业造成严重经济损失，快速准确诊断有助于更好地防控该病。为了建立一种鉴定新型GoAstV的一步法RT-PCR方法，根据新型GoAstV ORF2基因序列设计特异性引物，构建质粒标准品，并对引物用量和退火温度等反应体系和条件进行了优化。结果表明，该方法能特异性扩增新型GoAstV 512 bp基因片段，其他鹅常见病毒性病原扩增结果均为阴性，具有较高的特异性。敏感性试验结果提示，最小检测限量达4.54×102 拷贝/μL。此外，该方法重复性良好，应用所建立的方法对新型GoAstV临床样品进行检测，102份鹅泄殖腔拭子的阳性率为46.08%，24份痛风症状患病鹅内脏样本阳性率为91.70%。本研究建立的新型GoAstV一步法RT-PCR检测方法具有良好的特异性、敏感性和重复性，且操作简便、经济、快速，可用于新型GoAstV的临床鉴别诊断和流行病学调查。

关键词：新型鹅星状病毒;一步法RT-PCR;鉴别诊断;鹅痛风病;敏感性试验;临床样品检测

中图分类号：S855.3   文献标志码： A

文章编号：1002-1302（2022）02-0142-05

收稿日期：2021-05-06

基金项目：横向课题“雏鹅痛风病因确定和防控方法初探”。

作者简介：肖亦辰（1998—），女，陕西西安人，硕士研究生，主要从事家禽疫病防控研究。E-mail：1457747114@qq.com。

通信作者：黄欣梅，博士，副研究员，主要从事家禽疫病防控研究。E-mail：hxmrene@126.com。

2016年以来，我国东部主要养鹅地区暴发一种以内脏痛风为主要特征的急性传染病，给养鹅产业造成巨大经济损失[1-2]。该病主要影响21日龄以内雏鹅，患病雏鹅表现为精神沉郁、食欲减退、腹泻、四肢瘫痪，剖检可见心脏、肝脏、肾脏等内脏器官表面、胸腹膜及关节腔内存在大量白色尿酸盐沉积，死亡率为20%～50%。通过病原分离和动物回归试验，确定该病是由一种新型鹅星状病毒（goose astrovirus，GoAstV）感染引起。基因序列分析结果表明，近年引起鹅痛风的鹅星状病毒毒株（GD、AHQJ18、SDPY、JSHA和SD01）与以往从鸡、火鸡、鸭和鹅等家禽体内分离的禽星状病毒的基因组同源性为49.5%～67.7%，编码衣壳蛋白的ORF2基因核苷酸序列同源性仅为41.0%～59.0%，遗传距离较远，形成独立的进化分支[3-7]。

目前，尚无有效疫苗和药物预防或治疗新型GoAstV引起的鹅痛风病症。因此，早发现和准确诊断是预防该病流行和传播的重要手段。另外，含高蛋白的饲料引起的蛋白质代谢障碍、药物中毒引起的肾脏损伤也会导致血液中尿酸水平升高，引起鹅的痛风，需要注意与新型GoAstV感染引起的痛风鉴别诊断。经典的病毒分离及血清学诊断方法虽准确可靠，但存在费时、费力及对实验室条件和生物安全性要求高等缺点，无法满足临床诊断的需要。目前，已有文献报道检测新型GoAstV的荧光定量RT-PCR（qRT-PCR）方法[8-9]。尽管RT-PCR方法的灵敏度不如qRT-PCR，但RT-PCR方法扩增的片段较长，经测序后可用于基因型的确定和遗传进化分析，可广泛用于新型GoAstV的检测和流行病学调查。一步法RT-PCR检测方法将反转录和PCR扩增反应合并在一个反应管中一步完成，减少中间环节引入污染源的风险，不但节省时间，还可提高检测准确率。本研究根据新型GoAstV ORF2基因序列设计特异性引物，优化反应条件，建立了准确、灵敏、快速的新型GoAstV一步法RT-PCR检测方法，对新型GoAstV感染的快速诊断及有效防控具有重要意义。

1 材料与方法

1.1 病毒与细胞

新型鹅星状病毒AHQJ18株、坦布苏病毒JS804株（TMUV）、鹅细小病毒（GPV）、H9N2亚型禽流感病毒（H9 AIV）、鹅副黏病毒（GPMV）和鸡肝癌细胞系（LMH）等由江苏省农业科学院兽医研究所保存。

1.2 试剂

限制性内切酶BamHⅠ和XhoⅠ，购自宝生物工程（大连）有限公司;pEASY-T1载体，购自北京全式金生物技术有限公司;DNA/RNA提取试剂盒、小量提取质粒试剂盒、胶回收试剂盒等，购自爱思进生物技术（杭州）有限公司;一步法RT-PCR试剂盒、DNA Marker、DH5α感受态细胞等，购自南京诺唯赞生物科技有限公司。

1.3 引物设计与合成

参考GenBank已发表的新型GoAstV ORF2基因序列，应用 Primer Premier 5.0 软件设计了1 对检测引物，扩增片段长度为512 bp，上游引物为PF：5′-TCCACCGAACACGCCACTA-3′，下游引物为PR：5′-AGCCGATTCCTGAGTTCCGTT-3′，引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。

1.4 质粒标准品的构建

取200 μL新型GoAstV在LMH细胞上的培养物，采用RNA提取试剂盒提取病毒基因组RNA，使用特异性引物PF和PR进行RT-PCR扩增新型GoAstV ORF2基因部分片段，回收纯化PCR产物，克隆至pEASY-T1載体，转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，筛选阳性克隆，提取质粒，用限制性内切酶BamH Ⅰ和Xho Ⅰ进行双酶切鉴定，阳性质粒送南京金斯瑞生物科技有限公司测序鉴定。序列正确的阳性重组质粒即为质粒标准品，检测质粒浓度并计算质粒拷贝数。

1.5 一步法RT-PCR反应体系及条件的优化

1.5.1 引物浓度优化 以新型GoAstV基因组RNA为模板，在0.2 mL PCR管中加入以下反应组分：2×one step mix 12.5 μL，Enzyme mix 1.25 μL，上、下游引物（10 μmol/L）设置5个梯度，各分别加入0.1 μL、0.5 μL、1.0 μL、1.5 μL和2.0 μL，模板RNA 2.0 μL，无RNase 双蒸水加至总体积为25 μL，混匀，瞬时离心后置于PCR仪中。反应程序为：50 ℃ 反转录 30 min;94 ℃ 预变性 3 min;94 ℃ 30 s，55 ℃ 30 s，72 ℃ 40 s，共30个循环;最后72 ℃延伸7 min。反应完成后，取10 μL产物进行琼脂糖凝胶核酸电泳检测。

1.5.2 退火温度优化 筛选出最佳引物使用量后，固定反应体系及其他反应条件，对退火温度进行优化。设置50、52、54、56、58、60 ℃ 6个梯度退火温度，进行RT-PCR扩增。反应完成后，取10 μL产物进行琼脂糖凝胶核酸电泳检测。

1.6 特异性试验

取新型GoAstV细胞培养物、TMUV、GPV、H9 AIV和GPMV，分别提取RNA或DNA，同时设置空白LMH细胞和生理盐水为阴性对照，用建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法进行扩增，以评价该方法的特异性。

1.7 敏感性试验

将测算好质粒拷贝数的质粒标准品进行10倍倍比稀释，取4.54×108～4.54×100 拷贝/μL 9个浓度梯度作为模板，采用建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法进行扩增，以评价该检测方法的敏感性。

1.8 重复性试验

采用建立的一步法RT-PCR方法对4 份新型GoAstV阳性样品及正常LMH细胞进行3次重复检测，以评估该方法的重复性和稳定性。

1.9 临床样品的检测

对2020年6—9月间江苏常州金坛、沭阳地区102份16日龄左右扬州白鹅泄殖腔拭子样本，24份出现痛风症状患病鹅内脏样本，采用本研究建立的检测方法检测新型GoAstV核酸，以评估该方法的临床实用性。

2 结果与分析

2.1 质粒标准品的构建

分别提取新型GoAstV细胞培养物和正常LMH细胞RNA，以本研究设计的引物进行一步法RT-PCR扩增，进行琼脂糖凝胶核酸电泳检测。由图1可知，新型GoAstV细胞培养物在512 bp处可见单一的扩增条带，与预期片段大小相符，而正常LMH细胞无扩增条带。回收PCR产物，连接至克隆载体pEASY-T1，转化大肠杆菌DH5α，提取质粒后进行双酶切鉴定。由图2可知，琼脂糖凝胶核酸电泳检测显示酶切片段为500 bp左右，与预期大小相符。测序结果显示，所连片段与新型GoAstV AHQJ18株序列同源性为100%，表明新型GoAstV质粒标准品构建成功。采用核酸蛋白浓度检测仪测定重组阳性质粒浓度为221 ng/μL，计算得出其拷贝数为 4.54×1010拷贝/μL。

2.2 一步法RT-PCR反应条件优化

2.2.1 引物浓度优化 固定其他反应条件不变，对上、下游引物（浓度10 μmol/L）设置5个体积梯度，分别为0.1、0.5、1.0、1.5、2.0 μL，进行一步法 RT-PCR 扩增。由图3可知，当上、下游引物（10 μmol/L）各加入体积为1.0 μL及以上时，即可获得较高的扩增效率，条带无显著差异，因此确定引物最佳体积为1.0 μL。

2.2.2 退火温度优化 固定一步法RT-PCR反应体系，加入上、下游引物各为1.0 μL，在RT-PCR扩增时设置6个退火温度，分别是50、52、54、56、58、60 ℃，由图4可知，退火温度为54 ℃及以下时，目的条带亮度均较强，差异不显著，最终确定54 ℃为最佳退火温度。

2.3 特异性试验

利用建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法对新型GoAstV细胞培养物、坦布苏病毒（TMUV）、鹅细小病毒（GPV）、H9N2亚型禽流感病毒（H9 AIV）、鹅副黏病毒（GPMV），及空白LMH细胞和生理盐水进行检测。由图5可知，该方法仅对新型GoAstV可扩增出长度为512 bp的目的基因，而对TMUV、GPV、H9 AIV、GPMV以及空白LMH细胞和生理盐水的检测结果均为阴性，表明本研究建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法具有很好的特异性。

2.4 敏感性试验

将新型GoAstV质粒标准品从4.54×108 拷贝/μL开始做10倍倍比稀释至4.54×100 拷贝/μL，取每个稀释度样品分别作为模板进行一步法RT-PCR检测。由图6可知，该方法对新型GoAstV质粒标准品的最小检出量为4.54×102 拷贝/μL，表明本研究建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法具有

较高的敏感性。

2.5 重复性试验

用建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法对LMH正常细胞和4份新型GoAstV阳性样品进行3次重复性检验。由图7可知，3次重复检测均出现相同的结果，阳性样品均能扩增出相应条带，而LMH正常细胞未出现扩增条带，表明该方法具有良好的重复性和稳定性。

2.6 临床样品检测

采用建立的新型GoAstV一步法RT-PCR检测方法对2020年6—9月间江苏常州金坛、沭阳地区102份雏鹅泄殖腔拭子样本和24份出现痛风症状患病鹅内脏样本进行检测（图8）。检测结果显示，102份雏鹅泄殖腔拭子样本中有47份为阳性，阳性率为46.08%;24份出现痛风症状患病鹅内脏样本中有22份为阳性，阳性率为91.70%。对新型GoAstV阳性样品的扩增条带进行序列测定，证实目的条带均为新型GoAstV ORF2基因的特异性片段，表明本研究建立的新型GoAstV一步法RT-PCR检测方法可有效地对临床样品中的新型GoAstV进行快速检测，并具有良好的特异性和准确性。

3 讨论

2016年以来，由新型鹅星状病毒引起的以内脏痛风为主要特征的传染病在我国东部商品鹅养殖地区暴发，并迅速传播至山东、江苏、安徽、河北、遼宁、福建及广东等省，给我国养鹅产业造成了巨大的经济损失。该病主要发生于21日龄以内雏鹅，患病雏鹅精神沉郁、采食量下降、腹泻、四肢瘫痪，严重者死亡。剖检可见肝脏、心脏、肾脏、胸腹膜以及翅、腿关节内出现严重的白色尿酸盐沉积。作为一种新发传染病，目前还没有商品化疫苗和药物可用以预防或治疗该病，为最大程度减少养殖业损失，早发现和准确诊断显得尤为重要。

RT-PCR技术是一种比较成熟的核酸扩增技术，具有快速、简便、灵敏、特异性好和成本低等优点而被广泛应用于细菌、病毒及寄生虫等病原检测。且该方法可与基因测序相结合，用于进一步的遗传进化分析。新型GoAstV为RNA病毒，检测时需先将病毒基因组RNA反转录为cDNA再进行PCR扩增，在此过程中易增加污染风险，造成假阳性。本研究建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法减少了操作和加样步骤，降低了引入污染源的风险，不但节省时间，还可提高检测准确率。

本研究根据新型GoAstV ORF2基因序列设计1对特异性引物进行一步法RT-PCR扩增，获得的特异性片段克隆入pEASY-T1载体构建质粒标准品。为获得最佳检测效果，对反应体系及反应条件进行优化，确定浓度为10 μmol/L的上、下游引物加入量为1.0 μL，最佳退火温度为54 ℃。该方法仅对新型GoAstV可扩增出特异性条带，对其他鹅常见病毒性病原及正常LMH细胞的扩增结果均为阴性，表明该方法具有很好的特异性。新型GoAstV一步法RT-PCR方法的最小检测限量为4.54×102 拷贝/μL，具有较高的敏感性，该方法同时还具有良好的重复性。应用建立的新型GoAstV一步法RT-PCR方法对临床样本进行检测，结果显示，102份鹅泄殖腔拭子的阳性率为46.08%，24份痛风症状患病鹅内脏样本阳性率为91.70%。

因此，本研究建立的一步法RT-PCR方法可用于临床鹅泄殖腔拭子和脏器样本，及鹅胚和细胞培养物中新型GoAstV的检测，灵敏度高，特异性强，并且快速准确、操作简便，可作为新型GoAstV临床鉴别诊断和流行病学调查的有力工具，为新型GoAstV感染的病原监测和有效防控提供技术支撑。

参考文献：

[1]Zhang Y，Wang F，Liu N，et al. Complete genome sequence of a novel avastrovirus in goose[J]. Archives of Virology，2017，162（7）：2135-2139.

[2]Yang J，Tian J，Tang Y，et al. Isolation and genomic characterization of gosling gout caused by a novel goose astrovirus[J]. Transboundary and Emerging Diseases. 2018，65：1689-1696.

[3]章丽娇，黄欣梅，刘 飞，等. 新型鹅星状病毒AHQJ18株的分离鉴定[J]. 江苏农业学报，2019，35（5）：1262-1264.

[4]姜晓宁，田家军，杨 晶，等. 导致雏鹅痛风新型鹅星状病毒的分离鉴定[J]. 中国兽医学报，2018，38（5）：871-877，894.

[5]Zhang X，Ren D，Li T，et al. An emerging novel goose astrovirus associated with gosling gout disease，China[J]. Emerging Microbes and Infections，2018，7（1）：152-159.

[6]徐 蓉，陆明青，张海涛，等. 一株雏鹅痛风型鹅星状病毒的分离鉴定及其生物学特性研究[J]. 南京农业大学学报，2019，42（6）：1124-1132.

[7]Yuan X，Meng K，Zhang Y，et al. Genome analysis of newly emerging goose-origin nephrotic astrovirus in China reveals it belongs to a novel genetically distinct astrovirus[J]. Infection，Genetics and Evolution，2019，67：1-6.

[8]邱思語，徐 蓉，郭远奎，等. 鹅肾型星状病毒SYBR Green Ⅰ 实时荧光定量PCR方法的建立[J]. 中国兽医科学，2020，50（3）：300-306.

[9]Wan C，Chen C，Cheng L，et al. Specific detection of the novel goose astrovirus using a TaqMan real-time RT-PCR technology[J]. Microbial Pathogenesis，2019，137：103766.