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淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方介导铁调素干预AD细胞模型ADAM10表达的研究*

2021-01-06马冬雪高维娟刘真一张红军王嘉颖董贤慧

中国病理生理杂志 2020年12期
关键词:淫羊葛根孵育

马冬雪,高维娟,刘真一,张红军,王嘉颖,董贤慧△

(1河北中医学院,河北省心脑血管病中医药防治研究重点实验室,河北石家庄 050091;2承德医学院病理生理学教研室,河北承德 067000)

脑部出现老年斑是阿尔茨海默病(Alzheimer disease,AD)的主要病理学标志[1],其核心成分是β-淀粉样蛋白(amyloid-β peptide,Aβ)[2],Aβ 是淀粉样前体蛋白(amyloid precursor protein,APP)水解代谢产生的[3]。去整合素金属蛋白酶10(a disintegrin and metalloproteinase 10,ADAM10)被认为是APP 的非淀粉样剪切中重要的分泌酶[4],ADAM10的表达变化影响着AD的发生发展。

AD 患者的脑铁水平异常升高[5-6],异常增高的脑铁启动机体级联放大机制,最终导致神经元死亡[7]。降低增高的脑铁是防治AD 的一个有效方法。铁调素(hepcidin,HAMP)是近年来发现的铁调节激素,但HAMP 是否通过调节AD 患者脑铁代谢干预APP淀粉样代谢通路,目前尚未见报道。

中医认为AD 发病是以肾虚精亏、气血不足为本,痰瘀互结、浊毒内生为标的本虚标实之证。根据中医“标本兼治”的治疗原则,治疗AD 应补肾健脾,益气养血以培其本,化痰、祛瘀、解毒以治其标。本课题组前期研究显示,应用淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方可以有效上调AD 模型小鼠HAMP 的表达[8],缓解小鼠脑组织铁超载,下调AD 小鼠模型Aβ的表达和减少SP 的沉积[9],但其具体机制仍然不明确。因此,本课题组以Aβ25-35诱导HT22细胞为AD细胞模型,采用免疫荧光、qPCR 和Western blot 方法检测淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方介导HAMP 对小鼠海马神经元细胞系HT22 细胞APP 水解中关键酶ADAM10 表达的影响,为揭示淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方防治AD的内在机制提供参考资料。

材料和方法

1 细胞株

小鼠海马神经元细胞系HT22 由河北省心脑血管病中医药防治研究重点实验室提供。

2 药品、试剂及仪器

黄芪甲苷、淫羊藿苷和葛根素由南京泽朗医药科技有限公司提供。DMEM 高糖培养液购自Gibco;Triton X-100 购自北京索莱宝科技有限公司;胎牛血清购自浙江天杭生物科技股份有限公司;ADAM10抗体购自Abcam;OPTI-MEM Amyloid Precursor®I(1×)购自Gibco;Lipofectamine®3000 购自Invitro⁃gen;Aβ25-35购自Sigma;CCK-8 试剂盒购自庄盟国际生物基因科技有限公司。

3 方法

3.1 HT22 细胞的培养、分组及处理 HT22 细胞复苏后,加入含10%胎牛血清的高糖DMEM 完全培养液放入细胞培养瓶中,置于37℃、5% CO2、饱和湿度的培养箱,待细胞融合至80%~90%时即可传代。取形态良好、对数生长期的HT22 细胞用于后续实验。

Aβ25-35配制方法:将1 mg Aβ25-35溶于943 μL 三蒸水,配成1 000 μmol/L 母液,置于37℃培养箱孵育7 d,使之老化,分装,于-20℃冻存。用Aβ 的活性片段Aβ25-35诱导HT22细胞建立AD细胞模型。

确定淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方作用浓度和沉默效果后,将HT22 细胞以每孔2×105个的密度接种于6 孔板,培养12 h 待细胞贴壁后随机分为7组:正常对照组(不添加任何药物的等体积的完全培养液)、Aβ 组(加入Aβ25-35处理HT22 细胞24 h 建立AD 细胞模型)、RNAi 组(HT22 细胞转染HAMPsiRNA-3)、Aβ+RNAi 组(加入Aβ25-35处理HT22 细胞24 h 后转染HAMP-siRNA-3)、Aβ+TCM 组(加入Aβ25-35处理HT22细胞24 h后加入淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方处理24 h)、RNAi+TCM 组(HT22 细胞转染HAMP-siRNA-3 24 h 后加入淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方处理24 h)和Aβ+RNAi+TCM 组(加入Aβ25-35处理HT22 细胞24 h 后转染HAMP-siRNA-3 24 h,然后加入淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方处理24 h)。根据课题组前期实验证明,以淫羊藿、黄芪、葛根提取的有效组分复方(淫羊藿苷、黄芪甲苷、葛根素成分按照3∶2∶2的比例用药)。

3.2 CCK-8 法检测淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方的细胞毒性 HT22 细胞以每孔2.5×103个的密度接种于96 孔板,用含10%胎牛血清的DMEM 完全培养液进行培养,培养24 h后加入不同浓度的淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方,3 种药物的比例按其单体的物质的量浓度确定为3∶2∶2,最终于药物复方组分中取一定的量用于后续实验。实验分组为对照组和中药组。中药组设定药物剂量分别为7.4、14.8、22.2、29.6 和37 mg/L,作用24 h 后,观察细胞存活情况,在每孔中加入10 μL CCK-8 检测试剂,避光,在37℃、5% CO2培养箱中孵育2 h,在多功能微孔板读数仪中测定A450值,并计算细胞存活率。细胞存活率(%)=(实验组A值−空白对照组A值)/(对照组A值−空白对照组A)×100%。另外根据研究,Aβ25-35理想造模浓度和处理时间分别为40 μmol/L和24 h[10]。

3.3HAMP基因沉默

3.3.1 siRNA 的设计、合成及转染 siRNA 由中洪博元生物技术有限公司提供,根据HAMP基因在Gen-Bank 中的序列设计合成HAMPsiRNA,如表1所示。

表1 HAMP siRNA序列Table 1.The sequences of HAMP siRNA

将HT22 细胞接种在6 孔板上,待细胞融合度达到70%时,进行转染,具体操作按Lipofectamine®3000 转染试剂操作说明书进行。细胞分为:正常对照(control)组、NC(转染siRNA 阴性对照)组、Si-1(转染HAMP-siRNA-1)组、Si-2(转染HAMP-siRNA-2)组和Si-3(HAMP-siRNA-3)组。转染48 h 后做Western blot和qPCR验证。

3.3.2 qPCR和Western blot检测HAMP表达水平按照试剂盒提取各组RNA,并反转录为cDNA。引物序列见表2。PCR 条件为:95℃30 s→(95℃5 s→60℃30 s)×40 个循环。待测样品的目的基因相对表达量用2−ΔΔCt表示。

表2 qPCR引物序列Table 2.Sequences of the primers for qPCR

提取各组细胞总蛋白,BCA 法进行蛋白定量。电泳后转移到0.45 μm 的PVDF 膜上,5%牛奶封闭2 h,加入兔抗β-actin 和兔抗HAMP,4℃孵育过夜,洗膜。滴加相应Ⅱ抗,室温孵育1 h,洗膜显影。采用ImageJ软件分析测量灰度值。

3.4 免疫荧光、Western blot 和qPCR 检测ADAM10的表达 将盖玻片用多聚赖氨酸包被,分组处理后的细胞种植于包被好的玻片上,制备细胞爬片,然后进行造模及给药处理。细胞爬片采用4%多聚甲醛固定20 min;1% Triton X-100 破膜,Ⅰ抗孵育过夜;PBS 洗去Ⅰ抗后,滴加相应Ⅱ抗,避光室温孵育50 min;PBS 洗去Ⅱ抗后,滴加DAPI 染液,避光室温孵育10 min,封片。每张片子随机选取3个视野进行拍照,采用Image-Pro Plus 6.0软件进行分析。

细胞处理后,收集各组处理后的HT22 细胞,使用蛋白提取试剂盒提取总蛋白并采用BCA法测定蛋白浓度。取适量蛋白样品加入上样缓冲液,100℃煮沸5 min 使其变性。离心(1 000×g,10 min)取上清液进行SDS-PAGE。将电泳后分离的蛋白转移至PVDF膜,5%脱脂奶粉溶液室温封闭2 h。TBST 清洗,加入相应的Ⅰ抗,4℃过夜。TBST 清洗后加入Ⅱ抗,室温下孵育2 h。TBST 清洗后ECL 显影,于凝胶成像系统扫描拍照。采用ImageJ软件分析测量灰度值。

细胞处理后,收集各组处理后的HT22 细胞,使用PrimeScriptTMreagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)试剂盒提取总RNA,反转录获得cDNA,以cDNA 为模板进行扩增。实时荧光定量PCR 采用TaKaRa 的TB GreenTMPremix Ex TaqTMⅡ(Tli RNase H Plus)试剂盒进行,并用荧光定量PCR 仪进行扩增和监测,用2−ΔΔCt表示待测样品目的基因相对表达量。ADAM10和内参照GAPDH的引物序列见表3。

表3 qPCR引物序列Table 3.Sequences of the primers for qPCR

4 统计学处理

所有实验数据均采用SPSS 22.0软件进行分析。数据以均数±标准差(mean±SD)来表示,多组间比较采用单因素方差分析,以P<0.05 为差异有统计学意义。

结 果

1 不同浓度的淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方对细胞存活率的影响

在进行细胞实验之前,首先对淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方的细胞毒性进行考察,与control 组相比,不同浓度(7.4、14.8、22.2、29.6 和37 mg/L)的淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方作用于细胞24 h后,均没有引起显著的细胞毒性,且各组细胞存活率无显著性差异,故采取37 mg/L 的药物浓度用于后续实验,见图1。

Figure 1.Effect of traditional Chinese medicine(TCM;active components of Epimedium,Astragalus and Radix Puerariae)on HT22 cell survival rates.Mean±SD.n=6.图1 淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方对HT22 细胞存活率的影响

2 siRNA对HT22细胞HAMP表达水平的影响

与control 组比较,NC 组HAMP 蛋白和mRNA 表达水平无显著差异(P>0.05),Si-1 组、Si-2 组和Si-3组HAMP 蛋白和mRNA 表达水平显著降低(P<0.05);与NC 组比较,Si-1 组、Si-2 组和Si-3 组HAMP蛋白和mRNA 表达水平显著降低(P<0.05);与Si-1组比较,Si-2 组和Si-3 组HAMP 蛋白和mRNA 表达水平显著降低(P<0.05);与Si-2 组比较,Si-3 组HAMP 蛋白和mRNA 表达水平显著降低(P<0.05);其中HAMP siRNA-3 序列干扰效率最强,因此选用HAMP siRNA-3序列进行后续实验,见图2。

Figure 2.The effect of siRNA on the HAMP protein and mRNA expression levels in HT22 cells.A:the protein ex⁃pression of HAMP;B:the mRNA expression of HAMP.Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs NC group;△P<0.05 vs Si-1 group;▲P<0.05 vs Si-2 group.图2 siRNA 对HT22细胞HAMP 蛋白和mRNA 表达水平的影响

3 免疫荧光检测ADAM10的表达

与control 组比较,Aβ 组、RNAi 组和Aβ+RNAi 组中的ADAM10蛋白表达降低(P<0.05);与Aβ组比较,Aβ+RNAi 组中ADAM10 蛋白表达进一步降低(P<0.05),Aβ+TCM 组中ADAM10 蛋白表达增高(P<0.05);与RNAi 组比较,Aβ+RNAi 组中的ADAM10蛋白表达降低(P<0.05),RNAi+TCM 组中的AD⁃AM10蛋白表达增高(P<0.05);与Aβ+RNAi组比较,Aβ+RNAi+TCM 组中的ADAM10 蛋白表达增高(P<0.05),见图3。

Figure 3.Effect of traditional Chinese medicine(TCM;active components of Epimedium,Astragalus and Radix Puerariae)on ADAM10 protein expression in HT22 cells induced by Aβ.Red:AMAM10;blue:DAPI.Scale bar=20 μm.Mean±SD.n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs Aβ group;△P<0.05 vs RNAi group;▲P<0.05 vs Aβ+RNAi group.图3 淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方对Aβ诱导的HT22细胞中ADAM10蛋白表达的影响

4 Western blot和qPCR检测ADAM10的表达

Western blot结果及qPCR结果显示,与control组比较,Aβ 组、RNAi 组和Aβ+RNAi 组中的ADAM10蛋白及mRNA 表达降低(P<0.05);与Aβ 组比较,Aβ+RNAi 组中ADAM10 蛋白及mRNA 表达降低(P<0.05),Aβ+TCM 组中ADAM10蛋白及mRNA 表达增高(P<0.05);与RNAi 组比较,Aβ+RNAi 组中的ADAM10 蛋白及mRNA 表达降低(P<0.05),RNAi+TCM 组中的ADAM10 蛋白及mRNA 表达增高(P<0.05);与Aβ+RNAi 组比较,Aβ+RNAi+TCM 组中的ADAM10蛋白及mRNA表达增高(P<0.05),见图4。

讨 论

AD 发病机制学说众多[11],包括Aβ 级联学说、Tau蛋白学说、氧化应激学说和金属离子代谢紊乱学说等[12]。脑部出现老年斑是AD 的主要病理学标志[13],其核心成分是一种由39~43 个氨基酸残基构成的小神经肽Aβ。AD 中Aβ 的重要形式是Aβ1-40和Aβ1-42,Aβ 斑块中主要的成分是Aβ1-42,它更易于聚集,有很强的神经毒性,Aβ1-40是Aβ 主要的可溶性形式,主要存在于血液循环之中。Aβ25-35被认为是Aβ1-42的活性片段,于37℃水浴箱孵育7 d 左右,即为“聚集”状态[14]。因此,在本实验中我们采用Aβ25-35诱导细胞建立AD细胞模型。

Aβ 由其前体蛋白APP 水解代谢产生,在α、β 和γ 位使APP 发生裂解的蛋白酶分别称之为α、β 和γ-分泌酶[15],其中α-分泌酶是由整合素和金属蛋白酶家族(a disintegrin and metalloprotease,ADAM)的成员ADAM9、ADAM10 和ADAM17 组成,所有成员都有相同的结构域。ADAM10 是ADAM 家族中最早就确认具有α-分泌酶功能的蛋白酶,是APP 的非淀粉样剪切中重要的α-分泌酶。ADAM10 可以减少Aβ的形成增加其脱落,以及显著减少淀粉样蛋白的过度表达;相反,ADAM10表达的减少导致了淀粉样蛋白形成增加的机会[16]。有报道显示,中、重度AD 患者血液中ADAM10 的表达是降低的[17]。HT22 细胞是小鼠海马神经元永生化的细胞,具有神经元的形态和功能,是近年来体外研究神经退行性病变的常用细胞。本研究以Aβ25-35诱导HT22 细胞建立AD 细胞模型,研究结果显示AD 细胞模型组中ADAM10表达降低。

Figure 4.Effect of TCM on ADAM10 protein and mRNA expres⁃sion in HT22 cells induced by Aβ.A:ADAM10 pro⁃tein expression was measured by Western blot;B:ADAM10 mRNA expression was measured by qPCR.Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs Aβ group;△P<0.05 vs RNAi group;▲P<0.05 vs Aβ+RNAi group.图4 淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方对Aβ 诱导的HT22细胞中ADAM10表达的影响

APP 是一种典型的金属蛋白,其5´端非翻译区(5´-untranslational region,5´-UTR)带有一个功能性的铁反应元件(iron-response element,IRE),铁离子可通过5´-UTR 调控APP mRNA 的表达。铁离子影响着APP 的表达及Aβ 的分泌和沉积[18],AD 患者脑内Aβ 的产生与多种铁离子结合蛋白关系密切。铁代谢相关蛋白包括二价Tf、TfR1、ferritin、FPN1、Ft⁃Mt、DMT1、IRPs 和HAMP 等,其中HAMP 是近年来发现的重要的铁调节激素,是维持细胞内正常铁代谢的重要金属转运蛋白,它精确调控铁吸收、储存和释放过程[19]。HAMP 是由25 个氨基酸组成的多肽,主要在肝脏合成并成熟,随后分泌到血液中,转运到它的主要靶器官包括小肠、肝脏、骨髓细胞和巨噬细胞,控制这些器官的铁代谢活动。血液中HAMP 浓度增加,将抑制小肠上皮细胞铁吸收蛋白的表达、进而抑制小肠铁吸收,同时增加肝脏细胞,骨髓细胞和巨噬细胞对铁的摄取,进而增加铁储存和铁利用。通过这一HAMP 介导的途径,可有效缓解铁超载;反之,HAMP敲除或者浓度降低,铁的吸收会增加,而铁的储存和利用减少,造成铁超载。但其对APP 水解的影响尚未见报到。因此,本实验以HAMP 为靶点,在AD 细胞模型中使HAMP基因沉默,观察HAMP 对ADAM10 的影响。研究结果显示,沉默HAMP可抑制ADAM10 的表达,说明HAMP 可调节APP 的水解,从而影响Aβ的产生。

中医在抗痴呆方面有着丰富的临床和实践经验,中药是我国的传统瑰宝,有上千年的悠久历史,在病理治疗中以其多靶点和多效性等优点有着巨大潜力。我们前期研究观察,淫羊藿、黄芪、葛根有效组方可以有效缓解AD 模型小鼠脑组织铁超载,明显改善AD 小鼠学习记忆能力,下调AD 模型小鼠脑组织Aβ 的表达,其机制与淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方可以调节AD 模型小鼠脑组织FPN1、DMT1 和HAMP 等铁代谢相关蛋白的表达有关[20],但具体机制仍然不明确。本实验在以往研究的基础上进一步研究淫羊霍、黄芪、葛根素有效成分组方干预Aβ 表达的内在机制,研究结果显示淫羊霍、黄芪、葛根素有效成分组方介导HAMP 上调AD 细胞模型AD⁃AM10的表达。

综上所述,淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方可能通过调节HAMP 的表达,缓解脑细胞的铁超载,促进ADAM10 的表达,从而增强APP 的非淀粉样代谢通路,减少Aβ 沉积,这也可能是淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方防治AD 的内在机制。但本文只在细胞水平上初步探讨了淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方介导HAMP 在APP 水解中的作用情况,而成功建立HAMP基因敲除小鼠,进一步在动物水平进行验证是否对临床有意义将是今后研究的方向。

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