赵金伟,王钟林,吴 杰,田维军,董 强,宋晓斌

(吉林省人民医院急诊外科,吉林长春 130021）

建立一个接近于人类的肠系膜静脉血栓形成的动物模型,对该病的早期诊断,疾病病理过程及个体化治疗方案的选择均具有重要的临床应用价值。1990年,Kurz等[1]首次报道采用FeCl3溶液诱导大鼠颈动脉血栓形成模型,其后被广泛应用于动脉血栓模型的制备,2006年,Wang X等[2]采用FeCl3溶液诱导腔静脉血栓形成的动物模型获得成功,但有关肠系膜静脉血栓形成的动物模型尚未见文献报道,本文旨在探讨肠系膜静脉血栓形成的动物模型的建立方法及组织病理学变化,为临床肠系膜血栓形成的研究提供一个理想的实验动物模型。

1 材料与方法

1.1 实验材料

选择健康SD大鼠,雌雄不限,体重350克-400克,三氯化铁(FeCl3）由上海化学试剂厂生产,分析纯。将FeCl3溶FeCl3于水中,配制成3%,5%,10%,20%及50%溶液,浓度根据FeCl3的实际重量计算。

1.2 实验方法

1.2.1 麻醉、解剖及FeCl3诱导 SD大鼠采用0.3%戊巴比妥钠1 ml/kg行腹腔注射麻醉,麻醉生效后,将大鼠固定于自制的手术台上,常规腹部脱毛消毒,腹部中线剪开,寻找一段小肠系膜,扇形展开,自无血管区戳口,其下放置小片朔料薄膜(2.0 cm×1.0 cm）,用于保护周围组织,将吸有FeCl3溶液的小块滤纸(1.0 cm×0.5 cm）置于肠系膜与朔料薄膜之间,包裹肠系膜5分钟后移开,,生理盐水冲洗局部被包裹的肠系膜组织,观察肠系膜血管变化。

1.2.2 FeCl3溶液浓度及解剖观察时相的确定 分别采用不同浓度的FeCl3溶液,按前述方法包裹肠系膜5分钟后移开,生理盐水冲……