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小鼠椎间盘退变模型实验进展

2018-04-26刘佳鑫徐海栋

转化医学电子杂志 2018年3期
关键词:椎间盘椎体脊柱

刘佳鑫,崔 颖,徐海栋

(1新疆维吾尔自治区昌吉市93864部队医院,新疆昌吉831112;2南京军区南京总医院,江苏 南京210002)

0 引言

腰椎间盘突出是一种比较常见的疾病,而且随着社会节奏的加快,该病患者人数每年都有所增长,且呈现出年轻化发展的趋势[1]。随着人年龄的增长,椎间盘会逐渐发生退变,纤维环和髓核的含水量逐渐下降,髓核失去弹性,纤维环逐渐出现裂隙。由于其发病机制尚不明确,防治手段尤其是预防手段尚不完善。所以,建立有效、成熟的动物模型能够帮助我们更好地了解和研究该病的发病机制,并对治疗提供新的策略和方法。

因小鼠椎间盘与人类椎间盘在生理结构和病理改变上具有相似性,同时小鼠饲养周期较短,存活率较高,故使用小鼠建立椎间盘退变模型最为理想。本文旨在讨论一些近年来常用的、成功率较高的椎间盘退变模型实验进展。

1 生物力学模型

1.1 去双前肢直立模型 去双前肢是指通过手术或其他方式改变小鼠的活动方式,使其变成与人类相同的双足直立,以此来改变其脊柱的生物力学状态,椎间盘因压力的增大和方向的变化逐渐发生退变,这与人类椎间盘退变的机制基本相同。刘盾等[2]将幼鼠双前肢血管及神经束结扎,然后将肱骨截断,缝合伤口后继续饲养。六月龄时处死并提取椎间盘标本,经染色后观察,髓核出现皱缩,与纤维环界限不清,椎体表面产生裂痕,软骨终板出现钙化,腰椎间盘软骨细胞发生变性、坏死,椎间盘高度降低。免疫荧光检测显示:CollagenⅠ、CollagenⅩ、TNF-α 阳性细胞比例较正常小鼠均有明显升高。

1.2 椎间盘加压模型 通过在小鼠腰椎上直接增大压力会导致小鼠椎间盘间压力增大,进而增大了髓核之间的压力,纤维环的压力也随之增大,当外界压力超过椎间盘所承受的压力上限时纤维环会逐渐发生破裂,髓核突出并发生退变。在此压力增大的基础上,髓核细胞会发生凋亡,纤维环破裂,融媒体的活性相应增加。Lindblom[3]构建了世界上最早的椎间盘加压模型。孙春光等[4]通过手术方法,以尾椎C5、C6为中心,将两枚交叉克氏针钻入尾椎。相继固定定制碳纤维环于交叉克氏针上,给予弹簧螺帽固定加压。压缩4枚弹簧均为10 mm/kg体质量(模拟小鼠直立行走时腰椎所承受的自身体质量)弹。术后两个月在MRI下发现椎体间椎间盘信号强度呈低强度改变,椎体周围纤维环弯曲变形,椎间盘部位出现压迹。

生物力学模型其优势在于能很好地模拟人类脊柱的生理特性,使小鼠椎间盘退变符合人类椎间盘退变的过程,可重复性高,可控性强。

2 物理损伤模型

2.1 纤维环穿刺法 纤维环穿刺法是目前最常用的动物椎间盘造模方法。通过纤维环穿刺可以同时损伤纤维环和髓核,导致椎间盘的高度显著下降,硬度明显降低,同时内部压力减小[5]。 Issy 等[6]将 Wistar鼠麻醉后在X线引导下用20 g针经皮穿入6-7、8-9尾椎椎间盘。针头穿过髓核直到对侧纤维环,然后360°旋转两次,静置30 s后拔出。之后,在X线和MRI引导下测量损伤7、30 d后的椎间盘高度。同时使用苏木素染色和胶原纤维取向进行组织学检查。最终影像学与组织学评分都能表明椎间盘的显著退变。Ohnishi等[7]在经典纤维环穿刺的基础上加以改进,利用Micro-CT对小鼠L4-5椎间盘进行多维平面重建,确定椎间盘上的针刺区域。为了明确针刺的位置,将椎间盘平面正中的矢状径分为三部分,同心椭圆为中心区(central),外围被分成腹侧(ventral)和背侧(dorsal)(图 1)。

图1 椎间盘平面示意图

数周后处死小鼠,通过MRI分析证实针刺椎间盘发生退变性改变,将针刺部位椎间盘固定、包埋、切片、染色后利用四种经典组织学分析方法分析,证明其退变性改变。这种通过针刺损伤中心区域的方法更有效地损伤纤维环,导致椎间盘的退变。利用针刺纤维环建立椎间盘退变模型是一种经济有效、操作简便、成功率高、重复性好的方法,模型椎间盘的缓慢退变与人类椎间盘退变的发展规律相似。

2.2 脊柱失稳模型 在脊柱的稳定因素中,骨骼和韧带维持关节平衡和稳定的作用称为静力平衡,肌肉维持该作用称为动力平衡。脊柱失稳法是通过手术切除脊柱的棘突、关节突、椎板间韧带等结构,破坏静力平衡和动力平衡,改变正常脊柱和椎间盘的受力大小和分布,从而间接诱发 IDD发生。Miyamoto等[8]建立了小鼠的脊柱失稳椎间盘模型,主要是咬除棘突组织并同时松解椎旁肌肉组织,对模型行免疫组化及影像学检查发现骨赘增生,纤维结缔组织形成,纤维环破碎。陈德胜等[9]通过切除鼠L1-L6棘突,关节突,棘上、棘间韧带,切断双侧竖脊肌来破坏脊柱后柱的稳定性。在X线下发现,与对照组相比,实验组椎间隙狭窄,椎体不稳,软骨终板钙化。病理示髓核细胞减少,外周纤维环纤维化样变。

3 基因敲除模型

相比于手术方法获得小鼠椎间盘模型,基因敲除模型具有数量多,可控性强等优点。目前报道的基因敲除模型主要分为两类,一类是敲除对椎间盘结构决定性的相关基因,例如 Col9a1[10]、双糖链蛋白聚糖[11]。还有一类是对椎间盘正常代谢过程中的相关基因进行敲除,如核苷酸切除修复交叉互补基因(ERCC1)[12]。 DNA 切除修复基因 ERCC1-XPF 的缺失会导致早衰症或者是疾病的加速进展,影响到皮肤、神经系统、肾脏、肝脏、肌肉骨骼、血液和内分泌系统[13]。相似的,Ercc1和 XPF之中任何一个的缺失都会加速小鼠的老化[14-16],Hernández等[17]将缺乏核苷酸切除修复交叉互补基因和着色性干皮病基因的小鼠模型和野生型老鼠共同饲养,20周后在Micro-CT和X线下进行观察,发现缺乏核苷酸切除修复交叉互补基因和着色性干皮病基因的小鼠的椎间盘减少的高度相当于正常两岁的小鼠,同时会表现出病理性的脊柱后凸,还包括骨矿物质减少,椎体多孔性增加。

基因敲除模型是具有广阔前景的建模办法,其稳定性强,可控性强,可获得模型数量较大。但目前由于技术限制,其所花费的时间和经费要多于其他方式。

4 化学损伤模型

Mao等[18]将不同剂量的磷酸盐缓冲盐溶液(PBS)注入到椎间盘中,4周后在影像学、组织学及免疫组化检测下提示鼠椎间盘发生了退变,同时发现椎间盘退变速度与注入的PBS剂量成正相关。Manuscript[19]将三个月大的小鼠直接暴露于烟草烟雾中来模拟人类的长期吸烟,结果发现这些小鼠椎间盘内蛋白聚糖含量降低,细胞衰老加快,椎体骨质疏松、终板孔隙度增大,进而导致椎间盘退变。化学损伤模型虽然易操作,创伤小,但实验结果受到单一变量的限制,同时又不符合人类的生理规律。

5 结语

以上建模方法是目前使用率和成功率较高的几种方法,除此之外,汪国宏等[20]还利用人巨细胞病毒(human cytomegalovirus, HCMV)感染小鼠,HE 染色下见椎间盘组织局部灶性淋巴细胞浸润等慢性炎症反应,纤维环板层结构紊乱,关节软骨钙化层增厚,大量黏液及泡沫细胞,软骨下血管明显减少,证明了HCMV可以感染小鼠椎间盘组织。动物椎间盘退变模型的建立对于了解人椎间盘的退变机制,对临床治疗和预防人椎间盘退变具有十分重要的的意义。年龄相关导致的变性疾病重要却充满了挑战,因为在人类中受制于研究时间长和样本量的大小,同时要考虑遗传和环境的变量。所以,动物模型的建立在现在以及未来的科研工作中都占据重要角色。

【参考文献】

[1]李 燕.CT诊断应用于腰椎间盘突出诊断中的临床价值分析[J].转化医学电子杂志,2015, 2(9):10,12.

[2]刘 盾.去双前肢直立诱导大鼠腰椎间盘退变模型的建立及骨痹合剂干预机制研究[D].昆明:云南中医学院,2014.

[3]Lindblom K.Intervertebral-disc degeneration considered as a pressure atrophy[J].J Bone Joint Surg Am,1957,39-A(4):933-945.

[4]孙春光,周其佳,孙月柏,等.大鼠尾椎椎间盘退变模型的建立及磁共振检查[J].中国医药导报,2015,12(7):29-32.

[5]吴靖平,陈统一,陈中伟,等.双后肢大鼠椎间盘退变动物模型的建立[J].中国实验外科杂志,2004,21(1):105-107.

[6]Issy AC,Castania V,Castania M,et al.Experimental model of intervertebral disc degeneration by needle puncture in Wistar rats[J].Br J Med Biol Res,2013,46(3):235-244.

[7]Ohnishi T, Sudo H, Iwasaki K, et al.In vivo mouse intervertebral disc degeneration model based on a newhistological classification[J].PLoS One,2016,11(8):e0160486.

[8]Miyamoto S,Yonenobu K,Ono K.Exper imental cervical spondylosis in the mouse[J].Spine,1991,16(10 Suppl):495-500.

[9]陈德胜,金群华,李 燕,等.大鼠腰椎间盘退变模型的建立及X线和病理学观察[J].宁夏医学院学报,2006,28(3):199-201.

[10]Allen KD, Griffin TM, Rodriguiz RM, et al.Decreased physical function and increased pain sensitivity in mice deficientfor typeⅨcollagen[J].Arthritis Rheum,2009,60(9):2684-2693.

[11]Furukawa T, Ito K, Nuka S, et al.Absence of biglycan accelerates the degenerative process in mouse intervertebral disc[J].Spine,2009,34(25):E911-E917.

[12]Nasto LA, Robinson AR, Ngo K, et al.Mitochondrial-derived reactive oxygen species(ROS) play a causal role in aging-related intervertebral disc degeneration[J].J Orthop Res,2013,31(7):1150-1157.

[13]Niedernhofer LJ, Garinis GA, Raams A, et al.A new progeroid syndrome reveals that genotoxic stress suppresses the somatotroph axis[J].Nature,2006,444(7122):1038-1043.

[14]McWhir J, Selfridge J, Harrison DJ, et al.Mice with DNA repair gene(ERCC-1) deficiency have elevated levels of p53,liver nuclear abnormalities and die before weaning[J].Nat Genet,1993,5(3):217-224.

[15]Weeda G, Donker I, de Wit J, et al.Disruption of mouse ERCC1 results in a novel repair syndrome with growth failure,nuclear abnormalities and senescence[J].Curr Biol,1997,7(6):427-439.

[16]杨 斐,赵建宁,徐海栋.椎间盘髓核细胞修饰的相关研究进展[J].转化医学电子杂志,2017,4(2):53-56.

[17]Millecamps M, Czerminski JT, Mathieu AP, et al.Behavioral signs of axial low back pain and motor impairment correlate with the severity of intervertebral disc degeneration in a mouse model[J].Spine J,2015,15(12):2524-2537.

[18]Mao HJ, Chen QX, Han B, et al.The effect of injection volume on disc degeneration in a rat tail model[J].Spine,2011,36(16):E1062-E1069.

[19]Wang D, Nasto LA, Roughley P, et al.Spine degeneration in a murine model of chronic human tobacco smokers[J].Osteoarthritis Cartilage,2012,20(8):896-905.

[20]汪国宏,吴建贤,黄金华,等.人巨细胞病毒感染Balb/c小鼠椎间盘的相关检测[J].安徽医科大学学报,2008,43(2):128-131.

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