APP下载

TGF-β通过Lnc-ATB促进食管癌细胞侵袭转移的机制研究

2019-11-22鲁之中李军民胡云芝李晓辉李卫姜富国李帅刘学庆

中国现代医学杂志 2019年22期
关键词:小室食管癌机制

鲁之中,李军民,胡云芝,李晓辉,李卫,姜富国,李帅,刘学庆

(焦作市人民医院 1.检验科,2.儿科,3.肿瘤外科,河南 焦作 454002;4.重庆医科大学 公共卫生与管理学院,重庆 400016)

食管癌是最常见的消化道恶性肿瘤之一,对健康危害极大[1]。随着医学及生命科学的发展,食管癌发病机制及治疗靶点的研究已成为医学研究领域的热点。转化生长因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)是一组新发现的可调节细胞生长及分化的TGF超家族,其在肿瘤细胞的上皮间质转化过程中发挥至关重要的作用[2-3]。然而在食管癌细胞中TGF-β所发挥的作用及机制目前仍不完全清楚。本研究拟深入探讨TGF-β在食管癌的功能及机制,为进一步揭示食管癌转移的分子机制提供理论基础。

1 材料与方法

1.1 材料

食管癌细胞系EC9706(中国科学院上海细胞库),RNA逆转录试剂盒(日本TaKaRa公司),Lnc-ATB siRNA及对照(广州锐博科技有限公司),Trizol裂解液(美国Sigma公司),TGF-β(深圳百恩维生物科技有限公司);LipofectamineTM2000转染试剂(美国Invitrogen公司),Transwell小室(德国Millipore公司)。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养和转染用含10% Gibco胎牛血清的DMEM培养液培养食管癌细胞系EC9706,温度为37℃,二氧化碳CO2浓度为5%,置于培养箱中培养。当细胞培养至70%左右的融合度后,将5μl Lnc-ATB-siRNA及Lnc-ATB对照经250μl LipofectamineTM2000转入EC9706细胞中,将转染后的EC9706细胞分为Lnc-ATB-siRNA组及Lnc-ATB-NC组。

1.2.2 Lnc-ATB表达水平检测待食管癌细胞加入10 ng/ml TGF-β,将给予TGF-β处理的细胞作为TGF-β组,未给予TGF-β处理的细胞作为对照组。48 h后,收集两组细胞,用Trizol裂解细胞,分别提取细胞总RNA,逆转录为cDNA作为模板。实时荧光定量聚合酶链反应(quantitative realtime polymerase chain reaction, qRT-PCR)的反应条件为:95℃预变性3 min,95℃变性15 s,59℃退火35 s,共进行39个循环,实验重复3次。Lnc-ATB正向引物 :5’-TCTGGCTGAGGCTGGTTGAC-3’,反向引物 :5’-ACACAGAATAAAATAACAC-3’;内参照甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, GAPDH)正向引物:5’-GGTGAAGGTCGGAGTCAACGG-3’,反向引物:5’-GAGGTCAATGAAGGGGTCATTG-3’。

1.2.3 EC9706细胞侵袭转移能力检测EC9706细胞不给予任何处理作为空白组;转染Lnc-ATB-siRNA作为Lnc-ATB-siRNA组;给予10 ng/ml TGF-β处理并转染Lnc-ATB-NC作为TGF-β+Lnc-ATB-NC组;给予10 ng/ml TGF-β处理并转染Lnc-ATB-siRNA作为TGF-β+Lnc-ATB-siRNA组。48 h后用胰酶消化各组细胞,磷酸盐缓冲溶液(phosphate buffer saline,PBS)冲洗2遍,用含10%牛胎血清蛋白的无血清培养基重悬细胞,调整细胞密度至2×105个/ml,取两组细胞悬液各150μl,加入已预先用Matrigel包被基底膜的Transwell小室。下室加入含10%胎牛血清的完全培养基600μl,培养48 h。而后取出小室,PBS冲洗2次,用棉签小心擦去微孔膜内层的细胞,95%乙醇固定两组细胞5 min,用1%结晶紫溶液着色,PBS洗涤2次,倒置显微镜下分别计数,每个样本随机计数10个视野。检测细胞转移步骤与细胞侵袭基本相同,区别在于细胞转移Transwell小室预先不包被Matrigel基底膜。

1.3 统计学方法

数据分析采用SPSS 20.0统计学软件。计量资料以均数±标准差(±s)表示,比较用t检验或方差分析,进一步两两比较用LSD-t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 TGF-β上调食管癌EC9706细胞中Lnc-ATB的表达

TGF-β处理食管癌EC9706细胞48 h后,分别提取TGF-β组和对照组细胞的总RNA,均逆转录为cDNA,用qRT-PCR检测各组间Lnc-ATB的表达,TGF-β组Lnc-ATB的相对表达量为(1.000±0.062),对照组为(0.417±0.084),经t检验,差异有统计学意义(t=6.431,P=0.007),TGF-β组较对照组高。而后应用qRT-PCR检测Lnc-ATB siRNA在EC9706细胞中的干涉效果,结果显示Lnc-ATB-siRNA组EC9706细胞中Lnc-ATB相对表达量为(0.438±0.073),Lnc-ATB-NC 组为(1.000±0.082),经t检验,差异有统计学意义(t=4.392,P=0.021),Lnc-ATB-siRNA组较Lnc-ATB-NC组低,Lnc-ATB siRNA可有效沉默EC9706细胞中Lnc-ATB的表达。见图1。

图1 各组EC9706细胞中Lnc-ATB的相对表达量比较 (±s)

2.2 TGF-β组与对照组TGF-β处理后EC9706细胞的侵袭、转移能力比较

TGF-β处理食管癌EC9706细胞48 h后,TGF-β组侵袭细胞数为(98.328±11.033)个,对照组为(64.238±7.431)个,经t检验,差异有统计学意义(t=3.542,P=0.032);TGF-β组转移细胞数为(45.759±15.561)个,对照组为(27.752±13.453)个,经t检验,差异有统计学意义(t=4.142,P=0.023),TGF-β组侵袭和转移细胞数均高于对照组,提示TGF-β可促进EC9706细胞的侵袭与转移能力。见图2、3。

图2 TGF-β组与对照组TGF-β处理后EC9706细胞的侵袭能力比较 (×200)

图3 TGF-β组与对照组TGF-β处理后EC9706细胞的转移能力比较 (×200)

2.3 各组TGF-β通过Lnc-ATB促进EC9706细胞侵袭、转移能力比较

空白组侵袭细胞数为(48.492±11.325)个,Lnc-ATB-siRNA组 为(22.328±8.925) 个,TGF-β+Lnc-ATB-NC组为(74.284±14.925) 个,TGF-β+Lnc-ATB-siRNA组为(37.827±5.329)个,经方差分析,差异有统计学意义(F=10.324,P=0.014);空白组转移细胞数为(39.728±9.645)个,Lnc-ATB-siRNA组为(19.658±7.371)个,TGF-β+Lnc-ATB-NC组 为(51.462±3.627) 个,TGF-β+Lnc-ATB-siRNA组为(29.527±8.359)个,经方差分析,差异有统计学意义(F=8.792,P=0.026)。TGF-β+Lnc-ATB-NC组细胞侵袭及转移能力高于其他组(P<0.05);空白组细胞侵袭及转移能力高于TGF-β+Lnc-ATB-siRNA组 与 Lnc-ATB-siRNA组(P<0.05);TGF-β+Lnc-ATB-siRNA组与Lnc-ATB-siRNA组细胞侵袭及转移能力比较,差异无统计学意义(P>0.05)。见图4~7。

图4 各组TGF-β通过Lnc-ATB上调EC9706细胞侵袭能力 (×200)

图5 各组TGF-β通过Lnc-ATB上调EC9706细胞转移能力 (×200)

图6 各组TGF-β通过Lnc-ATB上调EC9706细胞侵袭能力比较 (±s)

图7 各组TGF-β通过Lnc-ATB上调EC9706细胞转移能力比较 (±s)

3 讨论

TGF-β作为生长因子对细胞分化、细胞增殖起关键调控作用,在多种癌症发生、发展过程发挥重要作用[4]。既往有研究报道,TGF-β在食管癌中异常高表达,其表达与食管癌的分期、分级密切相关,肿瘤分化程度越低,TGF-β的表达越强[5]。更有研究显示,食管癌中TGF-β下游效应分子SMAD4表达水平降低,其表达与肿瘤的临床病理分期及浸润深度呈负相关[6]。本研究同样显示,给予TGF-β后,食管癌细胞的侵袭及转移能力明显增强。由此可见,TGF-β在食管癌的发生、发展中发挥着重要作用。有大量报道试图阐明TGF-β在肿瘤中的作用机制,比如PASCHE[7]认为TGF-β由基质及肿瘤细胞产生后,在肿瘤微环境中可发挥肿瘤促进因子的作用,通过刺激肿瘤新生血管的生成,发挥免疫抑制及合成细胞外基质等作用,从而促进肿瘤细胞的增殖、转移及侵袭。但这些研究并不能为TGF-β在食管癌中的作用提供更精确的分子机制。

TGF-β是一个被广泛研究的细胞因子,恶性肿瘤会释放大量TGF-β帮助癌细胞快速分裂,同时借助Treg抑制免疫细胞对癌细胞的杀伤力[8]。但是由于正常细胞不能缺少TGF-β,因此很难设计靶向的方法来治疗癌症。科学家需要进一步探索TGF-β的分子机制,从其上下游作用的关键分子着手,研究相应的治疗靶点,这也是本研究的目的所在。

长链非编码RNA是近年来发现的一类转录本,其>200个核苷酸,不具有蛋白编码潜能。许多研究表明,LncRNA经常在各种疾病中失调,在广泛的生物过程中有多种功能,如调控细胞增殖、凋亡及迁移等[9-10]。有文献报道,TGF-β可以激活部分长链非编码RNA的表达及功能[11-12]。YUAN等[13]利用LncRNA芯片,结合经典分子生物学技术,首次发现了1个介导TGF-β促进肿瘤转移的LncRNA,并将这个新LncRNA命名为Lnc-ATB。有研究发现,Lnc-ATB在肝细胞癌患者组织中表达水平异常升高,在肝细胞癌患者转移灶中的表达则进一步上调,其表达水平与肝细胞癌的侵袭特征呈正相关,与肝细胞癌患者的不良预后亦呈正相关[14]。本研究主要探讨TGF-β在食管癌中是否通过激活Lnc-ATB参与肿瘤的进展,结果显示给予TGF-β后,食管癌细胞的侵袭及转移能力增强,同时Lnc-ATB的表达升高,而沉默食管癌细胞中Lnc-ATB的表达,给予TGF-β后,细胞的侵袭及转移能力并未增强。以上实验结果说明在食管癌中TGF-β通过上调Lnc-ATB的表达促进肿瘤细胞的侵袭及转移。本研究为探索食管癌远处转移的机制提供了理论基础,为食管癌的治疗提供了新的分子靶标。

猜你喜欢

小室食管癌机制
得了食管癌能维持多长时间
食管癌患者两种固定装置摆位误差及计划靶区外扩值探讨
卜算子·静夜思
集束化护理应用于胸腹腔镜联合食管癌切除术患者中的效果观察
创新完善机制 做实做优考核
日媒劝“灰小子”早日放开公主
自制力是一种很好的筛选机制
日本公主的准婆家靠谱吗?
胸腹腔镜联合食管癌手术的配合
皮革机制