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丙泊酚作用NLRP3/ASC/caspase-1通路对肺癌A549细胞焦亡的影响

2024-02-02关冀弛杨金雨刘丹李磊李东华汪海峰

中国医科大学学报 2024年2期
关键词:焦亡孔板丙泊酚

关冀弛,杨金雨,刘丹,李磊,李东华,汪海峰

(沈阳化工大学制药与生物工程学院,沈阳 110142)

原发性肺癌是最常见的恶性肿瘤,在全球大部分国家中其发病率、死亡率最高。寻找高效低毒性的化疗药物或方案对治疗肺癌有重要意义[1-3]。丙泊酚是一种烷基酸类的短效静脉麻醉药,研究发现丙泊酚在肺癌[4]和结直肠癌[5]等的发生与转移中起抑制作用,可以影响肿瘤细胞的增殖、分化等途径。细胞焦亡是一种细胞程序性死亡方式,通过激活半胱氨酸天冬氨酸蛋白水解酶 (caspase) 家族的部分蛋白,使其切割并激活焦孔素蛋白 (gasdermin,GSDM),活化的GSDM转移到细胞膜上形成孔洞,胞质外流,胞内炎性细胞因子释放,最终导致细胞膜破裂、细胞死亡[6-7]。NLRP3/ASC/caspase-1通路构成了炎症小体激活的经典通路,在多种危险信号刺激下被激活。三维培养的肿瘤细胞可以获得持续自我复制、肿瘤血管生成等生物学特性,在肿瘤疾病的治疗和耐药机制等方面具有广泛的应用前景[8]。本研究以超低吸附培养法建立肺癌A549细胞三维培养模型,研究丙泊酚通过激活NLRP3/ASC/caspase-1通路促进细胞焦亡而抑制肺癌A549细胞增殖的作用机制,为肺癌疾病的研究和治疗提供实验依据。

1 材料与方法

1.1 细胞株

人肺癌A549细胞株,购自中国科学院细胞库。

1.2 主要药物、试剂与仪器

RPMI1640培养基 (美国Gibco公司) ,TBD优级胎牛血清 (中国苏州瑞诺德生物科技有限公司) ,HyClone双抗 (中国上海华雅思创生物科技有限公司),胰蛋白酶 (美国Gibco公司),ULA 24、96孔板 (美国Corning公司),CCK-8、白细胞介素 (interleukin,IL) -1β、 IL-18、酶联免疫吸附试剂盒、BCA蛋白浓度测定试剂盒、兔抗人NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β、GAPDH一抗及二抗均购自中国上海碧云天生物技术有限公司。低速台式离心机 (中国上海安亭科学仪器厂),酶标仪 (中国深圳雷杜生命科学股份有限公司),超净工作台 (中国苏州安泰空气技术有限公司),二氧化碳培养箱 (日本三洋公司),倒置显微镜 (中国沈阳禾光科技有限公司) 。

1.3 三维细胞培养

倒置显微镜下观察A549细胞生长至细胞培养瓶底约90 %时,加入PBS溶液清洗,胰蛋白酶消化,离心,血球计数板计数,制成浓度为1×105/mL细胞悬液,3D细胞培养基质胶50 μL/孔加入96孔板,置于37 ℃烘箱过夜烘干,即可得到ULA96孔板,而后100 μL/孔加入ULA 96孔板中,放置于37 ℃、5 % 培养箱中培养,隔天换液。

1.4 药物处理

空白对照组肺癌A549细胞在RPMI 1640培养基中培养;根据丙泊酚浓度分为低浓度组 (20 μmol/L)、中浓度组 (60 μmol/L)和高浓度组 (100 μmol/L),分别处理细胞[9],每组设置6个平行样品。

1.5 CCK-8法检测细胞增殖

A549细胞于ULA 96孔板培养48 h后,小心吸除各孔培养基,每孔加入20 μL药物,空白组加入同等体积的培养基。继续培养24、48、72 h,小心吸出孔内液体,每孔加入20 μL CCK-8溶液作用2 h,酶标仪520 nm记录吸光度值,计算细胞存活率。

1.6 ELISA检测细胞上清炎性细胞因子

将A549细胞以每孔5×105/mL接种于ULA 24孔板,培养24 h后,按照1.4中方法分组处理细胞,培养48 h,12 000 r/min离心30 min,收集上清,ELISA试剂盒检测上清IL-18、IL-1β、IL-6水平。

1.7 蛋白免疫印迹法检测细胞焦亡蛋白表达水平

按照1.4中方法分组处理细胞,48 h后弃培养液,将细胞收集于EP管内离心3 min,预冷PBS清洗细胞3次,加入含蛋白酶抑制剂RIPA裂解液,冰上裂解30 min,12 000 r/min离心10 min,收集上清即为细胞总蛋白,BCA蛋白测定试剂盒测定蛋白总浓度。十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白,转移至聚偏氟乙烯膜后,脱脂奶粉封闭2 h,加入兔抗人NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β、GAPDH一抗 (1 ∶2 000稀释),4 ℃冰箱孵育过夜,PBST洗涤30 min后加入相应二抗 (1 ∶4 000稀释)孵育2 h,配制ECL显影液,以GAPDH为内参,分析目的蛋白表达水平。

1.8 统计学分析

采用 SPSS 26.0软件进行统计分析,符合正态分布的数据以±s表示,组间比较采用t检验,P< 0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 A549细胞三维生物学行为

三维培养A549细胞于光学显微镜下呈悬浮聚集式生长,细胞间有聚拢黏附趋势,在培养12 h即可清晰观察到细胞成球,且细胞球形状、大小不一。随着培养时间的增长,细胞球体积逐渐增大,且逐渐圆滑。见图1。

图1 不同培养时间段A549细胞形态 ×200Fig.1 Morphology of A549 cells in different culture periods ×200

2.2 丙泊酚对A549细胞增殖的影响

与空白对照组相比,低、中、高浓度丙泊酚组A549细胞存活率随着处理时间和丙泊酚剂量的增加逐渐降低 (P< 0.05)。见表1。

表1 各组A549细胞存活率 (±s,%,n = 6)Tab.1 Cell survival of A549 cell groups (±s,%,n = 6)

1) compared with control group,P < 0.05;2) compared with low concentration group,P < 0.05;3) compared with medium concentration group,P < 0.05.

GroupCell viability 24 h48 h72 h Control100.0±0.0100.0±0.0100.0±0.0 Low concentration 95.6±13.51) 89.1±11.71) 76.8±14.31)Medium concentration 72.8±10.41),2) 61.3±10.31),2) 49.7±12.21),2)High concentration 58.3±11.81),2),3) 45.7±12.71),2),3) 25.9±13.51),2),3)

2.3 丙泊酚对A549细胞上清炎性细胞因子的影响

与空白对照组相比,低、中、高浓度丙泊酚组A549细胞上清炎性细胞因子 IL-18、IL-1β、IL-6水平随着药物剂量的增加而增加 (P< 0.05)。见表2。

表2 各组A549细胞上清炎性细胞因子IL-18、IL-1β、IL-6水平 (±s,n = 6)Tab.2 Levels of inflammatory cytokines IL-18,IL-1β,and IL-6 in the supernatant of A549 cells in each group (±s,n = 6)

表2 各组A549细胞上清炎性细胞因子IL-18、IL-1β、IL-6水平 (±s,n = 6)Tab.2 Levels of inflammatory cytokines IL-18,IL-1β,and IL-6 in the supernatant of A549 cells in each group (±s,n = 6)

1) compared with control group,P < 0.05;2) compared with low concentration group,P < 0.05;3) compared with medium concentration group,P < 0.05.

GroupIL-18 (ng/L) IL-1β (μg/L) IL-6 (pg/mL)Control 64.28±6.331.06±0.59110.36±11.25 Low concentration118.49±11.751) 2.36±0.751)135.48±16.531)Medium concentration159.64±20.181),2) 3.14±0.841),2) 187.64±20.361),2)High concentration276.38±35.571),2),3) 4.36±0.911),2),3) 228.41±29.671),2),3)

2.4 丙泊酚对A549细胞NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β蛋白表达的影响

与空白对照组相比,低、中、高浓度丙泊酚组A549细胞NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β蛋白表达水平依次增加 (P< 0.05)。见图2、表3。

表3 各组A549细胞NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β蛋白表达水平 (±s,n = 6)Tab.3 NLRP3,ASC,caspase-1,GSDMD-N,and IL-1β protein expression levels in A549 cells of each group (±s,n = 6)

表3 各组A549细胞NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β蛋白表达水平 (±s,n = 6)Tab.3 NLRP3,ASC,caspase-1,GSDMD-N,and IL-1β protein expression levels in A549 cells of each group (±s,n = 6)

1) compared with control group,P < 0.05;2) compared with low concentration group,P < 0.05;3) compared with medium concentration group,P < 0.05.

GroupNLRP3ASCCaspase-1GSDMD-NIL-1β Control0.63±0.041.12±0.110.87±0.091.36±0.191.42±0.21 Low concentration1.24±0.121) 1.51±0.191) 1.34±0.131) 1.93±0.251) 2.01±0.291)Medium concentration1.67±0.151),2) 2.15±0.251),2) 1.96±0.191),2) 2.64±0.311),2) 2.98±0.371),2)High concentration2.01±0.191),2),3) 2.97±0.291),2),3) 2.61±0.241),2),3) 3.28±0.451),2),3) 3.57±0.491),2),3)

图2 各组A549细胞NLRP3、ASC、caspase-1、GSDMD-N、IL-1β蛋白表达Fig.2 Expression of NLRP3,ASC,caspase-1,GSDMD-N,and IL-1β in A549 cells of each group

3 讨论

肺癌作为最常见的恶性肿瘤,其发病率、死亡率高,选择合适的化疗药物及治疗手段有助于肺癌疾病的治疗和预后,肿瘤细胞与微环境的相互作用直接影响肿瘤的生长、转移、侵袭和复发,肿瘤细胞间及与细胞质基质间的相互作用将产生肿瘤黏附耐药,导致肿瘤细胞对化疗药物的敏感性降低,影响化疗药物的疗效[10]。

超低吸附培养法为肿瘤细胞三维培养方法,细胞培养板孔底附着与表面共价键结合的水凝胶,能最大限度地减少肿瘤细胞附着、细胞活化、蛋白质吸收和酶活化,使肿瘤细胞以三维模型成球生长[11]。TOFANI等[12]采用ULA法培养卵巢癌细胞并使用紫杉醇进行药物反应分析,结果表明卵巢癌细胞以球形发育,球体表面存在微绒毛,凋亡细胞更高,耐药性也更高。

丙泊酚一直以麻醉剂形式广泛应用于手术麻醉过程。丙泊酚在作为非麻醉剂应用时,是癌症进展的新兴调节剂,可调控肿瘤细胞增殖、凋亡、焦亡、转移与侵袭等信号通路,广泛应用于人类多种癌症研究[13]。本研究结果显示,不同浓度丙泊酚处理后,A549细胞存活率随着丙泊酚浓度的增加而依次降低,证明丙泊酚可抑制肺癌A549细胞增殖。

细胞焦亡是一种新型细胞程序性死亡方式,在病毒、细菌、炎症等病理刺激下,NLRP3炎症小体形成,进而激活caspase-1。活化的caspase-1作用于GSDMD-N端,在细胞膜上形成孔洞,细胞肿胀破裂,细胞内容物释放,细胞焦亡会释放炎性细胞因子,激发人体免疫系统进而产生抗炎作用,细胞焦亡发生在肿瘤细胞中时,IL-18、IL-1β、IL-6等炎性细胞因子在肿瘤细胞中起抑制作用[6]。

NLRP3/ASC/caspase-1通路是细胞焦亡经典通路,NLRP3炎症小体的形成促进caspase-1激活,caspase-1活化水解后产生IL-18、IL-1β等炎性细胞因子,同时caspase-1激活GSDMD,使其转移到细胞膜上形成孔洞,将IL-1β、IL-18等炎性细胞因子释放到胞外,IL-18、IL-1β等炎性细胞因子又可以作用于肿瘤细胞发挥抗癌作用[14]。本研究中,丙泊酚作用于肺癌A549细胞后,蛋白免疫印迹检测细胞焦亡蛋白表达,结果显示,丙泊酚激发了肿瘤细胞的细胞焦亡过程,促进了细胞焦亡相关蛋白表达;通过酶联免疫吸附法测定上清炎性细胞因子,结果显示,细胞焦亡会促进炎性细胞因子的释放,证明了肺癌A549细胞焦亡的发生,且肿瘤细胞生长受到抑制。

综上所述,本研究通过超低吸附培养法成功建立肺癌A549三维培养模型,丙泊酚可能通过激活NLRP3/ASC/caspase-1细胞焦亡通路促进肺癌A549细胞焦亡,从而抑制A549细胞增殖。本研究重点研究三维培养肺癌A549细胞的细胞焦亡过程,为肺癌的治疗和研究提供了一定的依据。

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