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CsgRNA减少APOBECs在Cas9-D10A介导的基因编辑过程中引入的突变

2021-10-16任蓉蓉陈红全

温州医科大学学报 2021年9期
关键词:系统

任蓉蓉,陈红全

1.浙江医院 医学检验科,浙江 杭州 310013;2.浙江大学医学院附属邵逸夫医院 检验科,浙江 杭州 310016

CRISPR/Cas9系统是强大的基因编辑工具,近几年得到广泛的应用[1-4]。近期,研究者将APOBECs(members of the apolipoprotein B mRNA-editing enzyme,catalytic polypeptide-like)蛋白和CRISPR系统紧密的联系在了一起[5-7]。我们的前期研究发现应用Cas9-D10A/sgRNA进行基因编辑时,APOBEC-3B蛋白能够引入非目的突变[5],因此有必要优化Cas9-D10A/sgRNA系统的保真性。应用Cas9-D10A/sgRNA进行基因编辑时,D10A能够切割双链DNA的单链后形成切口样结构,从而暴露出DNA单链,而APOBECs蛋白具有胞苷脱氨酶活性,能够攻击单链DNA的胞嘧啶脱氨使其变为尿嘧啶,使单链DNA发生碱基突变。本研究根据上述现象提出以下理论设想:对Cas9-D10A/sgRNA系统设计csgRNA(chaperone sgRNA),使D10A进行基因编辑时产生的DNA单链结构能够与csgRNA形成碱基互补配对,从而形成双链样结构,降低APOBECs的攻击,以减少APOBECs对Cas9-D10A进行的基因操作形成的单链DNA引入突变,从而降低突变率。

1 材料和方法

1.1 质粒构建与引物设计 Cas9(pST1374-N-NLSFlag-linker-Cas9)、D10A(pST1374-N-NLS-flaglinker-D10A)、H840A(pST1374-N-NLS-flag-linker-H840A)和dCas9(pST1374-N-NLS-flag-linker-dead Cas9)等表达载体由上海科技大学黄行许教授馈赠,sgRNA表达载体由pGL3-U6-sgRNA-PGK-Puro(Addgene 51133)构建完成;sgRNA4和FANCF打靶位点的sgRNAs序列和其各自的上下游PCR引物序列见表1。

表1 sgRNAs序列和引物序列

1.2 细胞培养和转染 293FT、293FT-A3B和293FTA3Bm细胞系由上海科技大学陈佳教授馈赠,所有细胞均在DMEM(10566,美国Gibco公司)+10% FBS(16000-044,美国Gibco公司)、37 ℃条件下培养;细胞以2×105/孔,接种于12 孔细胞培养板,8 h后用LipofectamineTM2000(美国Thermo Fisher Scientific 公司)转染,转染试剂包括125 μL Opti-MEM+2 μg Cas9表达载体+1 μg sgRNA表达载体+3 μL Lipofectamine,24 h后加终质量浓度为 1 μg/mL的嘌呤霉素(ant-pr-1,美国InvivoGen公司)药筛,48 h后用酚氯仿法抽提基因组DNA。

1.3 T7EN1酶切实验 首先用PCR方法扩增sgRNA打靶位点上下游DNA序列,PCR反应程序如下:94 ℃,5 min;(98 ℃,10 s,72~62 ℃,每循环降低1 ℃,15 s;72 ℃,30 s)10个循环,(98 ℃,10 s;……

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