APP下载

芪参益气滴丸对急性心梗大鼠α7nAChR抗炎通路的影响

2021-05-14严孝花

西南国防医药 2021年3期
关键词:滴丸抗炎益气

严孝花,卫 国

AMI因发病率高、预后差,严重威胁我国人民的健康[1]。AMI作为世界范围内主要的死亡原因[2],目前在我国死亡率总体呈上升态势并且趋于年轻化趋势,2016年AMI死亡率城市为58.69/10万,农村为74.72/10万[3]。尽管目前随着医疗技术的进步,AMI的住院病死率降低了,但AMI后心力衰竭、心率失常及猝死等再发急性心血管疾病的风险仍非常高,因此AMI防治任务仍非常艰巨。

中医医学很早就有关于AMI方面的认识和治疗方法,并且中医药在防治心血管疾病方面具有自己的临床优势[4-5]。随着现代中药医学的发展,越来越多的现代中药制剂被应用于临床,芪参益气滴丸作为一款现代中药制剂,目前广泛应用于治疗心血管疾病,能显著改善AMI患者的预后[6]。尽管目前芪参益气滴丸在AMI防治方面效果显著,多个研究也从不同的研究方向对其作用机制进行了探讨,但其作用机制仍不是十分清楚。本研究通过建立大鼠AMI模型,应用芪参益气滴丸予以治疗后,观察其对AMI大鼠α7nAChR抗炎通路的影响,来探讨其作用机制。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂 无特定病原体(SPF)级SD健康成年雄性大鼠,体重(280±20)g购自西安交通大学动物实验中心(批号:20181113)。IL-6、α7nAChR、NFκB p50、NF-κB p65抗体及RNA提取试剂盒(英国,Abcam);TakaRa RNA PCR Kit(AMV)Ver.3.0试剂盒(大连TakaRa);TUNEL检测试剂盒(北京鼎国);HE染色试剂盒及Masson染色试剂盒(上海江莱生物);IL-6,TNF-α、NF-κB p50和NF-κB p65的TaqMan探针,由安诺伦(北京)生物科技有限公司代理设计。BIO-RAD电泳、转膜系统、ChemiDoc TM XRS+胶成像仪器(美国BIO-RAD公司),Nikon Tis型荧光显微镜及配套分析软件NIS-Elements Software BR(日本尼康公司),Vevo2100小型动物超声仪(加拿大Visual Sonics公司)。芪参益气滴丸购于天士力制药集团股份有限公司(批号:国药准字Z20030139,规格为0.5 g/袋)。

1.2 动物模型制备及分组 选用45只成年雄性SD大鼠,随机分为假手术组,模型组及治疗组,每组15只。模型组及治疗组采用结扎左冠状动脉前降支建立AMI动物模型,按文献报道的造模方法建立动物模型[7],假手术组仅手术不结扎血管左冠状动脉前降支,余步骤同前。术后第2 d,治疗组灌芪参益气滴丸40 mg/(kg.d),假手术组及模型组给予灌4 ml/(kg.d)等量重量盐水,连用28 d。各组在第28 d结束后,戊巴比妥40 mg/kg腹腔注射麻醉,先行超声心动图检查,而后腹主动脉穿刺抽血及摘取心脏,处死大鼠。

1.3 检测指标

1.3.1 超声心动图检测心脏结构及心功能 按文献报道的超声心动图检测方法进行检测[8]。

1.3.2 心肌组织病理学观察 取处死大鼠心脏,沿左心室长轴中段横断面切片,制作4μm厚石蜡切片,分别HE染色及Masson染色,在光镜下观察分析心肌组织形态学变化情况。

1.3.3 TUNEL染色检测心肌细胞的凋亡 取以上各组制备的石蜡切片,按照TUNEL染色试剂盒提供的方法步骤染色,DAPI细胞核复染。荧光显微镜下观察,每张玻片选10个非重复视野,计数阳性细胞个数。

1.3.4 酶联免疫吸附试验法检测血清IL-6及TNF-α的表达 腹主动脉采血后,3000 r/min离心15 min,取血清,艾本德(Eppendof)管分装冻存于-80℃冰箱备检。采用ELISA法按试剂盒说明书要求进行检测大鼠血清中IL-6及TNF-α的水平。

1.3.5 蛋白印迹法检测心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65蛋白的表达取0.2 g心尖部心肌组织,提取心肌蛋白,经定量、上样、电泳、转膜、一抗及二抗封闭、发光,显影条带图像扫描,应用Scion Image软件测量分析。

1.3.6 实时定量PCR(qPCR)检测IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65 mRNA的表达

根据RNA提取试剂盒操作说明进行操作,TaqMan探针,引物设计及PCR条件(表1)。提取心肌组织总RNA,用RNA PCR Kit(AMV)Ver.3.0试剂盒逆转录为cDNA。PCR条件:94℃,4 min,55℃,30 s,60℃,30 s,40个循环,凝胶成像系统摄像扫描并分析。

表1 实时定量(PCR)引物设计及条件

1.4 统计学方法 应用SPSS17.0统计软件分析数据,计量资料以−s表示,多组间均数比较采用one-wayANOV分析,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组大鼠的生存情况比较 造模成功后,观察各组大鼠的病死率情况,假手术组,病死率为13.3%,模型组与治疗两组大鼠存活率无明显差异(图1)。

图1 各组大鼠生存情况

2.2 各组大鼠心脏结构及心功能比较 28 d后各组大鼠行超声心电图检查提示,模型组与治疗组整体大鼠左室扩大,心脏收缩功能降低,与假手术组比较有明显差异(P<0.05)。治疗组与模型组比较,治疗组大鼠LVDd、LVDs均显著降低(P<0.05),LVEF显著提高(P<0.05),见表2。

表2 各组大鼠心脏结构和心功能比较(−s)

表2 各组大鼠心脏结构和心功能比较(−s)

注:与假手术组比较,①P < 0.05; 与模型组比较,②P <0.05

组别 LVDd(mm) LVDs(mm) LVEF(%)假手术组 5.78±0.73� 2.73±0.79� 80.35±3.53�模型组 7.15±1.68�� 5.82±1.57�� 42.26±13.74�治疗组 6.46±1.49���� 3.90±1.38���� 61.49±16.28����

2.3 各组大鼠心肌组织病理学观察 HE染色及Masson染色显示假手术组大鼠心肌组织结构基本正常,模型组大鼠心肌组织结构不规则,模糊,肌纤维坏死、断裂、萎缩、排列不整齐,巨噬细胞等大量炎性细胞浸润,心肌间纤维组织增生明显;治疗组大鼠心肌组织结构基本规则,肌纤维坏死、萎缩及断裂较少,排列较整齐,有少量的巨噬细胞等炎性细胞浸润,心肌间纤维组织增生不明显。

2.4 各组大鼠心肌细胞凋亡指数比较 与假手术组比较,模型组及治疗组心肌细胞凋亡指数显著增加(P<0.05);模型组与治疗组比较,治疗组大鼠心肌细胞凋亡指数明显降低(P<0.05),见表3。

2.5 各组大鼠血清中IL-6及TNF-α的表达比较

与假手术组比较,模型组及治疗组血清中IL-6及TNF-α的表达明显增加(P<0.05);模型组与治疗组比较,治疗组大鼠血清中IL-6及TNF-α的表达显著下降(P<0.05),见表3。

表3 各组大鼠心肌细胞凋亡指数、血清IL(−s)

表3 各组大鼠心肌细胞凋亡指数、血清IL(−s)

注:与假手术组比较,①P < 0.05;与模型组比较,②P < 0.05

组别 心肌细胞凋亡指数(%) IL-6(ng/L) TNF-α(ng/L)假手术组 0.58±0.43 7.04±1.24 2.35±0.57模型组 17.35±3.34� 23.42±3.54� 5.22±0.72�治疗组 10.59±4.29��� 14.62±4.62��� 3.76±0.85���

2.6 各组大鼠心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65蛋白的表达比较 与假手术组比较,模型组及治疗组心肌组织中IL-6、TNF-α、NF-κB p50及NF-κB p65蛋白的表达明显增加(P<0.05),而α7nAChR蛋白明显下降(P<0.05);模型组与治疗组比较,治疗组大鼠心肌中IL-6、TNF-α、NF-κB p50及NF-κB p65蛋白的表达显著下降(P<0.05),而α7nAChR蛋白表达显著升高(表4)。

表4 各组大鼠心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65蛋白表达的灰度值比较(−s)

表4 各组大鼠心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65蛋白表达的灰度值比较(−s)

注:与假手术组比较,①P < 0.05;与模型组比较, ②P < 0.05

组别 IL-6 TNF-α α7nAChR NF-κB p50 NF-κB p65假手术组 0.81±0.23 0.76±0.26 0.76±0.12 0.54±0.15 0.47±0.21模型组 1.32±1.02� 1.56±0.54� 0.42±0.21� 0.87±0.26�� 0.84±0.31��治疗组 1.06±0.62��� 1.22±0.59��� 0.56±0.24��� 0.64±0.21��� 0.71±0.25���

2.7 各组大鼠心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65 mRNA的表达比较 与假手术组比较,模型组及治疗组心肌组织中IL-6、TNF-α、NF-κB p50及NF-κB p65 mRNA的表达明显增加(P<0.05),而α7nAChR mRNA明显下降(P<0.05);模型组与治疗组比较,治疗组大鼠心肌中IL-6、TNF-α、NF-κB p50及NF-κB p65 mRNA的表达显著下降(P<0.05),而α7nAChR mRNA表达显著升高(表5)。

3 讨论

研究发现,炎性反应程度与AMI预后密切相关,抑制炎症反应可以明显改善AMI预后[9-10],也是一个新的治疗靶点。胆碱能抗炎通路是近年来发现的一种内源性神经免疫调节通路,其作用机制与刺激通过传出迷走神经未稍释放乙酰胆碱,并与免疫细胞表面α7nAChR特异性结合,进而抑制NF-κB信号通路,减少炎性因子的释放有关。NF-κB最先由David Schatz发现的一种核蛋白因子,不仅存在于免疫细胞中,也存在于血管内皮细胞、平滑肌细胞和心肌细胞中。通常情况下,IκB与NF-κB p65(含DNA结合位点)、p50(含移位信号)两个亚单位的二聚体以失活状态存在于细胞质中,两个亚单位受IκB抑制分子的调节。AMI发生时,IL-6、TNF-α等促炎因子表达增多,细胞质内的IκB激酶被激活,IκB部分被降解,移位信号和DNA结合位点显露,含有两个亚单位的二聚体被迅速转移进入细胞核内激活靶基因,促进了多种炎性因子如IL-1、IL-2、IL-6、IL-8及TNF-α等基因的表达,大量炎性介质释放,从而诱导过度炎症反应的发生,造成心肌损伤。通过干预α7nAChR通路,可以加重或减轻AMI损伤引起的炎症反应所致的心肌细胞凋亡,促进或加重心室重构,改善/恶化心功能。

表5 各组大鼠心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65 mRNA相对表达强度比较(−s)

表5 各组大鼠心肌组织中IL-6、TNF-α、α7nAChR、NF-κB p50及NF-κB p65 mRNA相对表达强度比较(−s)

注:与假手术组比较,①P < 0.05;与模型组比较, ②P < 0.05

组别 IL-6 TNF-α α7nAChR NF-κB p50 NF-κB p65假手术组 0.55±0.16 0.64±0.13 0.73±0.27 0.60±0.21 0.56±0.24模型组 2.12±1.14� 1.76±0.79� 0.32±0.19� 1.37±0.35� 1.11±0.38�治疗组 1.26±0.62��� 1.17±0.52��� 0.46±0.31��� 0.84±0.39��� 0.75±0.28���

本研究发现应用芪参益气滴丸可以减轻AMI后心肌细胞的凋亡,改善心脏结构,提高心功能,减轻AMI损伤引发的炎症反应。应用芪参益气滴丸进行治疗AMI的大鼠后,大鼠血清及心脏组织中α7nAChR的表达显著升高,炎症因子IL-6、TNF-α表达明显减少,提示其抗炎作用的发挥与α7nAChR抗炎通路有关。目前研究发现,芪参益气滴丸可通过抑制胞质型磷脂酶A2(cPLA2)的合成及下调HMGB1表达,减少或下调下游炎性因子的释放[11-12];也可通过TLR-4/NF-κB信号通路,下调炎性因子的表达[13]。由于中药制剂成份复杂的特性,在目前的现有的研究中(包括本研究)共同存在不足之处,没有明确芪参益气滴丸中所含具体的哪种和/或多种化学成份单独或共同发挥了抗炎作用。由此可见,芪参益气滴丸抗炎作用机制非常复杂,是通过多因素、多途径、多靶点启动内源性的调节机制,发挥其强大的抗炎作用。

尽管目前的研究共同显示了芪参益气滴丸在大鼠AMI后发挥的抗炎作用及不同的抗炎机制,但其相关机制中,是否以胆碱能抗炎通路机制占优势,还是其他通路机制占优势,现不明确,也未见研究,提示这将是下一步的研究工作的方向。

猜你喜欢

滴丸抗炎益气
秦艽不同配伍的抗炎镇痛作用分析
穿心莲内酯滴丸
牛耳枫提取物的抗炎作用
短柱八角化学成分及其抗炎活性的研究
UPLC-MS/MS法结合模式识别同时测定芪参益气滴丸中11种成分
HPLC法测定蒙药新Ⅰ号滴丸中没食子酸的含量
熏硫与未熏硫白芷抗炎镇痛作用的对比研究
益气温阳通便方治疗老年性便秘31例
厚朴花滴丸质量标准的研究
益气化瘀解毒汤治疗冠心病PCI术后再狭窄30例