◆作者：侯展鹏 高智均 江丹莉 潘建秋 黄运茂 付新亮

◆单位：1.仲恺农业工程学院动物科技学院；2.广东省水禽健康养殖重点实验室

雏鹅痛风是由新型鹅星状病毒（Goose Avastrovirus,GoAstV）引起的一种以雏鹅的心包、肾脏、肝脏等内脏及关节出现大量尿酸沉积为主要特征的急性传染性疾病。该病主要发生于5～20日龄雏鹅，感染的雏鹅精神沉郁、食欲减退、消瘦、四肢瘫痪等，严重者死亡，死亡率高达30%。研究表明，在不同品种、不同饲养方式的种鹅群中均有发生。由于该病的致病机制尚不明确，导致AstV在鹅群中迅速传播，给水禽养殖业带来了严重的损失。目前对于鹅新型痛风并无有效的治疗方案，为此应加强生物安全和综合防控措施，以保障我国养鹅业的健康可持续发展。

1 病原学

星 状 病 毒（Avastrovirus，AstV）属于星状病毒科星状病毒属，为单股正链RNA病毒，直径约为28-30nm。该病毒粒子无囊膜结构，核衣壳呈二十面体球形对称结构，在电镜观察到该病毒呈五角或六角星状，因此命名为星状病毒。该病毒基因组具有三个开放阅读框(ORF1a、ORF1b和orf2b)，5'和3'的非编码区以及poly-A组成。在ORF 1a和ORF 1b(AAAAAC)的重叠区都有保守的滑序列，在ORF 1a和ORF 1b指导ORF 1ab融合蛋白的合成，间隔区存在于绝大多数鸟类星状病毒的开放阅读框1b的终止密码子和开放阅读框2的起始密码子之间，而重叠在少数的开放阅读框中ORF 1a和ORF 1b编码非结构蛋白，其对基因组复制有反应，ORF2编码病毒体形成所需的病毒衣壳蛋白。根据星状病毒感染动物类型的不同可划分为：哺乳类星状病毒（Mamastrovirus，MAstV）和禽星状病毒（Avastroviruses，AAstV）两个属，其中AAstV，由33个不同的病毒基因型所构成；MAstV包含7种基因型。禽星状病毒的宿主包括：火鸡、鸡、鸭、鸽等鸟类，主要引起的胃肠道疾病，并导致鸡、鸽肾炎以及鸭病毒性肝炎的发生。GoAstV与其他种属星状病毒同源性均小于70%，遗传距离较远，根据基因组序列的差异，可能存在的致病性有显著差异。由于星状病毒在自然环境下非常稳定，对酚类、季铵盐类等大多数常用消毒药物不敏感，对热和酸等条件比较耐受，但能被0.3 %甲醛、0.1 %的β-丙内酯、90 %甲醇等消毒剂彻底灭活。

2 流行病学

GoAstV具有广泛的组织噬性，病死雏鹅的肾脏、心脏、大脑、肝脏等均可分离出病毒。其传播途径主要是经过消化道感染，即粪-口途径传播，其中被星状病毒污染的水源、食物均可成为传染源，为其他物种的潜在感染和病毒的跨宿主传播提供有利条件。雏鹅痛风的发生无明显季节性，由于空气温度、湿度偏高，同时雏鹅抵抗力低下，饲养环境差、饲养管理不当等，给病毒的传播提供了非常有利的条件。但雏鹅痛风在其他月份某些地区均能继续流行，表明GoAstV还存在其他传播方式，通过大量研究数据表明，AstV除了通过粪-口途径传播以外，还可以通过直接接触传播和间接接触传播。

3 临床症状与病理变化

3.1 临床症状

雏鹅感染GoAstV后，病雏会出现精神不振、羽毛松乱，行动迟缓、食欲相对正常，消瘦、排灰白色水样粪便，并污染肛门附近的羽毛，发病后期食欲减退渐至废绝，关节肿胀、跛行、卧地不起、不愿走动，部分病鹅会出现单脚站立或呈现蹲姿，喙部尿酸盐沉积、蹼苍白最终衰竭死亡,病程大概持续3-7d。

3.2 病理变化

GoAstV具有广泛组织嗜性，导致机体可引起病雏体内多组织器官病变，剖检可见心脏和肝脏表面被大量白色的尿酸盐渗出物所覆盖，肝脏肿大、淤血，心包、气囊上有豆腐渣样尿酸盐沉着，肾脏肿大，色泽变淡，在表面沉积白色斑点状尿酸盐；输尿管集聚过多的尿酸盐而发生阻塞，明显肿胀变粗。部分病死鹅脾脏、肝脏、肾脏、肠系膜等表面覆盖一层白色薄膜；颈部皮下、腿部肌肉及腿部关节腔中出现点状或者片状尿酸盐沉积。

4 诊断

根据病因、病史、特征性症状和剖检变化可作出初步诊断为雏鹅痛风，雏鹅痛风虽然难以根据流行病学，临床症状、病理变化确定其病因，但引起雏鹅痛风的因素大多是饲养管理条件差，钙磷比例失衡，维生素A缺乏、病毒感染、寄生虫感染。若需确定雏鹅痛风的病因，还需要通过实验室进行进一步的诊断，目前实验室的诊断方法包括电镜法、病毒分离鉴定和血清学试验、分子生物学诊断等。

4.1 电镜法

电镜法是最原始用于检测星状病毒的方法，通过电镜直接观察病毒的形态结构和病毒大小的特点进行直接判断，若从样品中观察到呈五角或六角的星状带纤突、直径约为29 nm的病毒颗粒，基本可以确定为星状病毒（AAstV），此方法较为直观，但灵敏度与特异性不强。

4.2 病毒分离鉴定

采集患病病鹅肝、肾、脾等内脏器官进行PBS进行匀浆处理，接种到9～13日龄鹅胚的尿囊腔或卵黄囊中，一般传代培养到第三代时，鹅胚出现死亡，可见死亡鹅出现胚尿囊膜增厚，胚体出血明显的现象。组织病理学检查可见肾脏上皮细胞出现变圆、聚团、脱落等明显的病变。

4.3 血清学检测法

由于目前尚无GoAstV的疫苗应用，若血清中检测出GoAstV的抗体，则一定存在GoAstV的感染。酶联免疫吸附试验（ELISA）与血清中和实验（NT）是检测星状病毒最常用的血清学检测方法，其中ELISA具有快速、简便、特异性强的特点。Zhao等建立了一套用于检测鸭星状病毒血清抗体的间接ELISA检测技术，如今已有市面上已有检测禽星状病毒的ELISA试剂盒，为快速诊断禽星状病毒提供了更为便捷的方式。

4.4 分子生物学方法

邱思语等，建立了GoAstV的qPCR检测方法，SYBR Green I实时荧光定量PCR与普通PCR相比，SYBR Green I实时荧光定量PCR具有灵敏度高、特异性强的特点，其灵敏度是普通PCR的100倍，且该检测方法对鹅其他病毒性疾病的病原如副粘病毒、细小病毒检测均无反应，是检测GoAstV的有效手段。

5 疫苗研究进展

目前，市面上尚无可以有效预防GoAstV的疫苗，且常规抗菌、抗病治疗方法无明显效果，由于GoAstV不容易培养，成本相对较高以及病毒毒价不高，导致GoAstV疫苗产品质量高低不一；根据奚雨萌等，研究表明，对患有GoAstV的病雏及时接种相应抗体以及使用抗生素可以有效的防控态势，减少经济损失；张清水，将GoAstV通过连续传代培养后，成功选育出弱毒株，免疫接种实验结果表明，免疫后的雏鹅产生较高的抗体水平，且保护率为100%。Xu等，构建了以新城疫病毒为载体表达GoAstV Cap蛋白的载体疫苗，该疫苗能较好的表达GoAstV Cap蛋白，在其免疫攻毒保护试验结果表明，该疫苗对易感雏鹅可产生有效的免疫保护，这为后续疫苗的研发提供了新的思路。

6 综合防控措施

6.1 强化生物安全，切断传播途经

由于该病暂无疫苗和特效药物进行治疗，防控GoAstV主要依靠及早发现、及早扑灭，坚持以预防为主的措施。各养殖场应采取封闭式的管理模式，加强完善防疫流程，实施全进全出制度。由于GoAstV主要通过消化道、生殖道进行传播，因此我们应保证饲养环境干净卫生，定期消毒及时对粪便进行清理，同时加强精细化管理，养鹅场需要定期通风换气加速空气流动，防止氨气、硫化氢等有害气体累积，降低雏鹅抵抗力，导致GoAstV容易通过呼吸道进行传播。鹅场进出道口要有消毒设施，对进出的外来车辆必须进行消毒，对外来人员需进行消毒隔离方可进入养殖场，避免外界的病原体进入养殖场，从源头上切断传染源。

6.2 提高雏鹅抗病能力

根据鹅生长各阶段营养需求合理调整饲料搭配，确保饲料营养全面，为防止雏鹅痛风的发生，不随意提高饲料中蛋白质和钙的含量，确保雏鹅能及时排出尿酸等蛋白代谢产物，避免其在体内的积累，控制好矿物质和维生素水平，同时确保饮用水充足、不饲喂霉变饲料，尽可能增加青绿饲料在饲喂料中的占比；合理的饲养密度，保证雏鹅有一定的活动空间，合理加强雏鹅运动，保证雏鹅每天有充足的运动量，以增强雏鹅体质，提高雏鹅对疾病的抵抗力；这些措施可以有效降低营养代谢型痛风降低营养代谢型痛风的发。

6.3 制定隔离措施，降低疾病传播风险

若发现疑似病例，及时进行严格消毒隔离，防止该病向外传播扩散，并限制人员的进出鹅舍，对鹅场的墙壁、地面、料线、水线等设备设施进行消毒，所有的垃圾和粪便都应无害化处理，做到从根源上切断传播途经，并对发病雏鹅采取对症治疗的方案，在饲料和水中添加小苏打和电解多维，进一步加速体内尿酸盐的代谢和排出，同时可使用保肝护肾的药物进行调理。