□ 鲍宗源 布振钱 郝晓妤 吕晓萌 孙靖莹 东北农业大学理学院

由于能够特异性结合单糖、多糖和糖蛋白，植物凝集素在医学、材料科学和农学方面发挥了巨大的作用和价值[1]。紫花油豆（菜豆）是我国东北地区分布的一种地方性物种。其中蛋白质含量达20%以上。这些蛋白质其合理的氨基酸组成和较高的凝集素含量，使其具有较高的营养价值和生物学价值。

作为传统的蛋白质分离方法，硫酸铵沉淀法也用于提取凝集素。此方法的缺点是它耗时长且产量低[2]。亲和层析法大大提高了凝集素的产量，但其工业化成本高且难以扩大生产[3]。因此，建立一种快速、经济高效的凝集素提取方法，以提高选择性和产量，降低成本尤为重要。

目前，双水相提取技术也被尝试用于分离纯化凝集素。2010年，Nascimento[4]研究了Canavaliabrasiliensis凝集素（ConBr ）在PEG600/磷酸盐体系以及PEG600/柠檬酸钠体系中的分配。Soares[5]研 究 了 在 PEG8000/柠檬酸盐体系中，从Canavaliaensiformis种子的粗提取物中提取和纯化ConcanavalinA(ConA)。Nascimento[6]采用PEG8000/柠檬酸钠体系从Cratyliamollis种子中提取凝集素。结果表明，PEG/盐双水相体系在提取凝集素方面具有很大的优势。

本项研究，以PEG600/(NH4)2SO4双水相体系作为提取工具，以紫花油豆为原料，建立一种直接从豆类粗提液中提取凝集素的方法。

1 材料与方法

1.1 材料及试剂

紫花油豆种子，哈尔滨香坊区贡宾种子公司；聚乙二醇600（PEG600），天津致远化学试剂有限公司；氢氧化钠，天津市耀华化学试剂有限公司；氯化钠（分析纯），天津市凯通化学试剂有限公司；硫酸铵（分析纯），上海成捷化学有限公司；福林酚试剂（分析纯）、牛血清白蛋白，北京索莱宝科技有限公司。

1.2 仪器与设备

紫外可见分光光度计（型号：T6新世纪）/北京普析通用仪器有限责任公司；电泳试剂盒/北京索莱宝科技有限公司；Mini-PROTEAN电泳仪/Bio-RAD公司。

1.3 试验方法

1.3.1 凝集素的粗提取

挑选籽粒饱满的紫花油豆种子，用粉碎机粉碎，将充分粉碎后的紫花油豆种子过50目筛，得到的粉状物用1∶6（w/v）石油醚脱脂处理，重复3次后在4℃下使用0.02mol/L磷酸盐溶液浸提12 h，浸提液离心，10 000 rpm离心35min，得到的上清液作为双水相提取的原料，4℃储存。

1.3.2 双水相萃取

将 90%（w/w）PEG600溶 液、25%（w/w）(NH4)2SO4溶 液、1mL粗提液依次加入10mL带有刻度的玻璃离心管中，使体系总体积为5mL，再加入NaCl固体，置于涡流混匀器上混匀后，使用NaOH溶液调节体系的pH值，在2000g离心10min后完成相分离。测量相体积后，收集上相以测定蛋白质浓度和进行电泳分析。

1.3.3 Folin's酚法测定凝集素的含量

使用BSA（牛血清白蛋白）作为标准，在650nm读取样品的吸光度。

1.3.4 测定血凝活性

在微量滴定板中进行凝血活性（HA）的测定。将凝集素（50μL）用中风生理盐水溶液进行2倍系列稀释，添加50μL的2%兔红细胞悬浮液。当阴性对照完全沉积时，在室温下45 min后读取结果。

1.3.5 凝集素特异性活力计算

式中：H代表特异性活力，Ct代表粗蛋白溶液中蛋白质的浓度。

1.3.6 双水相体系参数的定义

式中：Ks代表上相蛋白得率，Cs代表上相蛋白浓度，Vs代表上相蛋白体积，mt代表粗蛋白质量，Hs代表上相蛋白特异性活力，Ht代表粗蛋白特异性活力，Gs代表上相蛋白纯化倍数。

2 双水相单因素试验结果与分析

2.1 (NH4)2SO4质量分数对提取效果的影响

不同浓度(NH4)2SO4上相纯化倍数和得率，如图1所示。

由图1可知，上相蛋白得率与纯化倍数随着(NH4)2SO4质量分数的增加而增加，当(NH4)2SO4达到25%时纯化倍数与蛋白得率达到最大值，随着(NH4)2SO4继续增加，上相蛋白得率与纯化倍数呈下降趋势。分析其原因为：当(NH4)2SO4为15%时，由于体系中离子强度较低两相之间的疏水作用力差异性较小，此时蛋白大部分分配到盐相；随着(NH4)2SO4的增加，体系中离子强度增加，疏水作用力增强，蛋白在盐相中的溶解性降低，迫使蛋白由下相向上相移动，所以上相蛋白得率和纯化倍数都逐渐增加，当(NH4)2SO4为25%时二者达到最大值。当(NH4)2SO4大于25%时，高浓度的盐溶液会破坏蛋白表面水化膜，蛋白溶解度降低，使部分凝集素蛋白沉淀出来，所以上相蛋白得率与纯化倍数降低。

2.2 PEG600质量分数对提取效果的影响

不同浓度PEG600上相纯化倍数与得率，如图2所示。

由图2可知，上相蛋白得率与纯化倍数随PEG600增加而增加，当PEG600为90%时二者达到最大值，之后随着PEG600的继续增加，上相蛋白得率与纯化倍数呈下降趋势。当PEG600为50%时，不能够形成双水相体系；当PEG600为60%时，两相之间疏水作用力差异性较小，PEG600相剥夺水分子能力弱，下相中盐离子浓度较小，下相中盐析作用较小，不能推动蛋白由一相向另一相移动；随着PEG600的增加，PEG600相剥夺水分子能力增强，上相体积增大，下相体积减小，两相之间疏水作用力增大，促使凝集素蛋白由下相向上相移动，使上相蛋白得率与纯化倍数随之增加；当PEG600为100%时，上相中的空间斥力作用加强，体系的黏度增加，下相中的凝集素蛋白分子停留在两相界面处，在两相之间形成一层乳化层，从而阻碍了凝集素蛋白分子在相间的传递和扩散，降低了上相蛋白得率与纯化倍数。

2.3 pH值对提取效果的影响

不同pH值上相纯化倍数与得率，如图3所示。

由图3可知，上相蛋白得率与纯化倍数随pH值增加而上升，在pH为7.5时上线蛋白得率与纯化倍数达到最大，之后随着pH值增大，上线蛋白得率与纯化倍数同时下降。pH值的变化一方面影响盐离子的种类，另一当面改变蛋白质所带电荷的状态，当pH值较低时，体系pH值处在凝集素蛋白的等电点附近，凝集素蛋白聚集在一起，形成沉淀，同时两相之间不能形成跨越界面的电位差，不能促使凝集素蛋白从一相向另一相移动；随着pH值的增加，体系pH值远离蛋白的等电点，两相之间蛋白分配越不均匀越有利于蛋白从一相向另一相移动，当pH值达到7.5时两者达到最大值；随着pH值的继续增大，碱性条件下铵根离子与氢氧根离子结合，释放出氨气，溶液中离子浓度降低，推动蛋白移动的作用力减小，使得上线蛋白得率与纯化倍数下降。

图1 不同浓度(NH4)2SO4上相纯化倍数和得率

图2 不同浓度PEG600上相纯化倍数与得率

图3 不同pH值上相纯化倍数与得率

3 结论

研究得到PEG600/(NH4)2SO4双水相萃取紫花油豆中凝集素的最优条 件 为（ 体 系 共5mL）：3mL的25%(NH4)2SO4溶 液（w/w），1mL的90%PEG600溶液（w/w），粗提液体积1mL，体系pH值为7.5，此时上相蛋白得率为42.32%，纯化倍数为3.08。

[1]Li J, Qu X, Payne G F, et al.Biospecific Self-Assembly of a Nanoparticle Coating for Targeted and Stimuli-Responsive Drug Delivery[J]. Advanced Functional Materials,2015(9):1404-1417.

[2]Zhang J, Shi J, Sanja I,et al. Biological Properties and Characterization of Lectin from Red Kidney Bean (Phaseolus Vulgaris)[J]. Food Reviews International,2008(1):12-27.

[3]Nascimento K S, Cunha A I, Nascimento K S, et al. An overview of lectins purification strategies[J].Journal of Molecular Recognition,2012 (11):527-541.

[4]Nascimento K S, Rosa P A J,Nascimento K S, et al. Partitioning and recovery of Canavalia brasiliensis lectin by aqueous two-phase systems using design of experiments methodology[J].Separation & Purification Technology,2010(1):48-54.

[5]Soares P A, Nascimento C O, Porto T S, et al. Purification of a lectin from Canavalia ensiformis using PEG-citrate aqueous two-phase system.[J].J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci,2011 (5):457-460.

[6]Nascimento C O, Soares P A G, Porto T S, et al. Aqueous twophase systems: new strategies for separation and purification of lectin from crude extract of Cratylia mollis,seeds[J].Separation & Purification Technology,2013(116):154-161.