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胰腺癌Kras基因突变与Glut1高表达协同促进肿瘤发生

2015-03-23吴丹王彩莲李春妍郑士亚

东南大学学报(医学版) 2015年6期
关键词:基因突变胰腺癌胰腺

吴丹,王彩莲,李春妍,郑士亚

(1.东南大学医学院附属江阴医院 肿瘤科,江苏 江阴 214400; 2.东南大学附属中大医院 肿瘤科,江苏 南京 210011; 3.南京医科大学,江苏 南京 210029)

·论 著·

胰腺癌Kras基因突变与Glut1高表达协同促进肿瘤发生

吴丹1,王彩莲2,李春妍3,郑士亚2

(1.东南大学医学院附属江阴医院 肿瘤科,江苏 江阴 214400; 2.东南大学附属中大医院 肿瘤科,江苏 南京 210011; 3.南京医科大学,江苏 南京 210029)

目的:探讨胰腺癌组织中Kras基因点突变的表达以及葡萄糖转运蛋白-1(Glut1)表达在促进癌细胞恶性增生中的意义及作用,研究两者之间的相关性。方法:收集46例胰腺癌患者组织蜡块,应用免疫组织化学染色技术检测Glut1在胰腺癌中的表达,荧光定量PCR测序法检测胰腺癌标本中Kras基因点突变率。结果:46例胰腺癌中Glut1的阳性表达为40例(86.9%),正常癌旁组织中Glut1不表达,两者差异有统计学意义(P<0.01)。Glut1的表达与年龄、肿瘤大小、肿瘤部位相关(P<0.05),与性别、淋巴结转移、神经侵犯、病理分级、临床分期、病理类型无关。在46例胰腺癌患者中有26例存在Kras基因点突变(56.5%),其中24例12密码子突变(G34D 3例,G35D 21例);2例13密码子突变(G38D 1例,C39D 1例)。Kras基因点突变与肿瘤大小、神经侵犯相关(P<0.05),与年龄、性别、淋巴结转移、肿瘤部位、临床分期、病理类型、病理分级无关。胰腺癌中Glut1蛋白呈高表达时,Kras基因存在明显突变,有明显相关性(r=0.99,P<0.05)。结论:Glut1高表达与Kras基因异常表达可能协同促进了胰腺癌的恶性病变。

胰腺癌; Kras基因; 葡萄糖转运蛋白-1; 糖酵解

胰腺癌是恶性程度极高的癌症之一,早期诊断困难,疗效差,总体死亡率高达98%[1],中位生存期为诊断后4~6个月,5年生存率仅为5%[2]。掌握胰腺癌发生、发展的分子生物学机制并针对特定通路进行治疗的手段,为胰腺癌的早期诊断以及治疗提供有益的线索尤为重要。

我们通过运用免疫组织化学染色及PCR方法分别检测46例胰腺癌组织标本中葡萄糖转运蛋白-1(Glut1)的表达和Kras(Kirsten rat sarcoma viraloncogene homolog)基因突变,分析两者之间的相关性,在分子水平上初步探讨胰腺癌发生发展的机制,为胰腺癌的早期诊断及治疗提供理论依据。

1 资料与方法

1.1 一般资料

来自江阴市人民医院2005年1月至2014年12月间经外科手术切除的胰腺癌组织石蜡标本,共46例。所有病例资料完整,均经病理组织学确诊,按照胰腺癌TNM分期标准进行分期[3]。其中男25例,女21例;年龄37~84岁,中位年龄66岁;高分化腺癌(Ⅰ级)10例,中分化腺癌(Ⅱ级)21例,低分化腺癌(Ⅲ级)15例;发生淋巴结转移15例。病理分期:Ⅰ期25例,Ⅱ期21例。同时切取癌旁的胰腺组织标本作为正常胰腺组织对照。

1.2 主要试剂

兔抗人Glut1多克隆抗体(南京巴傲得生物科技有限公司),免疫组化EliVision plus试剂盒(福州迈新生物技术开发有限公司),人类Kras基因突变检测试剂盒(苏州科贝生物技术有限公司)。

1.3 胰腺癌组织及正常组织中Glut1免疫组化检测

(1) 采用免疫组化S-P法,参照EliVision plus试剂盒说明书进行,具体如下:取胰腺癌组织,连续石蜡切片,60 ℃烘烤2 h,二甲苯脱蜡,然后水化,0.5%过碘酸处理后,予PBS冲洗;接着浸入柠檬酸缓冲液修复液加热,再用PBS冲洗;滴加3%双氧水,再次PBS冲洗;最后滴加正常山羊血清封闭液;滴加Glut1多克隆抗体一抗50 μl(稀释度1∶250),放入4℃冰箱过夜;第2天复温,PBS冲洗,并依次滴加生物素标化二抗,辣根过氧化物酶标记链霉卵白素溶液,PBS冲洗;最后DAB显色,苏木精复染,梯度酒精脱水,中性树脂封片,镜下查看切片。每组切片均以PBS代替一抗作为阴性对照,其他步骤同前。

(2) 免疫组化结果判断:Glut1阳性表达定位于细胞膜和(或)细胞质。按肿瘤细胞阳性比率评分:0分,没有细胞着色;1分,肿瘤细胞阳性率≤5%;2分,肿瘤细胞阳性率6%~14%;3分,肿瘤细胞阳性率15%~30%;4分,肿瘤细胞阳性率>30%。按肿瘤细胞着色强弱评分:0分,没有细胞着色;1分,浅黄色;2分,棕黄色;3分,棕褐色。肿瘤细胞阳性率评分+肿瘤细胞着色强弱评分作为最终评分。根据最终评分,将Glut1染色分为4个等级:0-1分为阴性(0),2-3分为弱阳性(1+),4-6分为阳性(2+),>6分为强阳性(3+)。片内正常胰腺组织及间质细胞无着色,作为阴性对照。

1.4 PCR检测胰腺癌组织中Kras突变基因的表达

(1) 基因组DNA抽提:采用Qiagen公司的DNA提取试剂盒(QIAamp DNA Mini Kit)提取组织DNA,常规切片厚4 μm 5~10张,经脱蜡、蛋白酶K消化及离心,将DNA洗脱。将DNA稀释,稀释至质量浓度为100 ng·μl-1,体积为50 μl。1张用于HE染色观察形态,其余用于下一步提取DNA;显微镜下观察HE切片,选取富于肿瘤细胞的区域,对应HE切片将肿瘤组织刮入裂解液,保证肿瘤成分80%以上。

(2) PCR法扩增Kras基因第2号外显子:根据Kras基因组DNA序列设计PCR引物,Kras基因第2号外显子上游引物为KRAS F1(GCCTGCTGAAAATGACTGAA)和KRAS F2(AAGGCCTGCTGAAAATGACTG),下游引物为KRAS R1 (GTATCGTCAAGGCACTCTTGC)和KRAS R2 (AGAATGGTCCTGCACCAGTAA)。PCR反应体系20 μl,反应条件如下: 95 ℃预变性15 min,95 ℃变性15 s,60 ℃退火15 s,72 ℃延伸15 s,共45个循环;72 ℃延伸2 min,至40 ℃结束。以双蒸水代替DNA模板作为阴性对照,已知阳性病例作为阳性对照。取PCR扩增产物5 μl,2%琼脂糖凝胶电泳,溴乙啶染色。

(3) DNA测序:将DNA PCR产物(20 μl)磁珠纯化,配制测序反应体系,总反应体积5 μl,盖紧PCR 管,用手指弹管混匀,稍离心后,将PCR 管置于PCR 仪上进行扩增。反应产物醋酸钠纯化后,上ABl3730 DNA Analyzer进行PAGE电泳。采用Sequence Analysis 软件进行序列分析。

1.5 统计学处理

采用SPSS 19.0统计软件进行数据处理,Glut1表达、Kras突变与各临床指标的关系之间比较采用卡方检验,Glut1表达与Kras突变的相关性用Spearman法,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 Glut1在胰腺癌及正常胰腺组织中的表达结果

46例胰腺癌组织中,Glut1棕黄色或棕褐色阳性染色颗粒位于细胞质和(或)细胞膜,主要定位于细胞膜,阳性表达率为86.9%(40/46),正常胰腺组织中无阳性表达(表1、图1),差异有统计学意义(P<0.01)。

表1 Glut1 在胰腺组织中的表达

2.2 Kras在胰腺癌中的突变情况

46例胰腺癌患者中有26例患者存在Kras基因突变(56.5%),其中24例12密码子突变(G34D 3例,G35D 21例),2例13密码子突变(G38D 1例,C39D 1例)。

2.3 胰腺癌中Glut1蛋白表达及Kras基因突变与胰腺癌临床病理特征的关系

胰腺癌组织中Glut1表达与年龄、肿瘤大小、肿瘤部位具有显著相关性,差异具有统计学意义(P<0.05)。Kras的突变与肿瘤大小和神经侵犯相关,差异具有统计学意义 (P<0.05)。见表2。

2.4 胰腺癌中Glut1蛋白表达与Kras基因突变的相关性

在Glut1阳性表达的标本中,随着Glut1染色评分的递增,KRAS基因的突变率明显增加,差异具有统计学意义(r=0.99,P<0.05)。见表3。

3 讨 论

Kras基因是Ras原癌基因家族的一员,其表达与细胞生长及分化密切相关[4]。以往研究证实,超过90%的胰腺癌都存在Kras基因的点突变[5]。在胰腺癌中,单氨基酸置换G12、G13或Q61导致K-ras GTP水解活性失活,而且降低了对GAP的敏感性,从而导致磷酸化的K-ras持续聚积,与下游效应分子结合,导致了细胞的恶性转化[6]。Glut1是分布最广泛的葡萄糖转运蛋白,是一种膜性易化葡萄糖转运蛋白,它的功能是运输葡萄糖进入上皮细胞及促进细胞的代谢[7],它的表达强弱与肿瘤恶性程度有关[8]。

A.正常胰腺组织中Glut1表达为阴性,标记为(-)(×100); B.胰腺癌组织中Glut1阴性表达,标记为(-)(×200); C.胰腺癌组织中的Glut1的弱阳性表达,标记为(1+),(×200); D.胰腺癌组织中的Glut1的中度阳性表达,标记为(2+)(×200); E.胰腺癌组织中Glut1强阳性表达,标记为(3+)(×200)

图1 免疫组化检测Glut1在胰腺癌及正常胰腺组织中的表达

表2 Glut1表达及Kras突变与患者临床病理特征的关系

表3 Glut1表达与Kras突变之间的相关性

Spearman’s rank test法:r=0.99,P=0.033

在低糖环境下Kras野生型细胞很难存活,而存活下来的Kras突变型细胞中Glut1高表达,且其中4%发生亲代未出现过的Kras突变[9]。进一步研究表明,Kras基因突变与Glut1表达在肺癌组织中也存在一定的的相关性[10]。两者关系在胰腺癌组织中是否相关,目前还没有相应的临床研究。鉴于此,我们以胰腺癌组织为标本,检测了46例癌组织切片中Glut1的表达及Kras的突变,结果显示胰腺癌中Kras基因突变率为56.5%,主要是12位点突变。而Glut1蛋白阳性表达率为86.9%,对应癌旁组织基本无表达,且其与Kras突变率呈正相关,提示KRAS基因突变可上调Glut1的表达。

在胰腺癌治疗中以Kras突变的靶向治疗方案并没有取得令人惊喜的研究进展[11-12]。因此,我们便进一步探讨针对细胞Kras基因的下游靶点的疗法研究。PET/CT是胰腺癌的可靠而有效的诊断方法[13],而利用氟代脱氧葡萄糖(FDG)可以动态监测肿瘤细胞葡萄糖吸收。目前,抗肿瘤细胞能量代谢正成为抗肿瘤治疗的研究热点。与正常细胞不同,肿瘤细胞即使在供氧充足的情况下,葡萄糖依旧向乳酸转换,这种代谢称为有氧酵解或“Warburg效应”。研究发现,缺氧可诱导卵巢癌和肺癌细胞FDG摄入量增加,并可通过低氧诱导因子(hypoxia inducible factor,HIF)HIF-Ia上调Glut1的表达,促进肿瘤细胞糖代谢。

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癌基因Ras的突变或者过表达常见于恶性肿瘤,通过介导HIF表达,来促进糖酵解。在应用诱导Kras G12位点突变建立的胰腺癌小鼠模型中,Kras G12位点突变在控制肿瘤代谢中作用很大,主要通过刺激葡萄糖摄取,驱动糖酵解,促进肿瘤发生发展[14]。已有研究结果[15]证实,针对糖酵解过程的肿瘤治疗手段是可行的。Kras突变与Glut1存在一定的相关性[16-17]。因此,我们猜想胰腺癌细胞Glut1的高表达可能与肿瘤在低氧环境下Kras基因的突变介导HIF的高表达有关,但是仍需要大量后续研究去证实。靶向Glut1及糖酵解治疗胰腺癌也不失可作为Kras分子靶向治疗的新手段,且具有良好的应用前景。

[1] SIEGEL R,NAISHADHAM D,JEMAL A,et a1.Cancer statistics,2013[J].CA Cancer J Clin,2013,63(1):11-30.

[2] LI D,XIE K,WOLFF R,et al.Pancreatic cancer[J].Lancet,2004,363:1049-1057.

[3] 孙燕,石远凯.临床肿瘤内科手册[M].5版.北京:人民卫生出版社,2011:527-528.

[4] COX A D,DER C J.Ras history:the saga continues[J].Small GTPases,2010,1(1):2-27.

[5] BIANKIN A V.Pancreatic cancer genomes reveal aberrations in axon guidance pathway genes[J].Nature,2012,491:399-405.

[6] SCHEFFZEK K,AHMADIAN M R,KABSCH W.The Ras-RasGAP complex:structural basis for GTPase activation and its loss in oncogenic Ras mutants[J].Sci,1997,277(5324):333-338.

[8] SMITH T A.Facilitative glucose transporter expression in human cancer tissue[J].Br J Biomed Sci,1999,56:285-292.

[9] YUN J,RAGO C,CHEONG I,et al.Glucose deprivation contributes to the development of KRAS pathway mutations in tumor cells[J].Science,2009,325:1555-1559.

[10] SASAKI H,SHITARA M,YOKOTA K,et al.Overexpression of Glut1 correlates with Kras mutations in lung carcinomas[J].Mol Med Rep,2012,5:599-602.

[11] RINEHART J,ADJEI A A,LORUSSO P M,et al.Multi-center phase Ⅱ study of the oral MEK inhibitor,CI-1040,in patients with advanced non-small-cell lung,breast,colon,and pancreatic cancer[J].J Clin Oncol,2004,22:4456-4462.

[12] SINGH A,SETTLEMAN J.Oncogenic K-ras “addiction” and synthetic lethality[J].Cell Cycle,2009,8:2676-2677.

[13] 包善华,余仔军,谢敏,等.PET/CT对胰腺癌诊断价值的初步探讨[J].现代医学,2010,38(3):234-237.

[14] SCHEFFZEK K,AHMADIAN M R,KABSCH W,et al.Oncogenic Kras maintains pancreatic tumors through regulation of anabolic glucose metabolism[J].Cell,2012,149:656-670.

[15] CLEM B F,O’NEAL J,TAPOLSKY G,et al.Targeting 6-phosphofructo-2-kinase (PFKFB3) as a therapeutic strategy against cancer[J].Mol Cancer Ther,2013,12(8):1461-1470.

[16] HIGASHI T,SAGA T,NAKAMOTO Y,et al.Relationship between retention index in dual-phase (18)FFDG PET,and hexokinase-Ⅱ and glucose transporter-1 expression in pancreatic cancer[J].J Nucl Med,2002,43(2):173-180.

[17] RESKE S N,GRILLENBERGER K G,GLATTING G,et al.Overexpression of glucose transporter 1 and increased FDG uptake in pancreatic carcinoma[J].J Nucl Med,1997,38(9):1344-1348.

Synergy of tumorigenesis between high-Glut1 expression and Kras mutation in pancreatic cancer

WU Dan1,WANG Cai-lian2,LI Chun-yan3,ZHENG Shi-ya2

(1.DepartmentofOncology,theAffiliatedJiangyinHospitalofSoutheastUniversityMedicalCollege,Jiangyin214400,China; 2.DepartmentofOncology,ZhongdaHospital,SoutheastUniversity,Nanjing210009,China; 3.NanjinMedicalUniversity,Nanjing210029,China)

Objective: To analyze the relationship between overexpression of Glut1 and Kras mutations in pancreatic cancer.Methods:In 46 cases of pancreatic carcinoma and 46 cases of tumor adjacent normal pancreatic tissues,immunohistochemistry was performed for Glut1 expression status. Kras mutation status was also evaluated using PCR-based assays.Results:Glut1 expression was increased in 40(86.9%) pancreatic cancer cases. At the same time ,it was not expressed in adjacent controls (P<0.001).The Glut1 overexpression was significantly associated with age(<56,62.5%vs>56,92.1%,P<0.05),tumor size(<6 cm,92.1%vs>6 cm,62.5%,P<0.05),tumor location(head,100%vsnon-head,71.4%,P<0.01),Kras mutation was found in 26 (56.5%) pancreatic cancer cases. The Kras mutation was associated with tumor size(<6 cm, 63.2%vs>6 cm, 25%,P<0.05),nerve invasion (absent,51.3%vspresent,88.9%,P<0.05). The Glut1 overexpression status was significantly correlated with Kras mutation status (r=0.99,P<0.05).Conclusion:Our results strongly suggest that overexpression of Glut1 is significantly correlated with Kras mutations in pancreatic cancer to increase the tumor genesis.

pancreatic cancer; glucose transporter isoform 1; Kras; glycolysis

2015-09-22

2015-10-14

吴丹(1978-),女,江苏江阴人,主治医师。E-mail:wudan96121@163.com

吴丹,王彩莲,李春妍,等.胰腺癌Kras基因突变与Glut1高表达协同促进肿瘤发生[J].东南大学学报:医学版,2015,34(6):982-986.

R735.9

A

1671-6264(2015)06-0982-05

10.3969/j.issn.1671-6264.2015.06.028

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