杜志敏 杨静静 马 倩 王天云 李齐印 徐志强 李万里

(新乡医学院免疫教研室，新乡453003)

肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TNF-related apoptosis-inducing ligand，TRAIL)是TNF家族的成员之一，是一种Ⅱ型膜蛋白，通过与其特异性死亡受体结合而激活凋亡信号传导途径，从而诱导肿瘤细胞凋亡。大豆甙元(Daidzein，Da)是来源豆类植物和齿状植物的异黄酮类化合物，是大豆异黄酮的主要成分。近年来大量体外实验及流行病学均显示，Da作为一种抗癌剂具有诱导肿瘤细胞凋亡、细胞周期、细胞生长与分化及抗氧化作用。近年来研究表明Da能够抑制乳腺癌、前列腺癌、白血病以及某些肝癌细胞株的生长，增殖以及诱导肿瘤细胞凋亡的作用［1-3］。Da具有抗癌作用，且毒性低，药物作用平缓。Da作为一种天然植物雌激素，已被证实具有抗氧化、抗肿瘤等多种药理作用，因其毒副作用小，抗肿瘤作用日益受到重视。本研究旨在探讨低毒性的Da联合TRAIL作用于胃癌SGC-7901细胞，研究两者联合对SGC-7901细胞增殖的影响和细胞相关凋亡基因的表达影响，以初步探讨Da与TRAIL联合作用于胃癌SGC-7901细胞是否具有协同作用及其作用机制，以期为临床胃癌防治提供一定的实验室依据。

1 材料与方法

1.1 材料 人胃腺癌SGC-7901细胞株(本实验室建立);DYY-8B电泳仪(北京六一仪器厂);流式细胞仪(美国BD公司);CLLNIBI0128酶标仪(奥地利Clibibo公司);UV-250紫外分光光度仪(日本SHIMADZU公司);电泳凝胶成像系统(英国SynDZe公司);FACSCALIBUR流式细胞仪(美国BD公司);电镜(日立H-7500);切片机(leica-uc6);Daidzein(郑州荔诺生物科技有限公司);TRAIL(USA Sigma公司);Annexin V-FITC细胞凋亡检测试剂盒、兔抗鼠Bcl-2、survivin、辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔二抗、Ecl发光液、细胞裂解液、蛋白酶抑制剂、Tris-HCL平衡苯酚(上海碧云天公司);四噻唑蓝(MTT)、二甲基亚砜(DMSO)，USA Sigma公司。

1.2 方法

1.2.1 实验分组 Da和 TRAIL分别作用于 SGC-7901细胞 取处于对数生长期的细胞，96孔板中每孔加入1 000个细胞。分组设置:空白对照组(加等量的含0.03%DMSO的 DMEM 培养基)、Da处理组:药物浓度分别为 20 mg/L(Da1)、40 mg/L(Da2)、80 mg/L(Da3)、160 mg/L(Da4)，TRAIL 处理组:药物浓度分别为 50 μg/L(T1)、100 μg/L(T2)、200 μg/L(T3)、400 μg/L(T4)分别作用于SGC-7901细胞。Da和 TRAIL联合作用于 SGC-7901细胞:分组设置为:空白对照组(加等量的含0.03%DMSO的DMEM培养基)、20 mg/L大豆甙元组(Da1)、50 μg/L TRAIL组(T1)以及两者联合作用于SGC-7901细胞。

1.2.2 MTT检测 各组细胞经过药物刺激后，置于培养箱中培养 12、24、48、72小时后，每孔加入MTT 溶液(5 mg/ml)20 μl，37℃继续孵育4 小时，小心吸去孔内培养上清液，每孔加入150 μl DMSO溶解甲瓒，溶解后在酶联免疫检测仪上测定490 nm的吸收值。每组设5个复孔，实验重复3次，利用空白对照组调零。计算细胞生长率公式:细胞抑制率=(对照组A值-实验组A值)/对照组A值×100%。

1.2.3 FITC-AnnexinV/PI双染法检测细胞凋亡率

SGC-7901细胞经过药物处理24小时后，收集细胞预冷PBS清洗两遍后，收集细胞，加入500 μl结合缓冲液重悬细胞，加入5 μl AnnexinV-FITC混匀避光反应10分钟后，再加入5 μl PI混匀，室温避光反应10分钟，利用流式细胞仪检测。

1.2.4 PI染色检测细胞周期 SGC-7901细胞经过药物处理24小时后，收集细胞，PBS漂洗后重悬细胞于预冷的70%乙醇中，－20°C固定24小时以上;固定后离心弃上清，PBS洗涤一次，将细胞重悬于含50 μg/ml PI和100 μg/ml RNase A 的 PBS中，室温孵育30分钟后，利用流式细胞仪进行检测细胞周期。

1.2.5 电镜检测 SGC-7901细胞经过药物处理后，离心弃上清，加入4%多聚甲醛，在4℃下固定4小时。0.1 mol/L磷酸缓冲液漂洗3次，加入0.5 ml人的新鲜血浆，用钩针轻轻打散后离心5分钟，沿管壁轻轻滴入2.5%戊二醛2～3 ml，微波中档固定5～10秒后，置4℃下固定1小时，用带钩的解剖针勾出细胞团块，切成1 mm3大小的组织块，放回2.5%戊二醛中低温保存。常规超薄切片样品制作，透射电镜日立H-7500观察。

1.2.6 Western blot检测 SGC-7901 细胞中 Bcl-2、caspase-3、survivin蛋白 SGC-7901细胞经过药物处理后，收集细胞，用RIPA裂解液提取总蛋白，用BCA蛋白定量试剂盒进行定量。蛋白上样量30 ug，Western blot检测蛋白的表达。Bcl-2一抗的稀释浓度1∶1 000，caspase-3一抗的稀释浓度1∶500，survivin一抗的稀释浓度1∶1 000，二抗稀释浓度均为1∶1 000，ECL发光，用胶片捕捉发光条带。所得的胶片结果经扫描后，利用ImageJ软件进行灰度分析。

2 结果

2.1 Da、TRAIL分别对SGC-7901细胞体外增殖的抑制作用 SGC-7901细胞经过不同浓度的 Da、TRAIL处理不同的时间后，用MTT法检测对细胞的抑制情况。与对照组比，Da、TRAIL对SGC-7901细胞体外增殖有一定的抑制作用，不同浓度作用不同，随着浓度的增加作用加强，48小时 Da对SGC-7901细胞体外增殖的抑制作用达到高峰(P＜0.01)，当TRAIL达到较高浓度时，肿瘤细胞的抑制作用随着浓度的增加而增强(P＜0.01)，见表1。

2.2 Da联合TRAIL对SGC-7901细胞体外增殖的抑制作用 SGC-7901细胞经过Da或/和TRAIL处理不同的时间后，与对照组相比，Da1(20 mg/L)和T1(50 μg/L)联合时，SGC-7901细胞的增殖抑制率随着联合时间的延长，凋亡作用增强，两种药物联合作用在48小时时抑制率达46.6%，与对照组及单独用药组抑制率相比，差异具有统计学意义(P＜0.05或 P ＜0.01)，见表2。

2.3 Da和TRAIL对SGC-7901细胞形态、超微结构的影响 SGC-7901细胞经过Da或/和TRAIL处理24小时后，利用透射电镜观察细胞内部的形态学变化。正常细胞呈球形，细胞核质比大，表面有微绒毛;Da1(20 mg/L)处理后，细胞核体积变小，细胞膜损伤;T1(50 μg/L)处理后，核膜下可见染色质形成斑块状凝聚，造成细胞碎裂。Da1联合T1组胞质空泡化，出现大量空泡，胞膜破裂，细胞表面绒毛脱失，细胞出现崩解，形成了典型的细胞凋亡特征。见图1。

2.4 Da和TRAIL对SGC-7901细胞凋亡率的影响SGC-7901细胞经过Da或/和TRAIL处理后24后，利用流式细胞仪检测各组的凋亡情况。与对照组相比，Da1(20 mg/L)和 T1(50 μg/L)引起 SGC-7901细胞凋亡率显著增加，与对照组及单独用药组抑制率相比，差异具有统计学意义，P＜0.01，见图2，表3。

2.5 Da和TRAIL对SGC-7901增殖细胞周期的影响 SGC-7901细胞药物处理24小时后，单独用药和联合用药均能够诱导胃癌SGC-7901细胞凋亡，G1峰前出现凋亡细胞所特有的凋亡峰Sub-G1。与对照组比随着Da与 TRAIL联合作用的增强，使G0/G1和G2/M期细胞数目明显减少，S期细胞数目明显增加(P＜0.01)，表明两者联合作用使S期受到阻滞，从而抑制细胞增殖，见图3、表4。

图1 Da和/或TRAIL对SGC-7901细胞超微结构的影响(×5 000)Fig.1 Effect of TRAIL and/or Da treatment on morphological changes of the SGC-7901 cells(×5 000)

表1 Da或TRAIL对SGC-7901细胞增殖抑制率的影响(±s，n=4)Tab.1 Effects of Da or TRAIL on proliferation of SGC-7901 cells(±s，n=4)

表1 Da或TRAIL对SGC-7901细胞增殖抑制率的影响(±s，n=4)Tab.1 Effects of Da or TRAIL on proliferation of SGC-7901 cells(±s，n=4)

Note:Compared with control group，1)P ＜0.05，2)P ＜0.01.

Groups 12 h 24 h 48 h 72 h Control 0.00 ±3.800 0.00 ±2.100 0.00 ±6.000 0.00 ±11.500 Da1 9.23 ±6.7101) 7.27 ±3.682 34.84 ±9.8682) 4.82 ±4.000 Da2 7.77 ±6.2401) 13.61 ±12.182 47.24 ±5.2492) 29.52 ±14.7242)Da3 25.86 ±10.0402) 37.21 ±15.5522) 59.18 ±6.4132) 53.41 ±14.3512)Da4 36.81 ±7.7262) 43.85 ±11.1572) 77.45 ±6.1362) 44.63 ±4.9422)T1 2.95 ±3.211 3.27 ±2.910 11.24 ±4.9042) 5.31 ±4.390 T2 11.54 ±11.915 15.84 ±4.8612) 19.74 ±10.0932) 3.84 ±4.640 T3 16.43 ±6.8772) 26.70 ±9.9682) 38.53 ±6.6262) 28.56 ±6.0842)T4 33.72 ±9.3002) 41.92 ±5.3712) 48.61 ±7.1672) 34.47 ±11.3822)

表2 Da1联合TRAIL对SGC-7901细胞增殖抑制率的影响(±s，n=4)Tab.2 Effects of combination of TRAIL and Da1 on proliferation of SGC-7901 cells(±s，n=4)

表2 Da1联合TRAIL对SGC-7901细胞增殖抑制率的影响(±s，n=4)Tab.2 Effects of combination of TRAIL and Da1 on proliferation of SGC-7901 cells(±s，n=4)

Note:Compared with control group，1)P ＜0.05，2)P ＜0.01;3)P ＜0.05，4)P ＜0.01;Compared with T1，5)P ＜0.01.

Groups 24 h 48 h Control --- ---Da1(20 mg/L) 9.40 ±5.4011) 22.32 ±11.1122)T1(50 μg/L) 12.40 ±8.5921) 25.33 ±3.1072)Da1+T1 37.70 ±10.3142)4)5) 46.60 ±8.0062)3)5)

表3 Da和/或TRAIL对SGC-7901细胞凋亡的影响 (±s，n=4)Tab.3 Effects of TRAIL and/or Da on apoptosis of SGC-7901 cells(±s，n=4)

表3 Da和/或TRAIL对SGC-7901细胞凋亡的影响 (±s，n=4)Tab.3 Effects of TRAIL and/or Da on apoptosis of SGC-7901 cells(±s，n=4)

Note:Compared with control group，1)P ＜0.01;Compared with Da1，2)P ＜0.01.

051 Da1(20 mg/L)0.705 ±0.1111) 0.610 ±0.0831) 1.315 ±0.1461)T1(50 μg/L)2.500 ±0.2451) 4.896 ±0.6101) 7.396 ±0.3921)Da1+T1 4.157 ±0.7231)2)8.857 ±0.8151)2)13.013 ±1.4361)2)poptosis Control 0.247 ±0.037 0.417 ±0.030 0.664 ±0.Groups Early apoptosis Late apoptosis Total a

图2 Annexin V-FITC/PI双染法检测凋亡Fig.2 Detection of apoptosis using Annexin V-FITC/PI double staining

图3 Da和/或TRAIL对SGC-7901增殖细胞周期的作用Fig.3 Effects of TRAIL and/or Da on cell cycle of SGC-7901 cells

2.6 Da和 TRAIL对SGC-7901细胞凋亡中Bcl-2、survivin、caspase-3表达的影响 与对照组比，Da1联合T1能够下调SGC-7901细胞凋亡相关基因Bcl-2、survivin蛋白表达，联合用药组与对照组比较，明显低于对照组，差异具有统计学意义P＜0.01，见图4、表5。

表4 Da和/或TRAIL对SGC-7901细胞周期的影响(±s，n=4)Tab.4 Effects of TRAIL and Da on cell cycle of SGC-7901 cells(±s，n=4)

表4 Da和/或TRAIL对SGC-7901细胞周期的影响(±s，n=4)Tab.4 Effects of TRAIL and Da on cell cycle of SGC-7901 cells(±s，n=4)

Note:Compared with control group，1)P ＜0.05，2)P ＜0.01.

Groups G0/G1 S G2/M Control 64.56 ±15.00 9.33 ±1.57 26.63 ±1.74 Da1(20 mg/L)64.29 ±9.03 10.08 ±1.89 25.09 ±2.34 T1(50 μg/L)62.75 ±12.07 16.03 ±2.542) 27.48 ±2.10 Da1+T1 59.96 ±4.99 19.35 ±2.032) 28.99 ±2.001)

图4 凋亡蛋白caspase-3、survivin、Bcl-2表达变化Fig.4 Expression changes of apoptosis related protein caspase-3，Bcl-2 and survivin

表5 Da和/或 TRAIL对 caspase-3，survivin，Bcl-2表达的影响(±s，n=4)Tab.5 Effect of TRAIL and Da on the expressions of caspase-3，survivin，Bcl-2(±s，n=4)

表5 Da和/或 TRAIL对 caspase-3，survivin，Bcl-2表达的影响(±s，n=4)Tab.5 Effect of TRAIL and Da on the expressions of caspase-3，survivin，Bcl-2(±s，n=4)

Note:Compared with control group，1)P ＜0.05，2)P ＜0.01;Compared with Da1，3)P ＜0.01;Compared with T1，4)P ＜0.01.

Groups caspase-3 survivin Bcl-2 Control 0.15 ±0.057 0.85 ±0.072 0.84 ±0.153 Da1(20 mg/L)0.20 ±0.045 0.73 ±0.120 0.77 ±0.156 T1(50 μg/L) 0.25 ±0.063 0.60 ±0.0692) 0.57 ±0.1161)Da1+T1 0.38 ±0.0282)3)4)0.42 ±0.0652)3)4)0.42 ±0.0862)3)4)

3 讨论

胃癌是我国常见的恶性肿瘤，五年生存率仅为15%～20%，传统化疗是胃癌治疗的一个重要手段，然而大剂量的化疗药物对机体组织可造成相当的毒副作用，如骨髓抑制等，加之常规的化疗效果也不甚理想［4］。有研究表明，增强 caspase-3、Bax基因或抑制survivin、Bcl-2基因的表达能有效抑制肿瘤细胞的增殖，明显增强化疗和放疗对肿瘤细胞的杀伤作用［5，6］。

Da又名黄豆甙元，是存在于大豆中的一类重要的非营养成分，主要来源于大豆和齿状植物等天然的食物中，相关研究认为异黄酮类化合物在预防、治疗恶性肿瘤以及逆转肿瘤耐药等领域将发挥重要作用［7］。Da通过产生活性氧簇(ROS)和线粒体途径来诱导细胞的凋亡，特别是通过诱导Bax/Bcl-2比例的变化和激活 caspases-7和 caspases-9。TRAIL能通过胞内信号传导，能够迅速使表达TRAIL特异性受体通过多种信号传导通路诱导细胞发生凋亡，而对正常的细胞无毒性，被认为是最理想的抗肿瘤新药之一［8，9］。

本实验结合MTT和流式细胞术结果，观察Da和TRAIL单独及联合对SGC-7901细胞增殖抑制率以及诱导细胞凋亡的影响。结果显示，不同浓度的Da和TRAIL均能抑制SGC-7901细胞的增殖，且这种作用呈剂量依赖性，证实了两者联合使用诱导细胞凋亡作用增强并提高TRAIL对SGC-7901细胞敏感性。

本研究通过Western blot检测Da、TRAIL诱导SGC-7901细胞中凋亡相关基因表达的变化。结果显示，Da和TRAIL单独用药能够下调Bcl-2、survivin表达，Da与TRAIL联合作用显著强于单独用药组。说明抑制胃癌细胞 Bcl-2、survivin的表达并增强caspase-3的表达有助于提高胃癌细胞对TRAIL的敏感性。

综上所述，研究发现Da不仅单独应用对胃癌SGC-7901细胞具有抑制增殖作用，而且与TRAIL联合应用可明显提高TRAIL的抗肿瘤活性，对诱导肿瘤细胞凋亡有协同作用。Da联合TRAIL诱导胃癌SGC-7901细胞凋亡，其机制可能与细胞周期S期阻滞、下调Bcl-2、survivin蛋白及增强caspase-3蛋白表达有关，其深层次的作用机制仍需进一步的研究。

1 Cui H B，Na X L，Song D F et al.Blocking effects of genistein on cell proliferation and possible mechanism in human gastric carcinoma［J］.World J Gastroenterol，2005;11:69-72.

2 Su S J，Yeh T M，Chuang W J et al.The novel targets for anti-angiogenesis of genistein on human cancer cells［J］.Biochem Pharmacol，2005;69:307-318.

3 Yu Z L，Li W J，Liu F Y.Inhibition of proliferation and induction of apoptosis by genistein in colon cancer HT2-29 cells［J］.Cancer Lett，2004;2:84-91.

4 Yang X，Takano Y，Zheng H C.The pathobiological features of gastrointestinal cancers［J］.Oncol Lett，2012;3(5):961-969.

5 Kaliberov S A.Adenovirus-mediated transfer of BAX driven by the vaseular endothelial growth factor promoter induces apoptosis in lung cancer cells［J］.Mol Ther，2002;6:190-198.

6 Waligórska-Stachura J，Jankowska A，Wako R et al.Survivin--prognostic tumor biomarker in human neoplasms--review［J］.Ginekol Pol，2012;83(7):537-40.

7 Nagata C，Takatsuka N，Kawakami N et al.A prospective cohort study of soy product intake and stomach cancer death［J］.Br J Cancer，2002;87:31-36.

8 杨柳芹，房殿春.硝普钠对TRAIL诱导的胃癌细胞凋亡的影响［J］.中华微生物学和免疫学杂志，2006;26(3):246-247.

9 Yang L Q，Fang D C，Wang R Q et al.Effect of NF-kappaB，survivin，Bcl-2 and Caspase-3 on apoptosis of gastric cancer cells induced by tumor necrosis factor related apoptosis inducing ligand［J］.World J Gastroenterol，2004;10(1):22-25.