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5-氟尿嘧啶联合热疗体外诱导Hep-2细胞凋亡及细胞周期阻滞

2012-01-06王文华张步勇徐艳萍吉林大学第二医院耳鼻咽喉头颈外科吉林长春130041

中国老年学杂志 2012年23期

蔡 郁 蔡 敏 王文华 张步勇 徐艳萍 (吉林大学第二医院耳鼻咽喉头颈外科,吉林 长春 130041)

喉癌是我国北方地区常见的恶性肿瘤,发病率占头颈肿瘤的15%~20%,由于其发病部位受生理解剖特点的影响,手术很难彻底切除病灶,因此,非手术的综合治疗近年来倍受关注。热疗作为治疗手段之一,因其毒副作用反应低,与放疗、化疗等有协同作用,不仅用于无法手术切除的肿瘤患者,而且还可以用于肿瘤切除术中或术后治疗微小转移灶〔1〕。

1 材料与方法

1.1 细胞及试剂 Hep -2细胞株由吉林省肿瘤研究所惠赠,噻唑蓝(MTT)试剂及RPMI1640培养基购于美国sigma公司,胎牛血清购于长春生物制品研究所,5-氟尿嘧啶(5-FU)广州振康医药有限公司生产。

1.2 MTT比色法 取对数生长期的人喉癌细胞株Hep-2细胞,调细胞数为2×105/ml,接种于96孔塑料培养板内,每孔100 μl,当细胞增殖达到80%汇合时分组。单纯热疗组43℃ ±0.2℃持续加热40 min,然后移入37℃ 5%CO2培养箱内静止培养;单纯5-FU组,根据预实验结果,5-FU最适浓度200 μg/ml。联合组在单纯5-FU组基础上再加热40 min,然后移入37℃CO2培养箱静止培养24 h,于结束前6 h加入MTT试剂20 μl/孔,终浓度为500 mg/L,继续培养6 h后,吸弃上清,加入二甲基亚砜150 μl/孔,震荡10 min,用酶标仪于570 nm处测量各孔吸光度A值,按下列公式计算Hep-2细胞增殖抑制率,Hep-2细胞抑制率=(1-加药孔细胞A值÷对照孔细胞A值)×100%。

1.3 流式细胞术 细胞培养及分组同1.2,不同之处是将96孔板改为25 ml培养瓶,培养结束后细胞经0.25%胰蛋白酶消化,收集细胞。磷酸盐缓冲液(PBS)洗2次,70%冷乙醇固定,上机前过40目网调细胞数1×106/ml,碘化丙啶(PI)染色,流式细胞仪检测,以Modifi2.0软件分析细胞周期。……

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