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萘乙酸多孔磁性分子印迹聚合物微球的制备

2022-01-09谈晓佩李珊珊石海珠张纯姑

分析测试学报 2021年12期
关键词:印迹微球特异性

谈晓佩,李珊珊,石海珠,张纯姑*,封 顺*

(1.西南交通大学 生命科学与工程学院,四川 成都 610031;2.乌鲁木齐市第十五中学,新疆 乌鲁木齐 830046)

萘乙酸(α-Naphthylacetic,NAA)是一种广谱、高效的植物生长调节剂,具有促进植物生根、抽芽、开花,防止落花落果,促进果实成熟和增产等调节作用,广泛用于小麦、水稻、棉花、番茄等农作物中[1]。NAA 具有神经毒性和急性毒性,其在农作物中的残留进入人体后可使人的生殖和发育受损,甚至导致癌症[1-3]。因此许多国家和组织将NAA 列入限制使用的农药名单。我国(GB 2763-2019[4])和欧盟(EC 396/2005[5])分别规定NAA在食品中的最大残留限量(MRL)为100µg·kg-1和60µg·kg-1。

针对NAA 的测定,目前已发展了荧光分光光度法[6-7]、气相色谱法[8-9]、高效液相色谱法(HPLC)[10-13]、色谱-质谱联用[14-17]等技术。但由于NAA 的残留量相对较低,且样本基质复杂,为提高检测结果的可靠性和准确性,实现高通量分析,开发新的样本前处理技术具有实际应用价值。

分子印迹聚合物(Molecular imprinted polymers,MIPs)对待测化合物具有特异性识别能力,兼具实用性高、分离速度快、制备方便等优点,近年来被广泛应用于天然产物、食品、生物和环境样品中目标化合物的选择性识别[18-22]。NAA 的分子印迹聚合物目前也得到了应用,但其制备步骤繁琐、耗时[23-24]。

本文将磁分离技术引入MIPs 中,发展了一种无皂液乳化技术制备NAA 磁性分子印迹聚合物多孔微球的方法。以甲基丙烯酸-苯乙烯聚合物前驱体为功能单体,NAA为模板分子,与Fe3O4磁流体和引发剂偶氮二异丁腈混合,采用“一锅法”快速制得NAA-mMIPs 微球。该制备方法简便、快捷,同时赋予微球多孔结构,有利于提高传质速率,增加实际结合位点数量。

1 实验部分

1.1 试剂、仪器与色谱条件

萘乙酸(C12H10O2,分析纯)购于上海阿拉丁试剂有限公司;硫酸亚铁铵((NH4)2SO4·FeSO4·6H2O)、甲醇(MeOH)、乙醇(EtOH)、氯仿(CHCl3)、乙酸(HAc)购于天津市永盛精细化工厂;甲基丙烯酸(MAA)、偶氮二异丁腈(AIBN)购于天津市光复精细化工研究所;苯乙烯(St)、油酸(OA)、氢氧化钠(NaOH)、环己烷(C6H12)购于天津市富宇精细化工有限公司;番茄购自乌鲁木齐当地超市。实验用水为超纯水。

采用LEO 1430VP 扫描电子显微镜(SEM,德国LEO 电镜有限公司)、H-600 透射电子显微镜(TEM,日本日立公司)、Presti-21傅里叶变换红外光谱仪(FT-IR,日本岛津公司)对微球形貌、红外光谱数据进行表征。

LC-10Atvp HPLC(日本岛津)由LC-10Atvp二元泵和SPD-10Avp检测器组成。色谱条件如下:色谱柱OptimaPak C18柱(150 mm×4.6 mm,5µm),进样量20µL;流动相为甲醇-0.2%乙酸水溶液(体积比1∶1),等度洗脱,流速1.0 mL·min-1,检测波长280 nm。分析前所有样品需用0.45µm微孔膜过滤。

1.2 实验条件

1.2.1 Fe3O4磁流体的制备Fe3O4磁流体的制备参考本实验室之前的工作[25]:将10 mL 0.2 mol·L-1(NH4)2SO4∙FeSO4∙6H2O 溶液在搅拌下加入30 mL 0.1 g·mL-1NaOH/EtOH/OA(1∶1∶1,体积比)溶液;于40 mL 聚四氟乙烯反应釜中180 ℃反应10 h;待其自然冷却至室温,取出沉淀;用10 mL 环己烷和30 mL EtOH连续洗涤,重复3次。最后将得到的产物分散于4 mL CHCl3中,储存,备用。

1.2.2 聚合物前驱体的合成将0.4 mL MAA、10.0 mL St和0.2 g AIBN 加入60 mL CHCl3中,混合均匀后,100 ℃反应10 h。冷却至室温,加入120 mL CH3OH,离心,收集沉淀;用20 mL CHCl3洗涤3次,以除去未反应的单体;60 ℃真空干燥12 h,即得poly(St-co-MAA)前驱体[23]。

1.2.3 磁性分子印迹聚合物的制备将300µL磁流体、1 mmol·L-1NAA 水溶液和0.524 6 g聚合物前驱体依次加入4 mL CHCl3中,混合均匀后,于搅拌下缓慢加入10 mL 0.1 g·mL-1NaOH 水溶液;70 ℃反应2 h,自然冷却至室温后磁分离;依次用1 mL MeOH、含10%(体积分数)HAc 的MeOH 溶液洗涤。60 ℃真空下干燥,即得产物NAA 磁性分子印迹聚合物(mMIPs)。同时,不添加模板分子NAA,平行制备了磁性非印迹聚合物(mNIPs)。

1.2.4 吸附性能等温吸附实验:将10 mg mMIPs 或mNIPs 分散于2 mL 质量浓度1~100 µg·mL-1的NAA 标准溶液中,室温振荡3 h,磁分离;采用标准曲线法,利用UV-Vis 在280 nm 处测定吸附前后溶液中NAA的质量浓度。

吸附动力学实验:将10 mg mMIPs 或mNIPs分散于2 mL 50µg·mL-1的NAA 标准溶液中,按一定时间间隔(5、15、30、60、90、120、180 min)收集上清,利用UV-Vis 在280 nm 处测定溶液中NAA 的质量浓度。

1.2.5 实际样本检测将乌鲁木齐当地超市购买的番茄洗净后,榨汁,过0.45µm 微孔膜。分别加入NAA 标准溶液配制最终质量浓度分别为0.005、5、15、25 µg·mL-1的加标液。加入10 mg mMIPs,孵育90 min;磁分离后,用1 mL MeOH-HAc(9∶1,体积比)洗脱捕获的NAA,重复3 次。合并洗脱液,真空干燥后,以100µL流动相复溶,过膜后,进行HPLC分析。其中0.005µg·mL-1加标样本的样本量为2 mL。

以上实验均重复3次。

2 结果与讨论

2.1 NAA-mMIPs的表征

从TEM 图可以发现,Fe3O4磁流体粒径在5~30 nm 之间(图1A)。SEM 图显示,NAA-mMIPs 粒径为80µm,微球呈多孔结构,孔洞均匀分布,直径约1~10µm(图1B)。该多孔结构使得微球具有较大的比表面积,同时显著增加了可接触识别位点数量,有利于增大柱容量,提升传质速率。在图1C 中,曲线a(Fe3O4)578 cm-1处的峰为Fe3O4的Fe—O 特征峰。曲线b(poly(St-co-MAA)前驱体)中,750、830、1 500、1 580 cm-1处均为poly(St-co-MAA)中苯环的特征峰;1 697 cm-1处为C====O 红外吸收峰,2 800 cm-1和3 000 cm-1处的峰可归属为—CH3的伸缩振动,3 400 cm-1处为—OH的伸缩振动。而在曲线c 中,可同时观察到上述官能团(Fe—O、苯环、C====O、—CH3、—OH)的红外特征吸收峰,表明NAA-mMIPs 被成功制备。同时该微球具有良好的磁响应性,在外加磁场作用下,可在30 s 内实现液固分离(图1D)。

图1 Fe3O4的TEM图(A),NAA-mMIPs的SEM图(B)、FT-IR光谱图(C)、磁分离图(D)Fig.1 TEM image of Fe3O4(A),and SEM(B),FT-IR(C),magnetic separation image(D)of NAA-mMIPs a.Fe3O4,b.poly(St-co-MAA)precursor,c.mMIPs

2.2 等温吸附性能测试

依据等温吸附实验结果,以方程(1)计算NAA在mMIPs和mNIPs上的吸附量(Q,mg·g-1):

式中:C0(µg·mL-1)表示模板分子的初始质量浓度;Ct(µg·mL-1)表示吸附后上清液中模板分子的质量浓度;m(g)表示聚合物的质量;V(mL)表示所取模板分子溶液的体积。从图2A 可以发现,随着NAA 初始质量浓度的增加,mMIPs 对模板分子的结合量增加。同时,mMIPs 在所有浓度下的吸附量均显著高于mNIPs。说明MNIPs 对NAA 的吸附是由非特异性相互作用引起的。

采用Scatchard方程(式2)进一步对其吸附性能进行分析:

式中:Q(mg·g-1)为mMIPs 对模板分子的平衡结合量;C(µg·mL-1)为溶液中模板分子的平衡质量浓度;Qmax(mg·g-1)为结合位点的最大表观结合量;Kd(µg·mL-1)为结合位点的平衡解离常数。从图2B中可以看出,mMIPs的Scatchard图由两条斜率不同的直线组成,说明mMIPs对NAA 的结合存在高和低两种亲和位点,拟合所得线性方程分别为y=-6.200 × 10-3x+ 0.182 0(r2= 0.995 5)和y= 7.800 ×10-3x+0.152 1(r2=0.968 8)。由斜率和截距可得高、低亲和位点的解离常数和最大表观结合量分别为161.30 µg·mL-1、29.35 mg·g-1以及-128.20 µg·mL-1、-19.50 mg·g-1。对于mNIPs,其Scatchard图中仅有一条曲线(图2C),说明NAA-mNIPs与NAA 的结合只有一种形式,线性方程为y=-1.629×10-2x+0.075 88,解离常数Kd=61.39µg·mL-1,最大表观吸附量Qmax=4.658 mg·g-1。上述结果表明mMIPs 存在着特异性和非特异性吸附,但特异性吸附要远强于非特异性吸附;而mNIPs 对NAA 的吸附没有选择性,仅存在着非特异性吸附。

图2 mMIPs和mNIPs等温吸附曲线(A),mMIPs(B)和mNIPs(C)的Scatchard曲线Fig.2 The adsorption isotherms of mMIPs and mNIPs(A),Scatchard plots of mMIPs(B)and mNIPs(C)

2.3 动力学吸附性能测试

动力学吸附实验结果见图3。由图3A可知,mMIPs在120 min时基本达到吸附平衡。分别采用伪一级动力学模型(式3)和伪二级动力学模型(式4)对吸附数据进行拟合:

图3 mMIPs和mNIPs吸附动力曲线(A),mMIPs和mNIPs的伪一级(B)和伪二级(C)动力学模型Fig.3 The adsorption curves of mMIPs and mNIPs(A),the pseudo-first-order(B)and pseudo-second-order(C)kinetic models of mMIPs and mNIPs

式中:Qe(mg·g-1)和Qt(mg·g-1)分别为达到吸附平衡和在时间t时的吸附量;k1(min)和k2(g·mg-1·min-1)分别为伪一级和伪二级动力学吸附速率常数。由表1 可以看出,mMIPs 和mNIPs 对NAA的吸附更吻合伪二级动力学模型,化学吸附为决速步。

表1 NAA-mMIPs及NAA-mNIPs的动力学模型结果Table 1 The experimental results of absorption kinetics of NAA-mMIPs and NAA-mNIPs

2.4 方法学考察

首先建立了HPLC测定NAA的标准曲线,其在1~100µg·mL-1范围内线性关系良好,r2为0.999 8,说明该HPLC方法可应用于NAA的准确定量。分别配制NAA最终质量浓度为5、15、25µg·mL-1的番茄汁加标溶液,取2 mL 经mMIPs 处理后,采用优化的HPLC 条件对洗脱液进行分析,得到其平均回收率为78.7%~89.2%,相对标准偏差(RSD,n=3)小于3.9%,表明方法重现性良好。进一步将mMIPs应用于番茄汁中质量浓度低至0.005µg·mL-1的NAA的富集,由图4可见,番茄汁、加标番茄汁、上清液对应的色谱图中均无NAA 色谱峰,而在洗脱液中能够清晰观察到NAA 的色谱峰,且其平均回收率高达80.3%(RSD<5.0%,n=3)。该NAA测定值(0.005µg·mL-1)远低于国标[4]或欧盟标准[5]规定的最大残留限量。上述实验结果证实所制备的mMIPs对NAA表现出优异的选择性和特异性,能够有效消除复杂基质的影响,对实际样本中痕量NAA的测定结果具有高准确性和可靠性。

图4 番茄汁原液(A)、加标液(B)、mMIPs处理后的上清液(C)和洗脱液(D)的色谱图Fig.4 Chromatograms of initial sample(A),spiked sample(B),the supernatant after treated with the mMIPs(C)and the eluent(D)

3 结 论

本文将Fe3O4磁流体、poly(St-co-MAA)共聚物、NAA 和CHCl3混合,成功制备了NAA 多孔结构mMIPs,并采用多种方法研究了吸附剂的形态和吸附行为。方法简便,制备的NAA-mMIPs 拥有多孔结构和良好的超顺磁性,同时对NAA 表现出高的识别能力。实际样品测定表明,mMIPs可实现复杂食品中微量NAA的高效富集。

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