武建楠，陈肯，王欢，庞铂实，周宇荀，肖君华，李凯*

（1.东华大学化学化工与生物工程学院，上海 201620；2.上海农林职业技术学院，上海 201699）

单核苷酸多态性（Single nucleotide polymorphism,SNP） 是由单碱基突变引起的DNA 序列多态性， 作为新一代遗传标记具有数量丰富、分布广泛和覆盖度高等特点[1]。 与其他分子标记相比，SNP 标记在基因分型过程可以做到高度自动化、高通量检测[2]，已成为包括玉米在内的二倍体植物研究中的首选标记类型[3]。 2010 年滑峰等[4]发现CYP2A12基因的同源序列对SNP 分析产生严重影响。异源多倍体SNP 开发与鉴定的困境主要在于靶区段常存在大量同源序列， 存在SNP、部分同源序列变异（Homoeologous sequence variant,HSV）[5]和旁系同源序列变异（Paralogous sequence variant,PSV）[6]等多种变异类型。 在多倍体遗传研究中，80%以上假阳性SNP 是HSV 和PSV 而不能用于开发遗传标记[7]。

多倍体物种SNP 分型的常用技术包括Sanger 测序、SNP 芯片、 竞争性等位基因特异性PCR（Kompetitive allele-specific polymerase chain reaction，KASP）等。然而，它们依赖特异性扩增或特异性杂交， 而多倍体物种亚基因组间高度同源， 靶向特异性大大降低。 第二代测序（Next generation sequencing，NGS） 技术的发展使得测序费用大幅度降低，测序效率极大提高。 目前已有研究者尝试采用生物信息学方法区分多倍体SNP 和HSV（也称部分同源SNP），即通过不同的过滤方法[8]识别并消除部分同源SNP。 该方法在不同倍性的物种如花生（异源四倍体）、小麦（异源六倍体）和草莓（异源八倍体）的模拟数据中均表现出很高的准确性[9]，有望得到广泛应用。

本研究的对象为异源四倍体陆地棉（Gossypium hirsutumL.），是由亚洲棉（G. arboreum，AA）和雷蒙德氏棉（G. raimondii，DD）杂交加倍而来[10]。在A12 染色体上随机选取了3 个靶标区段，并对136 个陆地棉样本的DNA 用多重PCR 靶向扩增子测序[11]。 将参考基因组作为关键参数进行调整优化，对其分型结果进行比较，研究同源区段对多倍体SNP 鉴定与生物信息学分析的影响。 优化生物信息学方案后获得了准确的分型信息，提高了SNP 分型的准确度，为棉花等多倍体作物全基因组SNP 基因型分析以及定制育种打包检测奠定了基础。

1 材料与方法

1.1 植物材料与DNA 提取

参考序列来源于陆地棉参考基因组Ghir-NAU （https://cottonfgd.org/about/download.html）。在136 个不同陆地棉样本中，采用匡猛等[12]的方法快速提取DNA，DNA 的OD260/OD280比值为1.8～2.0， 通过琼脂糖凝胶电泳检测DNA质量。

1.2 文库制备与测序

三个靶向扩增子区段均位于陆地棉A12 染色体（表1）。 利用本实验室前期设计的靶向测序的多重PCR 引物系统TASPrimer[13]，对潜在变异位点设计特异性PCR 引物（表2），由上海百力格生物技术有限公司合成引物。PCR 反应的产物大小为215～237 bp，引物长度为19～30 bp，退火温度为57～63 ℃，GC 含量为28%～63%， 并设计了136 对含有索引序列和通用序列的条形码引物来区分不同样本， 使用Illumina 公司的P5、P7 建库引物和多重PCR 法[14]建库。将不同样本混合之后，使用琼脂糖凝胶对混合文库进行电泳分离，切胶回收纯化文库。 建库产物送金唯智生物（苏州金唯智生物科技有限公司）进行高通量测序（测序仪为Illumina X-10），上机前用Agilent 2100 Bioanalyzer 对该测序文库进行质量控制。

表1 靶标区段及潜在SNP 变异位点基本信息Table 1 Basic information of target segment and potential SNP variant sites

1.3 生物信息分析流程

基于已标注SNP 位点的参考基因组、原始数据和棉花基因组数据库CottonFGD[15]，对关键参数即参考基因组（Reference）调整优化进行生物信息学分析， 流程如图1 所示。 原始数据含136个样本， 用FastQC 软件进行质量控制，用Cutadapt 软件切去接头序列，最终得到有效数据样本130 个。

图1 生物信息分析流程Fig. 1 Bioinformatics analysis process

采用BWA 软件[16]与参考基因组进行比对得到SAM 文件，用自定义脚本对匹配的读长（Read）数进行统计生成比对数据表，并用SAMtools[17]转化为BAM 文件。 使用SAMtools mpileup 命令对目标SNP 位点进行变异分析，并分别计算比对到区段1 、区段2 和区段3 的每个样本对应读长的r值，生成散点图。r＝Nv/Nt，其中Nv是变异读长数，Nt是比对到参考基因组的读长总数。r值是判断杂合性的指标[18]，若用R 表示参考碱基、A 表示变异碱基，那么：当0＜r≤0.2 时，表示某一样本中该位点为纯合基因型且与参考序列一致即RR；当0.8≤r＜1 时，表示该位点为纯合变异基因型AA；r为其他数值时， 表示此样本该位点为杂合基因型RA。

再用GATK[19]对区段中的所有位点进行变异分析，最后生成报表检验基因型。 GATK 报表为vcf 格式，其中0/0 或1/1 均表示纯合，分别与参考序列或变异序列一致；0/1 表示杂合。

在棉花数据库（https://cottonfgd.org/）对靶标区段进行比对，确定高相似度的同源序列。 将靶标区段与同源区段分别作为参考序列进行优化调整分析。

2 结果与分析

2.1 基于靶标区段作为参考序列的分析

样本总读长数为11 031 472， 比对到3 个靶标区段的读长相对接近， 共约占总测序读长的70%，3 个扩增子覆盖率为100%。

表1 中3 个区段5 个潜在SNP 位点的有效测序深度均值分别为8 400×、8 534×、8 403×、7 716×、12 793×。 利用SAMtools 对3 个靶标区段所有目标SNP 位点进行变异分析， 结果显示：区段1 和区段2 的目标SNP 位点的r值接近1或0，说明基因型纯合；区段3 的143 位点的r值大多接近0.5，表明基因型多为杂合（图2）。

图2 3 个靶标区段目标SNP 位点等位基因的读长所占比例Fig. 2 Proportion of the target SNP locus alleles reads in the three target segments

用GATK 进行全片段SNP 检出（表3），结果表明：区段1 的3 个潜在SNP 位点和区段2 的1个潜在SNP 位点在130 个样本中100%为纯合子；而区段3 的潜在143 位点在130 个样本中有近99%为杂合，只在1 个样本中为纯合；此外，在区段3 上还检出了5 个新的变异位点（位点48、78、174、180、182）且均为杂合子。

表3 靶标区段作为参考序列的变异检测与分型结果Table 3 Target segment as a reference sequence for variance detection and typing results

2.2 关键参数优化与分析

根据棉花数据库BLAST 结果， 靶标区段3 的同源序列位于D12 染色体47 602 597～47 602 836 bp， 两者相似性达96.28%（图3），BWA 软件比对时无法区分区段3 及其同源序列（同源区段3）， 因此考虑将区段3 和同源区段3同时作为参考序列。

图3 区段3 与同源区段3 的BLAST 比对情况Fig. 3 BLAST comparison of segment 3 and homologous 3

首先， 将同源区段3 单独作为参考序列，其潜在SNP 位点分析结果与区段3 作为参考序列时的分析结果一致。然后，将区段3 与同源区段3同时作为参考序列分析，比对到区段3 与同源区段3 的读长总数为3 462 670，其中约48%比对到区段3，约52%比对到其同源区段。

随机选取1 个样本，从以区段3 作为参考序列分析的SAM 文件中， 随机选取比对到区段3的部分读长，再从以区段3 与其同源区段3 同时作为参考序列分析的SAM 文件中提取相同数量、 相同序列号的读长进行比对和比较可以看到，只有靶标区段作为参考序列时得到4 个杂合位点（图4A）；在参考序列中加入同源区段3 后（图4B），不同亚基因组的读长分开，能够直观判断出SNP 和亚基因组内的多态性即HSV。

图4 不同参考序列部分对比结果比较Fig. 4 Comparison of mapping reads with different reference sequences

利用SAMtools 对区段3 和同源区段3 中目标SNP 位点进行变异分析，区段3 的143 位点r值接近1 即基因型为纯合TT， 与GATK 报表中143 位点基因型一致（表4）；而其同源序列对应位点141 位点的r值均接近0 即基因型为纯合AA。

比较使用区段3、同源区段3、区段3 加同源区段3 作为参考序列的GATK 结果：在靶标区段3 单独作为参考序列时， 区段3 的143 位点在大部分材料中被鉴定为杂合TA， 在个别材料中被鉴定为AA， 而把靶标区段与其同源区段同时作为参考序列时，143 位点被正确地鉴定为AA 或TT； 区段3 的另外3 个SNP 其实是亚基因组间的HSV；48 位点SNP 和78 位点SNP 是2 个新的SNP（表4）。

表4 靶标区段和同源区段同时作为参考序列时变异检测与分型结果Table 4 Variation detection and typing results with the target and segment and homologous segment as reference sequences

3 讨论

陆地棉A 亚基因组与D 亚基因组具有极高的同源性[20]，存在大量的同源区段干扰SNP 分型。正如Kaur 等[21]所述，在异源多倍体植物中，同源区段间SNP、HSV 和PSV 都有可能存在，比对时由于高度相似的同源位点映射错误，SNP 准确分型较为困难， 而且会增加SNP 的假阳性率，其中关注最多的是区分SNP 与HSV[22]。 PSV（本研究未涉及）大多出现在基因家族成员中，由于横向同源基因的干扰， 使开发SNP 难度大大增加，如陆地棉GhNAC家族[23]。

多倍体植物的分子育种需要精确分型，但常规的技术手段难以区分同源区段[7,24]。基于Sanger测序成本高、通量低，且只能由套峰判断杂合性，而目前最流行的高通量基因分型平台是基于杂交的SNP 阵列和各种使用NGS 的基因分型[25]。特定技术方案有可能解决同源干扰问题，如李杏瑜等[26]利用花生的近缘二倍体和高分辨率溶解曲线（High resolution melting，HRM）方法区分SNP 和HSV。Oliver 等[27]利用生物信息学分析从燕麦（异源六倍体）127 000 个重叠群中筛除HSV，获得了9 448 个候选SNP。 Byers 等[28]尝试在棉花中仅扩增带有SNP 的亚基因组， 虽然成功率低于预期，仍在陆地棉中鉴定出11 834 个SNP。 总之，对不同多倍体的基因分型有不同的最佳策略[29]。 但这些方法或是基于杂交而缺少特异性，或是只适用于没有参考序列的多倍体， 因此需要开发新策略，以高通量方式区分多倍体中部分同源变异与真正等位基因SNP。结合多重PCR 靶向测序[11]与生物信息学方案[14,30]，本研究通过对陆地棉样本的常规分析与参考序列调整优化，证明了多倍体中同源区段的存在会影响生物信息学分析与SNP 基因型鉴定，表明多倍体不同亚基因组SNP分型需要个性化的生物信息学方案。

本研究对靶标区段3 潜在SNP 位点常规分析的分型结果为杂合， 但从陆地棉遗传学角度，出现几乎全为杂合子的基因型分布是不合理的；结合多倍体特性，我们猜测并证明了是同源区段干扰导致的这一结果。 由此，本文提出把同源区段与靶标区段同时作为参考序列的方法，区分测序数据中来自不同亚基因组的读长，不仅能得到正确基因型，还能排除HSV 造成的假阳性SNP。区段3 和同源区段3 的分析结果也正好与Clevenger 等[8]提出的“如果亚基因组相差3%左右，则仅允许差异小于3%的reads 比对到正确的亚基因组上”这一结论吻合。

4 结论

通过生物信息学方案优化可有效区分不同亚基因组读长并准确鉴定SNP 的基因型， 提高SNP 分型的准确度， 有助于多倍体品种的检测，同时在多倍体育种方面可以提供DNA 水平上的信息。

致谢：

感谢华中农业大学林忠旭教授提供宝贵的植物材料。