（劲牌研究院，中药保健食品质量与安全湖北省重点实验室，湖北大冶 435100）

在酒类消费升级的趋势下，饮健康的酒和如何健康饮酒成为一种时尚追求[1-7]。其中，饮酒后是否口干及口干程度，逐渐成为人们在日常饮酒中探讨的一种健康饮酒感受。研究显示，在大量急性和慢性饮用酒精后，会严重影响口腔感知，产生口渴和口干。口渴，是血浆渗透压升高和体液量减少，及影响神经、体液的神经递质、激素及细胞因子综合作用诱导产生。口干，是口腔干燥的一种综合感觉，由唾液分泌减少引起[8]。引起白酒饮后口干的原因包括酒中的乙醛、杂醇油含量过高，酸酯比例不协调等因素[9-12]。引起保健酒饮后口干的因素不仅涉及到原酒的使用，还包括各种组方药材和辅料。另外，饮酒者的饮酒方式、生理条件、心理状态等因素对其感受的饮后口干程度也有影响[8]。

目前，临床前口干研究，多采用实验小鼠的饮水量变化、唾液分泌量等指标来考察其口干程度[12-14]。而临床研究，主要考察临床口干患者的唾液分泌情况与其口腔中的静息唾液流率[15]。从临床诊断研究角度出发，唾液在功能上等同于血清[16-17]。本研究从唾液分泌量与血清渗透压的潜在相关性出发，先后采用水、相同度数的酒精和一种保健酒灌胃，均检测禁水后不同时间点的血清渗透压，初步确定饮后口干程度与血清渗透压的关系。将血清渗透压指标的检测与动物醉酒试验结合，探索性应用于白酒、保健酒等酒类饮后口干程度的对比分析。通过检测饮酒小鼠翻正反射恢复后血清渗透压，对比分析小鼠饮酒后的口干程度，以评价酒体的饮后口干程度。

在白酒、保健酒等产品开发与优化升级过程中，如何使饮酒者在饮后减轻甚至避免口干也成为各种酒类产品研发的方向与重点。因此，研发一种客观而有效的评价白酒、保健酒等酒类饮后口干程度的检测方法，具有重要意义。

1 材料与方法

1.1 酒样、实验动物和仪器

酒样：主要包括35%vol酒精，一种保健酒不同生药浓度酒体1#，2#，3#，4#，5#（表1）。均为实验室自制样品。

表1 保健酒不同生药浓度酒体分组及信息

实验动物：雄性BALB/c小鼠，SPF级，18～22 g，6～8周龄。许可证号码：SCKXK(湘)2011-0003，购于湖南斯莱克景达实验动物有限公司。IVC 笼具饲养，5～6 只/笼。饲养温度20～25 ℃，相对湿度40 %～70 %，自然光照12 h 明暗交替。采用饮水瓶供应，自由饮水。灌胃前12 h 禁食不禁水。试验前小鼠适应环境3～5 d。适应期主要检查内容：是否与订购时要求的质量指标一致；一般状态；体重是否达到试验要求的体重范围；不合格的动物不纳入本试验。本研究所有实验动物操作均按湖北省实验动物管理办法进行。

仪器设备：冰点渗透压仪（德国罗泽，OM815）、电子天平（梅特勒-托利多仪器上海有限公司，ME2002E/02）、低温冷冻离心机（sigma，1-14K）等。

1.2 实验方法

实验动物购入后，适应性喂养后进行实验。经预实验确定，35%vol酒体灌胃剂量为0.19 mL/10 g·bw。实验前12 h 禁食，自由饮水。按体重随机分组，每组10～12只，并用苦味酸进行标记。采用水、35%vol酒精分别灌胃，依次在禁水0 h、灌胃后禁水0.5 h、1 h、2 h、3 h 共5 个时间点对各组实验小鼠取血。采用保健酒不同生药浓度酒体灌胃后观察小鼠的醉酒状况，待翻正反射恢复后取血（按照灌胃顺序）。静置30 min 后，3500 r/min、15 min 离心，吸取上清液后-20 ℃冰箱保存。将血清样本室温解冻30～60 min，采用冰点渗透压仪进行血清渗透压测量。采用统计学软件分析实验数据，采用统计软件spss19.0进行单因素方差分析。

2 结果与分析

2.1 灌胃水后禁水不同时间小鼠血清渗透压变化与口干程度

考察灌胃水后禁水0 h、0.5 h、1 h、2 h、3 h 小鼠血清渗透压的变化。如表2。

表2 禁水后不同时间血清渗透压变化

从表2 可以看出，与禁水0 h 比较，实验小鼠灌胃水后禁水0.5～3 h 其血清渗透压显著升高（p＜0.01）。结果表明，在禁水后0.5 h 开始，实验小鼠血清渗透压开始显著升高；且在禁水0.5～3 h 内，实验小鼠的血清渗透压均保持在一个较高值。初步分析禁水后0.5 h 实验小鼠出现口干，且在禁水0.5至3 h内均保持明显的口干程度。

表4 保健酒不同生药浓度酒体饮后醉酒和血清渗透压结果

2.2 灌胃35 %vol 酒精和保健酒后禁水不同时间小鼠血清渗透压变化与口干程度

考察灌胃35%vol 酒精和保健酒后禁水0.5 h、1 h、2 h、3 h小鼠血清渗透压的变化。如表3。

从表3 可以看出，与灌胃前-对照组比较，实验小鼠灌胃35 %vol 酒精和保健酒后，禁水0.5～3 h其血清渗透压均显著升高（p＜0.01）。与35 %vol酒精灌胃后0.5 h 组比较，35%vol 酒精灌胃后禁水1 h 实验小鼠血清渗透压显著升高（p＜0.05），灌胃后禁水3 h 实验小鼠血清渗透压显著降低（p＜0.05），灌胃后禁水2 h 实验小鼠血清渗透压无统计学差异。与35%vol 保健酒灌胃后0.5 h 组比较，保健酒灌胃后禁水1～3 h 实验小鼠血清渗透压均极显著升高（p＜0.01），呈现一定的下降趋势。

结果表明，与灌胃前口干情况比较，35%vol 酒精和保健酒灌胃后禁水0.5 h 实验小鼠口干程度明显。且35 %vol 酒精和保健酒在灌胃后禁水0.5 h至3 h 内呈现不一样的口干程度变化，但均在灌胃后禁水1 h 时出现峰值。其中，35%vol 酒精灌胃后禁水0.5 h 至1 h，其口干程度呈现明显升高，然后在禁水3 h 其口干程度明显降低。35 %vol 保健酒灌胃后禁水0.5～3 h 内，其口干程度保持明显升高，但有随着禁水时间延长口干程度下降的趋势。分析35%vol 酒精灌胃后口干程度的变化，主要和机体中摄入乙醇及其代谢物乙醛等物质含量有关。35 %vol 保健酒饮后口干程度的变化，与同度数酒精存在差异，可能还与保健酒基酒及其组方药材所含成分在机体内的代谢情况有关。

2.3 保健酒不同生药浓度酒体的饮后血清渗透压与口干程度

结合小鼠醉酒试验，以保健酒基酒为对照，记录分析保健酒不同生药浓度酒体灌胃后小鼠醉酒试验的潜伏期、沉醉期，并检测分析翻正反射恢复后血清渗透压数据。保健酒不同生药浓度的小鼠醉酒和渗透压结果如表4。

从表4 可以看出，保健酒不同生药浓度酒体灌胃饮后，与对照组-保健酒基酒组比较，保健酒不同生药浓度组的沉醉期不同程度的缩短，潜伏期均无统计学差异。其中，保健酒M 组、H1 组和H2 组沉醉期显著缩短（p＜0.01，p＜0.05，p＜0.01），保健酒L 组沉醉期较基酒对照组无差异。同时，保健酒不同生药浓度组的翻正反射恢复后血清渗透压呈现一定差异性。即保健酒L 组、M 组渗透压较基酒对照组显著升高（p＜0.01，p＜0.05），保健酒H2 组渗透压较基酒对照组显著降低（p＜0.01），保健酒H1组渗透压较基酒对照组无差异。如图1。

图1 保健酒不同生药浓度酒体饮后血清渗透压变化

结果显示，与保健酒基酒比较，添加不同生药浓度组方药材对保健酒饮后醉酒度有不同程度的改善作用；且添加高生药浓度的组方药材，对饮后口干程度具有减轻作用。其中，保健酒5～15 倍生药浓度酒体饮后醉酒度均呈现明显的改善作用。且保健酒1～5 倍生药浓度酒体饮后口干程度明显加重，保健酒10 倍生药浓度酒体饮后口干程度与其基酒饮后口干程度无差异，保健酒15 倍生药浓度酒体饮后口干程度明显减轻，整体呈现保健酒10～15 倍高生药浓度酒体饮后口干程度明显减轻的结果。综合显示，在保健酒基酒的基础上，添加10～15倍生药浓度的组方药材，对其饮后醉酒度和口干程度具有显著的改善作用。

3 结论

采用药理动物模型开展饮酒口干程度检测方法的探索性研究与应用。通过明确实验动物在禁水0.5～3 h 内血清渗透压显著升高，开展相同度数的酒精和保健酒灌胃饮后血清渗透压变化对比研究，初步建立并验证动物模型口干程度与其血清渗透压的相关性。探索性应用于不同生药浓度的组方药材对保健酒饮后醉酒度和口干程度的影响研究。通过研究发现，相同度数的酒精和保健酒饮后口干程度变化呈现一定的差异性；且添加不同生药浓度的组方药材对保健酒饮后口干程度也有不同影响。由于口干是一个复杂的生理现象，与唾液腺功能、内外部刺激、神经系统调控等多因素相关，因此饮酒后对机体血清渗透压影响及导致机体产生口干等作用机理有待进一步研究明确。