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右美托咪定对体外循环大鼠海马区脑组织TLR4蛋白表达的影响

2020-07-20张媛媛曹惠鹃张铁铮孙莹杰

实用药物与临床 2020年6期
关键词:体外循环咪定脑组织

张媛媛,周 锦,曹惠鹃,张铁铮,孙莹杰

0 引言

体外循环(CPB)是与心血管外科手术相关的主要技术,该技术可提高许多心脏病的治愈率。然而,血液与CPB设备内表面的接触,可激活补体系统,刺激促炎因子释放,从而诱发炎性反应,对机体造成伤害。目前,CPB后神经系统并发症已成为关注的焦点,其发生机制复杂,炎症性脑损害是其中一个方向[1-2],而能有效预防CPB后神经系统损伤的药物和介入手段仍比较有限。既往研究表明,在中枢神经系统中小胶质细胞的免疫应答是通过TLR4完成的,TLR4是触发炎症反应的关键[3]。右美托咪定是一种高选择性的α2肾上腺素受体激动剂,具有镇静、抗焦虑以及轻度镇痛作用,能够减轻炎性反应,具有独特的器官保护作用[4-5]。因此,本研究通过建立大鼠无血预充体外循环模型,观察右美托咪定对体外循环大鼠血清和海马区脑组织炎性因子水平、海马区脑组织TLR4和NF-κB蛋白表达的影响,探讨右美托咪定对体外循环致大鼠脑损伤的作用及可能机制。

1 材料与方法

1.1 实验动物与分组 成年雄性SD大鼠30只,2~3月龄,350~400 g,由北部战区总医院动物实验中心提供,且经北部战区总医院动物实验伦理委员会核准通过。大鼠在进行实验前6 h禁食,自由饮水。30只大鼠按随机数字表法分成3组,每组10只,假手术组(Sham组):10%水合氯醛300 mg/kg腹腔注射麻醉后,行气管插管,右颈内静脉、右股静脉、左股动脉及尾动脉穿刺置管,不进行体外循环。体外循环组(CPB组):同Sham组气管插管和动静脉置管后,行CPB 1 h。右美托咪定+CPB组(DC组):大鼠CPB前15 min内经静脉泵注右美托咪定5 μg/kg,然后在CPB过程中以5 μg/(kg·h)的速度泵注1 h,其余同CPB组。设定4个时间点:T1 (CPB前)、T2(转流1 h)、T3(转流后2 h)、T4(转流后6 h)。

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1.2 建立大鼠CPB模型 本研究依照Chen等[6]的模型制备方法,建立无血预充大鼠体外循环非停跳模型。

作者的回复——我们感谢P.Molnar对我们工作(Parker et al,2011)的兴趣,并客气地(相当正确地)指出地壳均衡在龙门山造山带长期物质方量平衡中的潜在作用。然而,他的观点并没有影响我们的文章的主要思想,即评估与地震相关的侵蚀过程与构造过程之间的瞬时竞争。而地壳均衡又是另一个原因,除了前面我们提出的,为什么我们描述的这种瞬时不平衡可能不会保持长的时间尺度,即超过多个地震周期和黏弹性响应时间(>1 000年)。确实,我们在我们的文章中提出,长期的岩石抬升不可能是2008年同震位移的简单函数;它是由构造活动与弯曲均衡变形的组合产生的,但每个分量的相对重要性并不是我们研究的重点。

1.3 标本采集与处理 每组按时间点经保留的右股静脉采血0.5 ml,室温下静置,10 min后离心(3 000 r/min,10 min)。留取上层血清保存在-20 ℃深低温冰柜中,供ELISA检测用。将大鼠放置于较大的托盘内,全麻状态下剪开胸骨,快速且完整分离胸腺,充分显露心脏。经左心室穿刺置管并连接300~400 ml冰盐水灌注,同时在大鼠右心耳处剪一创口,起初有红色血液流出,待流出液转为无色液体时,断头取脑。两侧均由枕骨大孔至眼眶剪开,掀开颅顶骨,剪断颅底部视神经,游离全脑并置于备好的冰袋上,迅速分离海马组织,置于冻存管中,保存在-80 ℃冰箱里,ELISA法检测IL-6、TNF-α水平,Western blot检测TLR4、NF-kB蛋白表达。

大鼠称重后,以300 mg/kg剂量腹腔注射10%水合氯醛,待大鼠无翻转反射后固定于鼠板上,采用透光法进行气管内插管(16G套管针),连接小动物呼吸机,设定参数。呼吸参数:FiO2=1.0,TV 3 ml/100 g,f=60/min,吸呼比1∶1.5,气道峰压9 cmH2O。穿刺部位剃毛,碘伏消毒,右股静脉处穿刺置管(22G)并连接液体进行补液;尾动脉穿刺(24G)并连接一次性压力传感器测量有创动脉血压;右颈内静脉穿刺,并将导管尖端置于心房(18G,多侧孔以便引流);左股动脉置管(22G)用于CPB过程中血液回输。大鼠静脉注射400 IU/kg肝素钠,活化凝血时间达到400~450 s时,开始CPB。本实验采用无血预充方法制备CPB模型,因此需配置15 ml缓冲液填充CPB管路。成分:6%羟乙基淀粉12 ml、20%甘露醇1 ml、5%NaHCO32 ml和肝素钠150 IU/kg。全部CPB系统由以下各部分组成:连接颈内静脉处的血液输出管、容量为10 ml的储血槽、恒流蠕动泵、用于气体交换的膜式氧合器、连接尾动脉的输入端。储血器固定于低于大鼠心脏平面40 cm的位置,以便达到理想的引流量。将新配制的15 ml缓冲液缓慢加至CPB管路中,排空气泡。打开引流管处的开关,将血液从心房引流至储血器中,起初转流量为25~30 ml/(kg·min),缓慢增加达到100~150 ml/(kg·min),此时储血器中血液平面维持在3~4 ml为宜。CPB开始后将氧气接口与膜肺相连,关闭小动物呼吸机。转流期间,依照血气分析结果调整用药,使之达到MAP>60 mmHg、pH值7.35~7.45、PaCO235~45 mmHg、碱剩余(BE)-3~3 mmol/L的稳定状态。转流达到1 h后,缓慢减小转流量直至停止,启动呼吸机,重新恢复机械通气。保留右股静脉及尾动脉的套管针,以便输液和测量血压。其余管道拔除并结扎血管,缝合切口。严密监测大鼠生命体征,必要时回输管路中血液,应用多巴胺等维持血流动力学稳定。转流过程中,根据足底反射反应适量追加水合氯醛100 mg/kg。

从回归方程中,可以看出中国乳制品的进口需求价格弹性系数为0.585,需求的价格弹性小于1,需求缺乏弹性。这说明在其他条件不变的情况下,根据需求的弹性理论,即中国乳制品的价格每上升1%,则相应的乳制品进口量就下降0.585%。由此可以看出,中国乳制品进口的价格对乳制品的进口量虽然有一定影响,但影响程度不大,即价格因素并不是影响乳制品进口的关键因素,进口乳制品在中国已经占据较为稳定的市场。

2 结果

2.2 各组大鼠血清IL-6、TNF-α浓度比较 T2~T4时,CPB组和DC组大鼠血清中IL-6、TNF-α浓度高于Sham组(P<0.05),DC组大鼠血清中IL-6、TNF-α浓度低于CPB组(P<0.05)。见表2、表3。

2.1 各组大鼠血清S100-β浓度比较 T2~T4时,CPB组和DC组大鼠血清中S100-β浓度高于Sham组(P<0.05),DC组大鼠血清中S100-β浓度低于CPB组(P<0.05)。见表1。

右美托咪定作用于蓝斑核神经元的α2AR,抑制神经冲动发生,阻断兴奋向下游传导,发挥镇静作用;通过调节神经炎症反应,明显减轻脊髓损伤后的组织损伤并改善神经系统结局[7-9];通过抗氧化应激和调节炎性反应,能够明显减轻糖尿病大鼠短暂的全脑缺血再灌注损伤[10]。

传统的钻井施工经验及模式在施工中根深蒂固,抓住“三个一”精准化钻井施工模式这一关键,推动“五个转变”,实现钻井工作的高端化。

2.4 各组大鼠海马区脑组织TLR4和NF-κB蛋白表达比较 与Sham组比较,CPB组和DC组海马区脑组织TLR4、NF-κB蛋白表达上调(P<0.05);与CPB组比较,DC组海马区脑组织TLR4、NF-κB蛋白表达下调(P<0.05)。见图1~图4。

表1 不同时间点各组大鼠血清S100-β浓度比较(pg/ml)

表2 各组大鼠不同时间点血清IL-6浓度比较(pg/ml)

表3 各组大鼠不同时间点血清TNF-α浓度比较(ng/ml)

表4 各组大鼠海马区脑组织IL-6、TNF-α浓度比较

图1 各组大鼠海马区TLR4蛋白表达情况

图2 各组大鼠海马区TLR4蛋白表达情况

图3 各组大鼠海马区NF-κB蛋白表达情况

3 讨论

2.3 各组大鼠海马区脑组织IL-6、TNF-α水平比较 CPB组、DC组海马区脑组织IL-6、TNF-α水平高于Sham组(P<0.05),DC组海马区脑组织IL-6、TNF-α水平低于CPB组(P<0.05)。见表4。

图4 各组大鼠海马区NF-κB蛋白表达情况

S100-β作为脑损伤标志物具有高度特异性,对评定早期脑损害有重要价值。Kanbak等[11]对CPB下行冠状动脉搭桥手术患者研究发现,CPB能明显增加患者血清中S100-β浓度。本研究发现,CPB开始便可触发脑内S100-β释放入血,随着时间发展有明显上升趋势,右美托咪定可显著降低血中S100-β水平,减轻CPB致脑损伤。

TLR4是最先被人类研究发现的Toll样受体家族蛋白[12],广泛存在于人类各器官免疫系统中。在中枢神经系统中,虽然两种胶质细胞均有TLR4表达,但是仅小胶质细胞表面受体与配体结合才能触发炎症反应,释放TNF-α、IL-6等炎症因子[13]。除参与炎症反应外,TLR4还介导多个重要器官的缺血再灌注损伤[14]。

体外循环脑损伤机制尚未明确,主要研究热点集中于炎症和缺血再灌注损伤。在整个脑缺血再灌注损伤病程中,脑内防御细胞,如小胶质细胞、星形胶质细胞等释放大量热休克蛋白、β淀粉样蛋白、透明质酸等作用于小胶质细胞表面并与TLR4结合,进一步激活TLR4相关信号传导通路,产生炎性物质,触发炎症反应。Hyakkoku等[15]的研究指出,大脑中动脉闭塞120 min,恢复血供1 d后,相比野生型小鼠,TLR4无功能性突变鼠的脑梗死范围明显减小,同时,缺血再灌注后的神经损害得到改善。此外,缺血再灌注后TLR4无功能性突变鼠的NF-κB p65亚基明显减少,证明TLR4基因敲除在小鼠缺血再灌注模型中发挥神经保护作用。另外,研究大鼠局灶性缺血再灌注模型发现,针刺足三里穴位能够有效对抗缺血再灌注损伤后炎症反应,减少TLR4/NF-κB通路下游TNF-α、IL-1β、IL-6的产生[14],由此证明TLR4和NF-κB通路参与脑组织缺血再灌注损伤的发生与发展。本研究表明,体外循环后海马区脑组织TNF-α和 IL-6水平、TLR4和NF-κB蛋白表达明显增加,CPB前和CPB过程中静脉输注右美托咪定能有效下调海马区脑组织TNF-α和 IL-6水平、TLR4和NF-κB蛋白表达。有研究在大鼠败血症模型中发现,应用α2AR拮抗剂阿替美唑可对抗右美托咪定下调TLR4的作用[16]。因此,我们推测脑内右美托咪定下调TLR4和NF-κB的机制也可能与其激活α2肾上腺素受体有关。该推测有待后续研究给予证实。

综上所述,右美托咪啶通过抑制TLR4信号转导通路,减少其下游IL-6、TNF-α水平和NF-κB蛋白表达,从而发挥脑保护作用。

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