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一种快速检测单增李斯特菌的双重PCR方法

2019-10-21王昊宇

中国保健营养 2019年1期

王昊宇

【摘 要】探讨检测新鲜海螺样品中单增李斯特菌的双重PCR快速检测方法。基于单增李斯特菌hlyA基因和李斯特菌属的16sRNA基因分别合成两对引物,对影响PCR的主要因素进行优化,最终确定同时检测单增李斯特菌两个特异性基因的双重PCR最佳反应体系及条件,该方法对于纯培养物的最低检出限为102CFU/mL,模拟污染海螺样品的检测限为8CFU/g。

【关键词】单增李斯特菌;双重PCR;海螺样品

【中图分类号】R197 【文献标识码】A 【文章编号】1004-7484(2019)01-0225-02

本工作将单增李斯特菌最重要的毒力因子-编码溶血素的hlyA基因,与李斯特菌属16sRNA基因同时作为单增李斯特菌的检测指标,将双重PCR方法与选择性增菌法相结合,旨在建立一种快速灵敏检测单增李斯特菌的双重PCR方法。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 菌种

单增李斯特菌标准株由省疾病预防控制中心提供;大肠杆菌(Escherichia coil)、沙门氏菌(Salmonella)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、产气杆菌(Aerobacter aerogenes)和伤寒杆菌(Salmonella typhi)为本实验室保存菌株。

1.1.2 试剂

李斯特氏菌显色培养基、单增李斯特菌成套生化鉴定管、胰酪胨大豆酵母浸膏琼脂(TSA-YE)、李氏增菌肉汤LB1、萘啶酮酸、吖啶黄素 青岛高科园海博生物有限公司;细菌基因组DNA提取试剂盒、DNA Marker、溶菌酶、蛋白酶K、RNaseA以及PCR相关试剂 北京天根生化有限公司。

1.1.3 引物序列

根据文献[1]以单增李斯特菌hlyA基因和李斯特菌属的16sRNA基因作为靶基因分别合成两对特异性引物,所用引物序列见表一,引物由北京六合华大基因科技股份有限公司合成。

1.1.4 仪器

VersaDoc凝胶成像仪 美国伯乐;PCR扩增仪 美国伯乐;JM-250电泳仪 大连捷迈科贸有限公司;D-37520高速冷冻离心机 德国Thermo公司。

1.2 方法

1.2.1 细菌的活化培养

取-80℃、25%甘油冻存的菌种,复苏培养后,分别划线于细菌培养基上,37℃培养24h,连续活化两次,将单菌落接种于普通肉汤培养基中,37℃振荡培养18h。

1.2.2 细菌基因组DNA的制备

取1ml菌液按照细菌基因组DNA提取试剂盒说明书步骤进行DNA提取,并溶于100 μL TE缓冲液中,于-20℃下保存。

1.2.3 双重PCR的体系建立及优化

双重PCR扩增体系:10×Buffer(Mg2+)5?L 、dNTPs(2.5mmol/L)4?L、两对10mmol/L的上下游引物各1?L、 DNA模板5?L,Taq酶(2.5U/?L)0.8?L ,用ddH2O補足至50?L。

双重PCR反应条件:采用热启动。95℃预变性3min ,94℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸80s,共30个循环,72℃终延伸10min。

在上述反应体系和条件下,对退火温度进行优化,分别设定退火温度为:55℃、55.8℃、57.1℃、58.9℃、61.4℃、63.3℃,通过对电泳结果的分析,最终确定最佳退火温度。

1.2.4 双重PCR特异性及灵敏度检测

特异性检测:分别提取单增李斯特标准株、大肠杆菌、沙门氏菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、产气杆菌及伤寒杆菌模板DNA,在最佳双重PCR体系及条件下扩增,检测引物特异性。

灵敏度检测:将过夜培养的单增李斯特菌菌液用无菌的生理盐水10倍梯度稀释,使目标菌浓度依次为:106CFU/mL 、105CFU/mL 、104CFU/mL 、103CFU/mL 、102CFU/mL 、10CFU/mL。分别提取不同浓度菌液的模板DNA,在最佳双重PCR体系及条件下扩增,确定双重PCR的检测灵敏度。

1.2.5 人工污染海螺样品的制备及检出限检测

无菌操作取一只海螺的软组织及体液(阴性)共12.5g,加入李氏增菌肉汤LB1(含抑菌剂)中,充分摇匀制成均质液,用无菌生理盐水10倍梯度稀释初始浓度为106CFU/mL的单增李斯特菌菌液,取1mL不同稀释度的菌液分别加入待检试样的均质液中,30℃震荡培养24h,分别取1mL增菌液按照方法1.2.2提取模板DNA,进行双重PCR检测,确定人工污染海螺样品的最低检出限。

2 结果与分析

2.1 不同退火温度下双重PCR扩增结果

对双重PCR的退火温度进行优化(图一),结果可见两条带在一定温度范围内均能有效扩增, 702bp 条带在相同退火温度下的扩增效果均较938bp条带明显,其中在退火温度为55.8℃和58.9℃时,两特异条带同时扩增清晰,考虑到降低退火温度可以提高扩增效率,最终选定55.8℃为最佳退火温度,从而确定双重PCR最佳反应条件。

2.2 特异性及灵敏度检测结果

在双重PCR最佳反应体系及条件下,应用引物1及引物2对不同细菌的模板DNA进行双重PCR扩增。特异性检测结果(图二)显示:只有单增李斯特菌标准株可扩增出938bp和702bp二条带,而其他6株致病菌除引物二聚体外均未出现任何扩增条带,该双重PCR特异性良好。

将初始浓度分别为106CFU/mL、105CFU/mL、104CFU/mL、103CFU/mL、102CFU/mL、10CFU/mL的单增李斯特菌菌液的DNA作为双重PCR反应模板,确定双重PCR检测纯菌液的灵敏度,由图三可知:两特异条带同时检出的最低菌液浓度为102CFU/mL,其灵敏度能够满足样品选择性增菌后的检测要求。

2.3人工污染海螺样品的检出限

单增李斯特菌菌液初始浓度为106CFU/mL,取不同稀释浓度菌液1mL,污染12.5g海螺阴性样品,30℃ LB1震荡培养24h,分别提取增菌液DNA进行双重PCR检测,检测结果如图四所示,当浓度为102CFU/mL的菌液污染海螺样模板品仍可检出,经计算,此双重PCR检测模拟污染海螺样品检出限为8CFU/g。

3 结论

本工作所采用的检测水产品中单增李斯特菌的双重PCR快速方法,菌液灵敏度为102CFU/mL,模拟污染海螺样品检出限为8CFU/g,全程检测时间包括增菌时间在内仅27小时,与国标方法相比省时省力且经济,可快速检测出实际样品中的阳性样品与疑似阳性样品,可作为海螺样品中单增李斯特菌的初步鉴定方法。

参考文献

[1]王海艳,刘中学,等.食品中单增李斯特菌PCR检测方法所用引物的特异性比较[J].检验检疫科学,2007(6):3-8.(J)