，，，　

许多细菌能产生一种或多种溶血素(hemolysin)[1]。以往认为细菌溶血素溶解红细胞与否可作为细菌表型鉴定指标，但对其致病作用所知甚少。近年研究发现细菌溶血素还能损伤甚至致死多种有核细胞和血小板，如单核细胞、粒细胞、肥大细胞、成纤维细胞、心肌细胞和内皮细胞等，故又称为细胞溶素(cytolysin)，从而参与细菌致病过程中发挥了重要作用。本文就细菌溶血素分类及其功能、膜损伤和致病机制等方面进行综述。

1　溶血素分类与功能

早年细菌溶血素多根据抗原性差异分类。例如，金黄色葡萄球菌溶血素因抗原性不同分为α、β、γ、δ、ε 5型，其中以α-溶血素致病作用最强。近年发现细菌溶血素还可损伤或溶解其它细胞，故溶血素通常以菌名加溶素(-lysin)命名。例如，链球菌溶素O(Streptolysin O, SLO)、李斯特菌溶素O(Listeriolysin O, LLO)、肺炎链球菌溶素(Pneumolysin, PLY)、产气荚膜梭菌溶素O(perfringolysin O，PFO)等。根据分子结构、结合细胞方式、膜孔道形成机制和靶细胞反应的不同，可将细菌溶血素分为重复子毒素家族(repeats in toxin family，RTX)、胆固醇依赖细胞溶素家族(cholesterol-dependent cytolysin family，CDC)，但金黄色葡萄球菌α-溶血素既不属于RTX，也不属于CDC。

1.1RTX家族目前其成员超过1 000种，多由革兰阴性菌产生[2]。PTX结构独特，其肽链C端结构域中有数量不等、富含甘氨酸且包含天冬氨酸的9肽重复序列，即G-G-X-G-(N/D)-D-X-(L/I/F)-X，该家族也由此命名[3]。RTX与Ca2+结合后才表现出毒性，9肽重复序列为Ca2+结合区，此结合过程在菌体外完成，然后才能与细胞受体结合并发挥毒性作用。

RTX可插入靶细胞膜中形成分子量100～200 kDa的多聚体通道，使胞内物外溢并引发溶血或溶细胞效应[2-4]。大肠埃希菌α溶血素HlyA是RTX家族典型代表，其分子量107 kDa，有13个RTX重复序列，合成后HlyA无活性，在酰基转移酶HlyC作用下，HlyA中两个赖氨酸脂肪酰基化，成为成熟分子并获得膜孔道形成活性[5]。RTX家族其它成员有30%～75%序列与大肠埃希菌HlyA相同，其成熟和活化也依赖于氨基酸酰基化修饰[4-5]。

RTX通过细菌I型分泌系统(type 1 secretion system，T1SS)分泌，T1SS由位于内膜的ATP结合装置(ABC)、位于周浆间隙的膜蛋白复合物形成蛋白(MFP)和一个跨越外膜的外膜蛋白(OMP)组成，由rtx-操纵子基因编码[6]。RTX的C端有输出信号结构域(domain)，可与T1SS结合后转运至胞外[3, 6]。

目前发现，细菌接触细胞后RTX才发挥毒性作用[7]。例如，大肠埃希菌HlyA对靶细胞攻膜过程如下：①静电力敏感可逆吸附和不可逆插入：迄今未发现HlyA受体，插入能力与分子变构有关，不依赖胆固醇；②跨膜通道形成：HlyA单分子插入膜中，然后在膜内形成同源低聚体，1～3个HlyA即可形成跨膜孔道[5, 7]。靶细胞膜上RTX积聚及持续作用可导致细胞凋亡[7]。

1.2CDC家族CDC通过靶细胞膜上胆固醇发挥作用，多由革兰阳性菌产生[8-9]。常见的CDC有链球菌溶素SLO、李斯特菌溶素LLO、肺炎球菌溶素PLY和产气荚膜梭菌溶素PFO[9]。

CDC可在靶细胞膜上形成大型跨膜孔道，其过程如下：①CDC单体被靶细胞表面胆固醇受体识别并结合；②30～50个单体分子聚合后形成环状孔道前体复合物；③复合物变构后插入细胞膜中形成大型β-桶状跨膜孔道[8]。例如，SLO与靶细胞膜胆固醇受体结合后，单体分子发生寡聚化，形成环状前孔结构(pre-pore structure)，继而变构插入细胞膜中形成大型跨膜两亲性桶状孔道[10]。目前发现SLO形成的孔道最大，其直径30～35 nm，可使细菌毒力因子进入细胞或细胞蛋白外溢。此外，CDC还可诱导炎症反应[11]。

1.3其它金黄色葡萄球菌α-溶血素Hla不属于RTX和CDC家族成员。Hla由292个氨基酸组成，可损伤红细胞和血小板，引起小血管平滑肌收缩甚至痉挛，导致局部缺血坏死，也可引起单核细胞、淋巴细胞、血管内皮细胞损伤。Hla损伤靶细胞膜过程如下：①通过非特异性高亲和力受体与膜表面非特异性底物磷脂酰肌醇或胆固醇初步结合于靶细胞膜；②与特异性受体解整合素样金属蛋白酶ADAM10结合并集中于小窝蛋白-1(caveolin-1)富集区；③7个单体与细胞膜磷脂分子中强亲水性磷酸基团反应后形成七聚体，其下端为14个β-折叠反向平行排列而成的花篮状穿孔结构；④七聚体转变为桶状结构，形成直径为l～1.5 nm穿膜孔道；⑤孔道较小但可使ATP和铁离子等胞内小分子物质漏出，同时不可逆地改变细胞渗透压和膜完整性，导致溶血和有核细胞肿胀及死亡，ADAM10与Hla结合后酶活性增强，可裂解E-钙粘蛋白导致细胞屏障破坏甚至死亡[12-13]。

2　溶血素的细胞毒性与膜损伤机制

根据细菌溶血素对靶细胞的毒性与膜损伤机制不同，可分为膜成孔毒素、酯酶毒素和表面活性毒素。此外，线粒体和溶酶体膜也可成为一些细菌溶血素作用靶点。

2.1膜成孔毒素(pore-forming toxin，PFT)PFTs能在靶细胞膜上形成穿膜孔道，破坏细胞膜结构并使其渗透性增强而导致细胞渗透性溶解。根据二级结构不同，PFT分为α-PFT和β-PFT，分别形成α-螺旋两亲性跨膜孔道和β-桶状跨膜结构[8]。例如，金黄色葡萄球菌α-溶血素、P-V杀白细胞素形成直径小于2.5 nm的跨膜小孔道，CDC家族蛋白则形成直径30 nm及以上的跨膜β-桶状大孔道。

不同物种或不同细胞对同一PFT敏感性有差异[14-15]。例如，金黄色葡萄球菌α-溶血素溶解兔红细胞能力强于羊红细胞，不能溶解人红细胞，但能溶解人血小板、血管内皮细胞、上皮细胞和白细胞，溶解人淋巴细胞、单核细胞的浓度仅为溶解粒细胞的1/100[14]。此外，ADAM10表达量与细胞对金黄色葡萄球菌α-溶血素敏感性相关，人肺上皮A549细胞ADAM10被敲低后，对金黄色葡萄球菌α-溶血素的抵抗力显著增强[12]。

2.2酯酶类毒素(lipasic toxin，LPT)LPT水解靶细胞膜磷脂，导致膜损伤甚至细胞裂解。例如，铜绿假单胞菌溶素具有水解卵磷脂的磷脂酶C(phospholipase C，PLC)活性，金黄色葡萄球菌β-溶血素具有PLC和水解鞘磷脂的鞘磷脂酶(sphingomyelinase，SMse)活性[16]。金黄色葡萄球菌β-溶血素为Mg2+依赖单链酯酶类毒素，同时具有PLC和SMse活性，水解卵磷脂后产生磷脂酰基团和二酰甘油，水解鞘磷脂后可产生神经酰胺，损伤细胞膜或导致细胞渗漏而裂解。

不同物种或不同细胞的细胞膜对同一LPT敏感性有差异[16]。例如，金黄色葡萄球菌β溶血素迅速溶解绵羊红细胞，但溶解兔红细胞的速度较慢，可使白细胞和淋巴细胞活力显著降低但不裂解。

2.3表面活性类毒素(surface active toxin，SAT)SAT是一种两性分子，但疏水性相对较强，可插入细胞膜引起膜表面张力和渗透压改变，损伤细胞膜甚至导致细胞裂解。

金黄色或表皮葡萄球菌δ-溶血素是SAT典型代表。δ-溶血素由26个氨基酸组成、同时有疏水和亲水性α-螺旋结构，插入细胞膜后可改变表面张力或损伤[17]。葡萄球菌δ-溶血素对脂类物质具有天然的亲和力，不仅能溶解红细胞，还能溶解其他哺乳类细胞及其细胞器膜结构[18]。较之细胞膜的有序结构域，葡萄球菌δ溶血素更优先结合于无序结构域，低浓度时该溶血素平行吸附于靶细胞膜表面，导致短暂性膜结构改变、膜张力下降、离子外流甚至触发膜脂质翻转，高浓度时溶解细胞膜[17-18]。

3　溶血素的致病机制

细菌溶血素不仅可导致细胞膜损伤、细胞活力下降以及细胞溶解或裂解，还可引起细胞凋亡(apoptosis)或细胞坏死性凋亡(necroptosis)。此外，近年发现一些细菌溶血素能引起强烈的炎症反应并导致炎症性损伤[19-20]。

3.1细胞溶解或裂解膜成孔溶血素通过在靶细胞膜上形成穿膜蛋白孔道引起细胞渗透性红细胞溶解(溶血)以及单核细胞、粒细胞、内皮细胞和上皮细胞裂解。

3.2细胞膜损伤和细胞活力下降酯酶类溶血素水解靶细胞膜脂质双层中的磷脂，表面活性类溶血素插入靶细胞膜后引起膜表面张力和渗透压改变，轻者导致细胞活力下降，重者导致溶血或有核细胞裂解。

3.3膜损伤相关离子失衡与病变溶血素引起的细胞膜损伤可使膜两侧离子从高浓度一侧向低浓度一侧流动，通常Ca2+和Na+从胞外流入胞内，K+从胞内流出胞外。

3.3.1Ca2+浓度失衡与病变胞内游离Ca2+水平升高可激活Ca2+依赖蛋白酶类以及胞内信号传导系统，如钙调蛋白(CaM)、钙依赖核酸内切酶、钙依赖磷脂酶A2(PLA2)信号传导通路。金黄色葡萄球菌α-溶血素和肺炎球菌PLY膜孔道可使Ca2+内流，激活钙依赖核酸内切酶和酪氨酸磷酸酶(PTPase)，引起IL-2等细胞因子释放和膜结构异常；大肠埃希菌HlyA膜孔道进入的Ca2+可激活PLA2信号通路，产生花生四烯酸、前列腺素、前列环素和白三烯，引起组织和器官功能紊乱、血管渗透性增加和脂质性炎症反应[21-23]。

3.3.2K+浓度失衡与病变金黄色葡萄球菌α-溶血素膜孔道使K+外流，气道上皮细胞去极化并激活p38MAPK信号通路，导致细胞活力下降并引起炎症反应和气道重塑，K+损耗还引起单核细胞白细胞介素转换酶(Interleukin converting enzyme，ICE)的激活，促进成熟IL-1β释放；T淋巴细胞K+泄漏可导致细胞凋亡[23]。

3.4细胞凋亡坏死(necrosis)是细胞所有大分子物质的降解，主要依赖于溶酶体破裂后释放的酶类[22]。凋亡是细胞程序性死亡，为DNA在内源性核酸内切酶作用下被裂解。根据作用机制不同，细胞凋亡可分为caspase依赖和caspase非依赖两条途径[25]。

3.4.1caspase依赖细胞凋亡主要有膜死亡受体/配体Fas/FasL-caspase-8/3途径和线粒体相关CytC-caspase-9/3途径[26]。创伤弧菌细胞溶素(Vibriovulnificuscytolysin，VVC)可入胞作用于线粒体引起膜损伤，导致细胞色素C(CytC)释放，通过CytC-caspase-9/3途径引起血管内皮细胞、肺上皮细胞和肝细胞凋亡[27]。创伤弧菌VVC还能与靶细胞膜胆固醇结合，激活Fas/FasL-caspase-8/3途径诱导内皮细胞和上皮细胞凋亡[28]。肠出血性大肠埃希菌溶血素(EnterohemorrhagicEscherichiacolihemolysin)以外膜囊泡方式入胞并靶向线粒体，经CytC-caspase-9/3途径引起内皮细胞和上皮细胞凋亡[29]。金黄色葡萄球菌β-溶血素具有SMse活性，水解靶鞘磷脂产生神经酰胺，通过CER-caspase-3途径引起细胞凋亡[16, 30]。

3.4.2caspase非依赖细胞凋亡近年发现巨噬细胞吞噬病原微生物过程中产生的高水平活性氧簇(reactive oxygen species，ROS)可通过p53激活Bcl-2家族Puma和Noxa，抑制抗凋亡Bcl-2并使促凋亡Bax去抑制，使线粒体释放凋亡诱导因子(apoptosis-inducing factor，AIF)和核酸内切酶G(endonuclease G，EndoG)，引发caspase非依赖细胞凋亡[31]。金黄色葡萄球菌α-溶血素可引起使单核细胞ROS介导caspase非依赖细胞凋亡[32-33]。

3.5细胞坏死性凋亡细菌感染宿主后产生的肿瘤坏死因子-α(TNF-α)可激活炎症相关细胞程序性死亡[34]，称为坏死性凋亡，其关键环节是蛋白激酶RIPK-1/-3激活，但上下游信号通路尚不清楚[35]。一些细菌PFT可引起肺组织细胞坏死性凋亡，其主要机制是离子外流和氧化暴发(oxidation burst)激活RIPK-1/-3所致[36]。

3.6炎症反应病原微生物感染后机体通常产生炎症反应，可引起组织或细胞炎症性损伤或死亡。近年发现，不少细菌溶血素可通过Toll样受体(Toll-like receptors，TLRs)和Nod样受体(Nod-like receptors，NLRs)引发强烈的炎症反应。迄今所知哺乳类细胞有4种模式识别受体：TLRs、NLRs、凝集素样受体(CLRs)和解旋酶样受体(RLRs)，其中TLRs和NLRs识别病原微生物及其组分并介导感染性炎症反应[37]。

3.6.1TLRs介导的炎症反应与配体结合后经MyD88或TRIF途径激活NF-κB、p38MAPK和JNK信号通路上调多种致炎细胞因子表达。近年发现，TLR2识别霍乱弧菌溶血素，TLR4识别产气荚膜梭菌PFO、链球菌SLO和炭疽杆菌炭疽溶素O(anthrolysin O，ALO)，TLR2和TLR4识别肺炎链球菌PLY、李斯特菌LLO和问号钩端螺旋体溶血素，通过上述信号通路上调多种致炎细胞因子表达[38-40]。问号钩端螺旋体溶血素Sph2、HlpA和TlyA诱生IL-1β或TNF-α的活性甚至与大肠埃希菌LPS相当[40]。此外，溶血后释放的亚铁血红素可被TLR4识别，激活上述信号通路引发炎症反应[41]。此外，金黄色葡萄球菌α-溶血素经NF-κB信号通路促进巨噬细胞表达IL-8，引起中性粒细胞浸润为主的化脓性炎症[42]。

3.6.2NLRs介导的炎症反应NLRs位于胞浆，分为NLRP1～NLRP5，其中NLRP3可与接头蛋白ASC和半胱天冬蛋白酶-1(caspase-1)组成炎症小体(inflammasome)[43]。NLRP3炎症小体调控IL-1β、IL-18、IL-33和高迁移率族蛋白-1(High mobility group box 1，HMGB-1)表达，IL-1β和HMGB-1可经自分泌和旁分泌途径分别与IL-1β受体(IL-1βR)和TLR2/4结合，激活NF-κB、p38MAPK和JNK信号通路放大炎症反应[43-45]。NLRP3炎症小体激活机制如下：①ROS途径：激活能力最强，细胞吞噬病原体时细胞骨架重排、细胞膜损伤激活的NADP/NADPH氧化酶系统以及线粒体膜损伤所致电子漏均可产生大量ROS；②溶酶体途径：吞噬泡与溶酶体融合或溶酶体膜损伤时均可释放组织蛋白酶B(cathepsin B)激活NLRP3炎症小体；③半通道途径：P2X7离子通道激活后释放的ATP等可诱导跨膜缝隙连接蛋白-1(pannexin-1，Panx1)六聚体开放孔道，亚铁血红素等NLRP3配体分子经该孔道入胞激活NLRP3炎症小体[43-44]。细菌溶血素所致膜损伤引起ROS升高和组织蛋白酶B释放、溶血产生的亚铁血红素，均可激活NLRP3炎症小体[44, 46]。金黄色葡萄球菌α-溶血素可激活NLRP3炎症小体，导致特征性IL-18和HMGB-1表达和分泌[32-33]。金黄色葡萄球菌α-溶血素和P-V杀白细胞素、肠出血性大肠埃希菌溶血素和李斯特菌溶素LLO虽可经TLR2/4引起炎症反应，但激活NLRP3炎症小体是引起炎症反应的主要机制[33, 47-49]。此外，TLR4-NF-κB信号通路可上调巨噬细胞NLRP3表达[50]。

3.6.3离子流与炎症相关性金黄色葡萄球菌α-溶血素和P-V杀白细胞素均引起的靶细胞K+外流可促进IL-1β分泌[47, 51]，该α-溶血素相关K+外流还可激活p38MAP和NF-κB，上调IL-8合成与分泌[52]。此外，胞内K+减少可导致caspase-1激活，剪切IL-18前体使之成熟并促使其分泌或激活ICE促进IL-1β外分泌[23, 53]。细菌溶血素膜损伤引起的Ca2+内流可激活PLA2信号通路产生脂质性炎症介质，另可通过细胞呼吸暴发(respiratory burst)和线粒体产生大量ROS激活NLRP3炎症小体[21-23, 54]。

4　小结与展望

细菌溶血素可通过细胞膜损伤、细胞溶解或裂解、离子失衡相关病变、细胞凋亡、炎症反应等参与细菌致病过程。然而，大肠埃希菌α-溶血素、伤寒沙门菌E-溶血素(HlyE)和乙型链球菌β-溶血素还能作用血管内皮细胞和血小板，使毛细血管渗透性增高和凝血障碍而引起出血，其中伤寒沙门菌还可感受宿主应激性激素释放HlyE[5, 55]，但机制不明。近年发现，细菌LPS经caspase-1激活小鼠caspase-11或人caspase-4/5相关非经典炎症小体(non-canonical inflammasome)，剪切gasdermin家族中gasdermin-D成为有活性的gasdermin D-NT，从细胞膜内侧形成膜孔道，引起炎症性程序性死亡，称为细胞焦亡(pyroptosis)[56-58]。因此，同样具有激活caspase-1和膜成孔毒性的细菌溶血素能否激活非经典炎症小体并诱导细胞焦亡值得研究。

参考文献：

对于紫斑病的防治可以通过在发病初期喷75%百菌清可湿性粉剂600倍液、70%代森锰锌可湿性粉剂500倍液、50%扑海因可湿性粉剂1500倍液、40%的大富丹可湿性粉剂500倍液等药剂的轮换使用，每隔一周以上时间喷施一次。连续喷施4次即可。

[1] Yan J. Medical microbiology [M]. Third Edition, Beijing: The High Education Press, 2016, 43-49. (in Chinese)

严杰. 医学微生物学 [M]. 3版，北京：高等教育出版社，2016, 44-46.

[2] Linhartová I, Bumba L, Masín J, et al. RTX proteins: a highly diverse family secreted by a common mechanism[J]. Fems Microbiol Rev, 2010, 34(6): 1076-1112. DOI：10.1111/j.1574-6976.2010.00231.x

[3] Benz R. Channel formation by RTX-toxins of pathogenic bacteria: Basis of their biological activity[J]. Biochim Biophys Acta, 2016, 1858(3): 526-537. DOI: 10.1016/j.bbamem.2015.10.025

[4] Satchell KJ. Structure and function of MARTX toxins and other large repetitive RTX proteins[J]. Annu Rev Microbiol, 2011, 65(1): 71-90. DOI: 10.1146/annurev-micro-090110-102943

[5] Wiles TJ, Mulvey MA. The RTX pore-forming toxin α-hemolysin of uropathogenicEscherichiacoli: progress and perspectives[J]. Future Microbiol, 2013, 8(1): 73-84. DOI: 10.2217/fmb.12.131

[6] Thomas S, Holland IB, Schmitt L. The type 1 secretion pathway — the hemolysin system and beyond[J]. Biochim Biophys Acta, 2014, 1843(8): 1629-1641. DOI: 10.1016/j.bbamcr.2013.09.017

[7] Kim YR, Lee SE, Kook H, et al.VibriovulnificusRTX toxin kills host cells only after contact of the bacteria with host cells[J]. Cell Microbiol, 2008, 10(4): 848-862. DOI: 10.1111/j.1462-5822.2007.01088.x

[8] Cyril FR, James CW, Michelle AD. Giant MACPF/CDC pore forming toxins: A class of their own[J]. Biochim Biophys Acta, 2016, 1858(3): 475-486. DOI: org/10.1016/j.bbamem.2015.11.017

[9] Hotze EM, Le HM, Sieber JR, et al. Identification and characterization of the first cholesterol-dependent cytolysins from Gram-negative bacteria[J]. Infect Immun, 2013, 81(1): 216-225. DOI: 10.1128/IAI.00927-12

[10] Gonzalez MR, Bischofberger M, Pernot L, et al. Bacterial pore forming toxins: the (w)hole story?[J]. Cell Mol Life Sci, 2008, 6(3): 493-507. DOI: 10.1007/s00018-007-7434-y

[11] Cassidy SK, O’Riordan MX. More than a pore: the cellular response to cholesterol dependent cytolysins[J]. Toxins, 2013, 5(4): 618-636. DOI: 10.3390/toxins5040618

[12] Wilke GA, Bubeck-Wardenburg J. Role of a disintegrin and metalloprotease 10 inStaphylococcusaureusalpha-hemolysin-mediated cellular injury[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2010, 107(30): 13473-13478. DOI: 10.1073/pnas.1001815107

[13] Inoshima I, Inoshima N, Wilke GA, et a1. AStaphylococcusaureuspore-forming toxin subverts the activity of ADAM10 to cause lethal infection in mice[J]. Nat Med, 2011, 17(10):1310-1314. DOI: 10.1038/nm.2451

[14] Berube B, Wardenburg J.Staphylococcusaureus-toxin: nearly a century of intrigue[J]. Toxins, 2013, 5(6): 1140-1166. DOI: 10.1038/nm.2451

[15] Loffler B, Hussain M, Grundmeier M, et al.Staphylococcusaureuspanton-valentine leukocidin is a very potent cytotoxic factor for human neutrophils[J]. PLoS Pathog, 2010, 6(1): e1000715-1000726. DOI: 10.1371/journal.ppat.1000715

[16] Alfa H, Bao GV, Christopher SS, et al.Staphylococcusaureusβ-toxin mutants are defective in biofilm ligase and sphingomyelinase activity, and causation of infective endocarditis / sepsis[J]. Biochemistry, 2016, 55(17): 2510-2517. DOI: 10.1021/acs.biochem.6b00083

[17] Julien V, Nicolas G, Christian L, et al. δ-hemolysin, an update on a membrane-interacting peptide [J]. Peptides, 2009, 30(4): 817-823. DOI: 10.1016/j.peptides.2008.12.017

[18] Cheung GY, Duong AC, Otto M. Direct and synergistic hemolysis caused byStaphylococcusphenol-soluble modulins: implications for diagnosis and pathogenesis[J]. Microbes Infect, 2012, 14(4): 380-386. DOI: 10.1016/j.micinf.2011.11.013

[19] Wang H, Peng S, Chen DF. Research progress on the virulence factors ofStreptococcushemolysinS[J]. Chin J Zoonoses, 2017, 33(3): 287-292. DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.018.2017.03 (in Chinese)

王虹, 彭爽, 陈德芳. 链球菌毒力因子溶血素S的研究进展[J]. 中国人兽共患病学报, 2017,33(3): 287-292.

[20] Luo XN, Cao XY, Cai XP. Research progress on mononuclear cell hyperplasia listeria hemolysin[J]. Chin J Zoonoses, 2009,25 (09): 895-898. DOI: 10.5297/ser.1201.002 (in Chinese)

骆学农, 曹晓瑜, 才学鹏. 单核细胞增生李斯特菌溶血素的研究进展[J]. 中国人兽共患病学报, 2009,25 (09): 895-898.

[21] Inoshima I, Inoshima N, Wilke GA, et al AStaphylococcusaureuspore-forming toxin subverts the activity of ADAM10 to cause lethal infection in mice[J]. Nat Med, 2011, 17(10): 1310-1314. DOI: 10.1038/nm.2451

[22] Los FC, Randis TM, Aroian RV, et al. Role of pore-forming toxins in bacterial infectious diseases[J]. Microbiol Mol Biol Rev, 2013, 77(2): 173-207. DOI: 10.1128/MMBR.00052-12

[23] Eiffler I, Behnke J, Ziesemer S, et al.Staphylococcusaureus-toxin-mediated cation entry depolarizes membrane potential and activates p38 MAP kinase in airway epithelial cells[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2016, 311(3): L676-685. DOI: 10.1152/ajplung.00090.2016

[24] Bleriot C, Lecuit M. The interplay between regulated necrosis and bacterial infection[J]. Cell Mol Life Sci, 2016, 73(11/12): 2369-2378. DOI: 10.1007/s00018-016-2206-1

[25] Wei YB, Fan TJ, Yu MM. Inhibitor of apoptosis proteins and apoptosis[J]. Acta Biochim Biophys Sin, 2008, 40(4): 278-288. DOI: 10.1111/j.1745-7270.2008.00407.x

[26] Zhang X, Vallabhaneni R, Loughran P A, et al. Changes in FADD levels, distribution, and phosphorylation in TNF-alpha induced apoptosis in hepatocytes is caspase-3, caspase-8 and BID dependent[J]. J Apoptosis, 2008, 13(8): 983-992. DOI: 10.1016/j.neuroimage.2006.07.002

[27] Zhao JF, Sun AH, Ruan P, et al.Vibriovulnificuscytolysin induces apoptosis in HUVEC, SGC-7901 and SMMC-7721 cells via caspase-9/3-dependent pathway[J]. Microbial Pathogenesis, 2009, 46(4): 194-200. DOI: 10.1016/j.micpath.2008.12.005

[28] Yu HN, Lee YR, Park KH, et al. Membrane cholesterol is required for activity ofVibriovulnificuscytolysin[J]. Arch Microbiol, 2007, 187(6): 467-473. DOI: 10.1007%2Fs00203-007-0214-0

[29] Bielaszewska M, Rüter C, Kunsmann L, et al. EnterohemorrhagicEscherichiacolihemolysin employs outer membrane vesicles to target mitochondria and cause endothelial and epithelial apoptosis[J]. PLoS Pathog, 2013, 9(12): e1003797-1003826. DOI: 10.1371/journal.ppat.1003797

[30] Mao C, Obeid LM. Ceramidasas: regulators of cellular responses mediated by ceramide, sphingosine and sphingosine-1-phosphate[J]. Biochim Biophys Acta, 2008, 1781(9): 424-434. DOI: 10.1016/j.bbalip.2008.06.002

[31] Hu WL, Ge YM, Ojcius DM, et al. p53-signaling controls cell cycle arrest and caspase-independent apoptosis in macrophages infected with pathogenicLeptospiraspecies[J]. Cell Microbiol, 2013, 15(10): 1624-1659. DOI: 10.1111/cmi.12141

[32] Craven RR, Gao X, Allen IC, et al.Staphylococcusaureusalpha-hemolysin activates the NLRP3-inflammasome in human and mouse monocytic cells[J]. PLoS One, 2009, 4(10): e7446-7456. DOI: 10.1371/journal.pone.0007446

[33] Kebaier C, Chamberland RR, Allen IC, et al.Staphylococcusaureusα-hemolysin mediates virulence in a murine model of severe pneumonia through activation of the NLRP3 inflammasome[J]. J Infect Dis, 2012, 205(5): 807-817. DOI: 10.1093/infdis/jir846

[34] Liu TT,Liu CS,Guan JC,et al. Apoptosis mechanism of human umbilical vein endothelial cells induced byStaphylococcusaureusa-hemolysin[J]. Chin J Zoonoses, 2010, 26(06): 569-571.DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2010.06.015 (in Chinese)

刘婷婷, 刘从森, 管俊昌，等. 金黄色葡萄球菌α溶血素诱导脐静脉内皮细胞凋亡机制的研究[J].中国人兽共患病学报, 2010, 26(06): 569-571.

[35] Vince JE, Silke J. The intersection of cell death and inflammasome activation[J]. Cell Mol Life Sci, 2016, 73(11-12): 2349-2367. DOI: 10.1007/s00018-016-2205-2

[36] Gonzalez-Juarbe N, Gilley RP, Hinojosa CA, et al. Pore-forming toxins induce macrophage necroptosis during acute bacterial pneumonia[J]. PLoS Pathog, 2015, 11(12): e1005337-1005359. DOI: 10.1371/journal.ppat.1005337

[37] Takeuchi O, Akira S. Pattern recognition receptors and inflammation[J]. Cell, 2010, 140(6): 805-820. DOI: 10.1016/j.cell.2010.01.022

[38] Dessing MC, Hirst RA, de Vos AF, et al. Role of Toll-like receptors 2 and 4 in pulmonary inflammation and injury induced by pneumolysin in mice[J]. PLoS One, 2009, 4(11): e7993-7998. DOI: 10.1371/journal.pone.0007993

[39] Hunt S, Green J, Artymiuk PJ. Hemolysin E (HlyE, ClyA, SheA) and related toxins[J]. Adv Exp Med Boil, 2010, 677(1): 116-126. DOI: 10.1007/978-1-4419-6327-7

[40] Wang H, Wu YF, Ojcius, DM, et al. Leptospiral hemolysins induce proinflammatory cytokines through Toll-like receptor 2-and 4-mediated JNK and NF-κB signaling pathways[J]. PLoS One, 2012, 7(8): e42266-42280. DOI: 10.1371/journal.pone.0042266

[41] Figueiredo RT, Fernandez PL, Mourao-Sa DS, et al. Characterization of heme as activator of Toll-like receptor 4[J]. J Biol Chem, 2007, 282(28): 20221-20229. DOI: 10.1074/jbc.M610737200

[42] Parimon TL, Li Z, Bolz DD, et al.Staphylococcusaureusα-hemolysin promotes platelet-neutrophil aggregate formation[J]. J Infect Dis, 2013, 208(5): 761-770. DOI: 10.1093/infdis/jit235

[43] Schroder K, Tschopp J. The inflammasomes[J]. Cell, 2010, 140(6): 821-832. DOI: 10.1016/j.cell.2010.01.040

[44] Latz E, Xiao TS, Stutz A. Activation and regulation of the inflammasomes[J]. Nat Rev Immunol, 2013, 13(6): 397-411. DOI: 10.1038/nri3452

[45] Lu B, Nakamura T, Inouye K, et al. Novel role of PKR in inflammasome activation and HMGB1 release[J]. Nature, 2012, 488(7413): 670-674. DOI: 10.1038/nature11290

[46] Dutra FF, Alves LS, Rodrigues D, et al. Hemolysis-induced lethality involves inflammasome activation by heme[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, 111(39): 4110-4118. DOI: 10.1073/pnas.1405023111

[47] Holzinger D, Gieldon L, Mysore V. et al.StaphylococcusaureusPanton-Valentine leukocidin induces an inflammatory response in human phagocytes via the NLRP3 inflammasome[J]. J Leukoc Biol, 2012, 92(5): 1069-1081. DOI: 10.1189/jlb.0112014

[48] Zhang X, Cheng Y, Xiong Y, et al. EnterohemorrhagicEscherichiacolispecific enterohemolysin induced IL-1β in human macrophages and EHEC-induced IL-1β required activation of NLRP3 inflammasome[J]. PLoS One, 2012, 7(11): e50288-50296. DOI: 10.1371/journal.pone.0050288

[49] Meixenberger K, Pache F, Eitel J, et al.Listeriamonocytogenes-infected human peripheral blood mononuclear cells produce IL-1beta, depending on listeriolysin O and NLRP3[J]. J Immunol, 2010, 184(2): 922-930. DOI: 10.4049/jimmunol.0901346

[50] Qiao Y, Wang P, Qi J, et al. TLR-induced NF-κB activation regulates NLRP3 expression in murine macrophages[J]. FEBS Lett, 2012, 586(7): 1022-1026. DOI: 10.1016/j.febslet.2012.02.045

[51] Spaan AN, Vrieling M, Wallet P, et al. The staphylococcal toxins-haemolysin AB and CB differentially target phagocytes by employing specific chemokine receptors[J]. Nat Commun, 2014, 5(11): 5438-5468. DOI: 10.1038/ncomms6438

[52] Kloft N, Busch T, Neukirch C, et al. Pore-forming toxins activate MAPK p38 by causing loss of cellular Potassium[J]. Biochembiophys Res Commun, 2009, 385(4): 503-506. DOI: 10.1016/j.bbrc.2009.05.121

[53] Brodsky IE, Monack D, NLR-mediated control of inflammasome assembly in the host response against bacterial pathogens[J]. Semin Immunol, 2009, 21(4): 199-207. DOI: 10.1016/j.smim.2009.05.007

[54] Nunes P, Demaurex N. The role of calcium signaling in phagocytosis[J]. J Leukoc Biol, 2010, 88(1): 57-68. DOI: 10.1189/jlb.0110028

[55] Karavolos MH, Bulmer DM, Spencer H, et al.Salmonellatyphisense host neuroendocrine stress hormones and release the toxin hemolysin E[J]. EMBO Rep, 2011, 12: 252-258. DOI: 10.1038/embor.2011.4

[56] Kayagaki N, Warming S, Lamkanfi M, et al. Non-canonical inflammasome activation targets caspase-11[J]. Nature, 2011, 479(7371): 117-121. DOI: 10.1038/nature10558

[57] Vigano E, Diamond CE, Spreafico R, et al. Human caspase-4 and caspase-5 regulate the one-step non-canonical inflammasome activation in monocytes[J]. Nat Commun, 2015, 6(10): 8761-8773. DOI: 10.1038/ncomms9761

[58] Liu X, Zhang ZB, Lieberman J, et al. Inflammasome-activated gasdermin D causes pyroptosis by forming membrane pores[J]. Nature, 2016, 535(7610): 153-158. DOI: 10.1038/nature18629