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iRGD-外泌体-阿霉素抑制恶性黑色素瘤体外增殖的研究

2017-03-16赵莉娟郑江红柳向东茅广宇邓辰亮杨松林

组织工程与重建外科杂志 2017年1期
关键词:阿霉素黑色素瘤外泌体

赵莉娟 郑江红 柳向东 茅广宇 邓辰亮 杨松林

iRGD-外泌体-阿霉素抑制恶性黑色素瘤体外增殖的研究

赵莉娟 郑江红 柳向东 茅广宇 邓辰亮 杨松林

目的探讨应用iRGD-外泌体-阿霉素抑制人恶性黑色素瘤细胞系A375体外增殖的有效性及其靶向性。方法体外转染iRGD,并提取外泌体,通过电穿孔包裹阿霉素,利用流式细胞仪检测iRGD-外泌体-阿霉素对A375细胞的亲和力,并对iRGD-外泌体-阿霉素抑制A375细胞的增殖能力进行分析。结果iRGD-外泌体-阿霉素与A375细胞的结合率高于空白转染-外泌体-阿霉素;iRGD-外泌体-阿霉素可明显抑制A375细胞的增殖,空白转染-外泌体-阿霉素未观察到明显的抑制情况。结论iRGD-外泌体-阿霉素能通过靶向作用于A375细胞,并抑制其增殖。

恶性黑色素瘤靶向治疗外泌体阿霉素

恶性黑色素瘤(Malignant melanoma,MM)是起源于皮肤黑色素细胞的高度恶性肿瘤,占体表恶性肿瘤的7%~20%,仅次于皮肤鳞癌和基底细胞癌,居第三位[1]。恶性黑色素瘤的发病机制尚未明确,黑色素细胞痣恶变、病毒感染、紫外线照射等多种因素均与其发生有关[2],传统的手术及放、化疗治疗效果有限。近年来,外泌体作为一种包裹药物的特异性载体,可包裹阿霉素等化疗药物,靶向作用于恶性黑色素瘤细胞,降低传统化疗的副作用[3]。其靶向治疗优势明显[4],免疫原性低、无毒副作用;且来源广,具有磷脂双分子层结构,易于与靶细胞的细胞膜融合[5];分子结构小,纳米级分子量(10~100 nm),可避免单核细胞的吞噬作用,且易于穿透肿瘤组织毛细血管向深层组织浸润[6]。本实验根据iRGD可与恶性黑色素瘤表面的αν整合素特异性结合的原理,体外设计iRGD-外泌体,经电穿孔包装阿霉素后靶向结合恶性黑色素瘤细胞表面,经胞吞作用将阿霉素摄入肿瘤细胞内,直接有效地起到抗肿瘤效果,并减少对正常细胞的损伤。

1 材料与方法

1.1 主要试剂和仪器

人恶性黑色素瘤细胞系A375(以下简称为A375),人肾上皮细胞系293T(以下简称为293T),均购于中科院上海细胞所;胎牛血清(浙江天杭生物科技有限公司);DMEM培养液、胰酶、PBS(江苏凯基生物技术股份有限公司);外泌体提取试剂(美国Invitrogen公司);阿霉素(美国Sigma公司);荧光染剂DIO(美国Invitrogen公司)。

电穿孔仪(美国Invitrogen公司);FACS Calibur型流式细胞仪(美国Becton Dickinson公司)。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养

含10%小牛血清的DMEM培养基在37℃、5% CO2培养箱中培养293T细胞,待细胞融合至85%~90%时,传代培养,收集第6~8代293T细胞用于下一步实验研究。

1.2.2 质粒构建与细胞转染

293T细胞接种至六孔板,细胞85%~90%融合时,按Lipofectamine 2000说明书配置溶液A:240 μL无血清DMEM+10 μL Lipofectamine2000;溶液B:233 μL无血清DMEM+17 μL pcDNA3.1(+)-hLAMP2b-CysiRGD质粒。质粒序列:TGCTGTAGAGGTGACAAAGGCCCAGATTGTGGTGGATCATGC。将A、B在5 min内混匀,室温放置20 min后,每孔各加入2 mL DMEM,A、B混匀后悬滴加入培养液中,标记为空白转染组(对照组)、iRGD转染组(实验组)。摇动培养板轻轻混匀,放置在37℃、5%CO2培养箱中培养。6 h后更换含10%胎牛血清的FBS培养液,24 h后收集上清,提取外泌体。

1.2.3 外泌体的提取

细胞转染收集上清,2 000 g离心30 min,离心后收集1 mL上清,加入500 μL Total Exosome Isolation reagent,4℃过夜,10 000 g 4℃离心1 h,弃上清,分别获得空白转染-外泌体(blank-exo,对照组)、iRGD-外泌体(iRGD-exo,实验组),沉淀,-20℃保存。

1.2.4 药物包装

将0.2 μL外泌体+50 μg阿霉素用buffer混匀(200 μL体系),常温下1 KV、20 ms电穿孔后4℃保存,分别获得空白转染-外泌体-阿霉素(blankexo-dox,对照组)与iRGD-外泌体-阿霉素(iRGD-exo-dox,实验组)。

1.2.5iRGD的RT-PCR检测

取冻存外泌体抽提RNA,并将其转合成为cDNA,进行PCR反应,GAPDH设为管家基因。PCR反应条件:94℃预变性5 min,94℃变性40 sec,40℃退火40 sec,72℃延伸1 min。将EP管放入仪器扩增,循环35次;72℃延伸10 min。4℃储存。用1%琼脂糖凝胶进行电泳,并检测拍照。

GAPDH引物序列:上游5’-CATGAGAAGTATGACAACAGCCT-3’,下游5’-AGTCCTTCCACGATACCAAAGT-3’;iRGD引物序列:上游TCGATGTTAGACCTGGAAATAGTGGTGCTGTG,下游CCGGCACAGCACCACTATTTCCAGGTCTAACA。

1.2.6A375细胞染色

用含10%胎牛血清的FBS培养液在37℃、5% CO2培养箱中培养两组A375细胞,待细胞65%~70%左右融合时,使用试剂Dio进行细胞染色。使用DMSO配置成1 mM浓度作为储存液,PBS稀释200倍至5 μM工作液,将稀释好的Dio染料悬滴加入A375细胞培养皿中,37℃、5%CO2孵育1 h。PBS溶液清洗染剂,在细胞培养皿中加入10 mL含10%胎牛血清的FBS培养液。

1.2.7 外泌体结合

将获取的blank-exo-dox、iRGD-exo-dox悬液分别悬滴加入已Dio染色的A375细胞培养皿中,37℃、5%CO2孵育1 h后,PBS清洗3次,去除多余的外泌体,分别得到A组(blank-exo-dox-A375,实验组)、B组(iRGD-exo-dox-A375,对照组)细胞,分别进行流式细胞仪检测和细胞增殖检测。

1.2.8 流式细胞仪检测

胰酶消化后分别获取A组和B组细胞悬液,1 000 g离心3 min,弃上清,获取细胞沉淀,将两组细胞沉淀分别加入0.9%NaCl,稀释至1 mL,用于流式细胞仪检测,并记录数据。

1.2.9 细胞增殖检测

取96孔板,分别用于检测A、B组细胞,每孔加入100 μL的A或B细胞悬液(1×104个/孔)。将培养板置于37℃、5%CO2的条件培养箱中分别孵育0、24、48、72、96 h,向待测孔加入10 μL CCK-8溶液。每组细胞、每个时间点取3个样品检测,将培养板在培养箱内孵育1~4 h。用酶标仪测定在450 nm处的吸光度。

2 结果

2.1iRGD-外泌体的鉴定

我们通过RT-PCR对iRGD mRNA的表达水平进行评估。结果显示相较于blank-exo,iRGD-exo具有较高水平的iRGD mRNA表达(图1)。

图1RT-PCR检测iRGD的mRNA表达Fig.1The mRNA expression of iRGD detected by RT-PCR

2.2iRGD-外泌体-阿霉素靶向于A375细胞的研究

为了确认iRGD是否靶向于A375细胞上的αν整合肽,我们将blank-exo-dox、iRGD-exo-dox悬液分别悬滴加入已Dio染色的A375细胞培养皿中。流式细胞检测证实,iRGD-exo-dox与A375细胞的结合效率高于blank-exo-dox(分别为41.5%、8.4%),表明iRGD可特异性结合于A375细胞表面的αν整合素(图2)。

图2 流式细胞仪检测结果Fig.2Results of flow cytometry

2.3iRGD-外泌体抑制A375细胞的效果

使用iRGD-exo-dox与blank-exo-dox对A375细胞进行24、48、72、96 h存活能力分析。CCK-8检测显示iRGD-exo-dox抑制了细胞的增殖,但在blank-exo-dox中并没有观察到明显的抑制情况,表明iRGD-exo-dox对A375细胞的增殖有明显的抑制作用(图3)。

图3A375细胞增殖曲线Fig.3The curve of cell proliferation in A375 cells

3 讨论

近年的研究认为,靶向治疗可直接高效地起到抗肿瘤作用,但靶向治疗的瓶颈在于发现的相关肿瘤的细胞表面特异性抗原有限。目前已发现的恶性黑色素瘤标志物有:黑色素瘤细胞分化抗原糖蛋白(Glycoprotein,gp)100、黏附分子L1-CAM、人内源性逆转录病毒K包膜蛋白(HERV-K)等[7]。这些标志物在多种实体瘤,如恶性黑色素瘤、乳腺癌、卵巢癌、膀胱癌中均有过度表达,而在正常细胞中表达量极低,它们的相对特异性表达是当前治疗相关肿瘤的重要靶点[8-13]。Krishnamurthy等[7]利用HERV-K的肿瘤特异性,构建相关嵌合抗原受体修饰的T细胞(CAR-T),特异性识别HERV-K并与其结合,起到了限制肿瘤生长的效果。

αν整合素是细胞表面的一种黏附分子,主要通过介导细胞与细胞外基质的黏附作用,而影响细胞的生物学行为,在正常细胞表面呈低表达水平,同样在多种实体瘤细胞表面呈高表达水平,与肿瘤的侵袭、转移密切相关[14]。乳腺癌、卵巢癌、膀胱癌、恶性黑色素瘤等肿瘤细胞表面均过度表达αν整合素,Tian等[3]利用αν整合素表达的相对特异性,联合设计体内和体外实验,将化疗药物靶向作用于乳腺癌细胞,取得显著疗效。本实验针对恶性黑色素瘤细胞表面αν整合素的高水平表达,体外构建iRGD-exo-dox颗粒,将阿霉素特异性作用于恶性黑色素瘤细胞(A375细胞),观察对恶性黑色素瘤体外增殖的影响。

外泌体是由内皮细胞和造血干细胞产生的磷脂双分子层囊泡,可经胞吞作用被细胞摄取,是运输化疗药物的理想载体[15]。与传统化疗方法相比,经外泌体转载的化疗药物可特异性作用于肿瘤细胞,其纳米级(10~100 nm)结构可避免体内单核巨噬细胞的吞噬[6],可以提高抗肿瘤的效能;同时还能避免对正常细胞的损伤,降低化疗的副作用。目前,大量的化疗药物因剂量依赖性副作用而导致应用受限。阿霉素是常见的临床化疗药物,对肿瘤生长控制有显著效果,但同时也可广泛作用于全身正常细胞,而引起心血管系统损伤[16]。本研究在体外构建运载化疗药物(阿霉素)的载体,通过载体与细胞之间的靶向结合直接将药物作用于肿瘤细胞,安全高效地遏制恶性黑色素瘤的增殖。我们在体外培养293T细胞,待细胞融合率达80%~90%时,体外转染iRGD,提取外泌体,通过电穿孔包裹阿霉素,利用流式细胞仪检测iRGD-外泌体-阿霉素对A375细胞的亲和力,并对iRGD-外泌体-阿霉素抑制A375细胞的增殖能力进行分析。结果显示,iRGD-外泌体-阿霉素与A375细胞的结合率高于空白转染-外泌体-阿霉素,且iRGD-外泌体-阿霉素可明显抑制A375细胞的增殖,而空白转染-外泌体-阿霉素未观察到明显的抑制作用,说明表达iRGD蛋白的外泌体携载阿霉素能更有效地抑制细胞增殖,起到抗肿瘤作用。

近年来,恶性黑色素瘤的发病率逐渐增加,80%皮肤癌的死亡与恶性黑色素瘤相关。常隐匿起病,但进展速度快,早期易发生转移,恶性度高,预后差,生存中位数只有6个月左右[17]。传统的手术切除、放化疗对恶性黑色素瘤的治疗效果均不明显,且截肢术及放化疗的毒副作用增加了患者的痛苦。应用外泌体作为药物载体的靶向治疗在提高抗肿瘤效能的同时,也降低了患者放化疗的痛苦。外泌体来源广、免疫原性低,在靶向治疗领域中具有广阔的应用前景。相信随着更为深入的研究,有望为包括恶性黑色素瘤在内的肿瘤治疗,开辟一条高效可行的新途径。

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The Inhibition of iRGD-Exosomes-Doxorubicin on the Proliferation of Malignant Melanoma in Vitro

ObjectiveTo investigate the effect and targeting of iRGD-exosomes-doxorubicin(iRGD-exo-dox)on the inhibition of A375 cell line.MethodsThe exosomes were extracted from the iRGD-transfected A375 cells.The doxorubicin was wrapped by electroporation.Flow cytometry was used to detect the affinity of iRGD-exo-dox to A375 cells.The ability of iRGD-exo-dox on inhibiting the proliferation of A375 cells was analyzed.ResultsThe affinity of iRGD-exo-dox to A375 cells was higher than the blank-exo-dox.The proliferation of A375 cells was obviously inhibited by iRGD-exo-dox.The inhibition effect was not observed in blank-exo-dox group.ConclusioniRGD-exo-dox can inhibit the proliferation of A375 cells by targeting function.

Malignant melanoma;Targeted therapy;Exosome;Doxorubicin

R739.5

B

1673-0364(2017)01-0025-04

ZHAO Lijuan,ZHENG Jianghong,LIU Xiangdong,MAO Guangyu,DENG Chenliang,YANG Songlin.
Department of Plastic Surgery, Shanghai Sixth People's Hospital,Shanghai Jiaotong University,Shanghai 200233,China.Corresponding author:YANG Songlin(E-mail:slyang@sjtu.edu.cn).

16日;

2017年1月22日)

10.3969/j.issn.1673-0364.2017.01.007

200233上海市上海交通大学附属第六人民医院整形外科。

杨松林(E-mail:slyang@sjtu.edu.cn)。

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