蔺慕会 何金婷 陈晓虹 徐忠信

(辽宁省人民医院神经内科，辽宁 沈阳 110016)

IL-1β是IL-1家族中主要的活性分子〔1〕，在脑内主要来源于小胶质细胞〔2〕。在阿尔茨海默病(AD)患者脑中，IL-1β浓度增高与小胶质细胞活化间有明显相关性〔3〕，提示IL-1β、小胶质细胞活化有可能参与了AD的发生、发展过程。本研究选择与神经元生物学特性有很多相似之处的PC12细胞及已被广泛用来体外培养并代替小胶质细胞的BV2细胞共同培养，进而探讨由Aβ寡聚体预处理的BV2细胞对PC12细胞凋亡的影响及IL-1β在此过程中的作用，来研究小胶质细胞对神经元损伤的作用及机制。

1 材料与方法

1.1 材料 PC12细胞购于中国科学院北京细胞生物研究所，BV2细胞购于上海复祥生物科技有限公司。细胞转移筛网购于美国BD Falcon公司;RPMI1640培养基、DMEM培养基、胎牛血清购于 Gibco公司;Aβ1-42，六氟丙醇(HFIP)，抗 tau，tau(pS396)一抗、二抗购于Sigma公司;MTT(噻唑蓝)购于上海华舜生物工程有限公司;BCA蛋白定量试剂盒购于美国PIERCE公司。Western印迹化学发光检测试剂盒和小鼠IL-1βELISA试剂盒购于武汉博士德公司;IL-1ra购于R＆D系统(Minneapolis MN);IL-1β购于Sigma公司。

1.2 实验分组 对照组(Aβ+PC12组):PC12细胞培养液中加入Aβ1-42(0、10μmol/L)孵育24 h。实验组1(Aβ+BV2+PC12组):BV2 细胞经 Aβ1-42(0、1、5、10 μmol/L)预处理 24 h后检测IL-1β，并选择0、10μmol/L组与PC12细胞共育24 h。实验组 2(IL-1β +PC12 组):IL-1β(0、0.3、1、3、10 ng/ml)加入PC12细胞培养液中孵育24 h;实验组3〔(Aβ+BV2)+(PC12+IL-1ra)组〕:选择 0、10 μmol/L组，预先用 IL-1ra(50 ng/ml)孵育PC12细胞1 h后，进行实验组1的细胞培养。

1.3 Aβ寡聚体的制备及细胞培养 按Klein WL(2002)方法制备Aβ1-42寡聚体〔4〕，用RPMI1640培养液(含10%胎牛血清，100 U/ml青霉素，100 g/L链霉素)将PC12细胞培养在24孔培养板中。用DMEM培养液(含10%胎牛血清)将BV2细胞培养在转移筛网上。在BV2细胞经Aβ1-42处理24 h后，将培养液及生长有BV2细胞的转移筛网同时移入PC12细胞培养板与PC12细胞共育。

1.4 BV2细胞培养液中IL-1β含量的检测 不同浓度Aβ1-42(0、1、5、10 μmol/L)处理 BV2 细胞 24 h 后，收集培养液，按照试剂盒说明书，用双抗体夹心ABC-ELISA法检测培养液中IL-1β的含量。以96孔酶标计数仪检测光密度值。根据对数公式，通过样品OD值计算出IL-1β量。

1.5 Western印迹法检测PC12细胞tau(pS396)、tau蛋白表达将蛋白裂解缓冲液(预冷至0℃)加入经过漂洗的单层PC12细胞中，静置20 min;用细胞刮棒收集细胞，用蛋白定量分析(BCA法)测定总蛋白浓度。加样蛋白含量50μg，经10%SDSPAGE电泳分离，4℃条件下转膜，置膜于5%脱脂奶粉封闭1 h，在室温下分别加入兔抗大鼠tau(pS396);tau一抗(1∶1 000)，4℃ 过夜，室温下加入辣根过氧化物酶标记的二抗(1∶4 000)，60 min;化学发光显色，计算机扫描分析。

1.6 统计学处理 数据以x±s表示，采用SPSS10.0软件进行t检验。

2 结果

2.1 Aβ预处理的BV2细胞培养液中IL-1β含量 Aβ寡聚体预处理的BV2细胞培养液中可检测出IL-1β，随着Aβ寡聚体浓度(0，1，5，10 μmol/L)的增加，IL-1β 含量也明显增加〔(16.50 ±1.60)，(1 102.13 ±138.25)，(2 522 ±94.77)，(2 965 ±121.3)pg/ml〕(P ＜0.05)。

2.2 不同浓度IL-1β处理后PC12细胞tau(pS396)、tau蛋白表达情况 IL-1β(0.3、1、3、10 ng/ml)加入PC12细胞培养液中孵育24 h后，可见PC12细胞tau(pS396)/总tau蛋白比值〔分别为(21.240±2.26)%、(27.775±1.103)%、(35.691±1.320)%、(38.836±1.530)%〕较未加入IL-1β组〔(11.201±2.171)%〕增多(P＜0.05)，并呈现一定的量效关系。见图1。

图1 不同浓度IL-1β处理后PC12细胞tau(p S396)、tau蛋白表达结果

2.3 IL-1ra对PC12细胞tau(pS396)蛋白表达的影响 IL-1β(3 ng/ml)+ PC12 组 (35.691% ± 1.320%)，Aβ(10μmol/L)+BV2+PC12组，Aβ(10 μmol/L)+BV2+PC12+IL-1ra组tau表达(12.660% ±2.002%)无明显变化;tau(pS396)/总tau比值 Aβ(10μmol/L)+PC12组(35.694% ±1.523%)，Aβ(10μmol/L)+BV2+PC12 组(49.504% ±3.146%)均明显增加(P＜0.05)，后者与前者相比tau(pS396)表达进一步增多(P＜0.05);Aβ(10μmol/L)+BV2+IL-1ra+PC12组(40.611% ±3.019%)与 Aβ(10μmol/L)+BV2+PC12组相比tau(pS396)表达有所减少(P＜0.05)。见图2。

图2 各组PC12细胞tau(pS396)、tau蛋白Western印迹表达结果

3 讨论

IL-1β是IL-1家族的主要活性分子〔1〕，在成年后脑内表达水平很低。但在中枢神经系统炎症、损伤等疾病后，IL-1含量显著增加〔5〕。研究发现，AD患者脑中IL-1β表达水平升高，其血清中的IL-1β也比正常老年人高出数倍，并且IL-1β多态性与AD的发病和进展密切相关〔6〕。

表达P2X7受体的小胶质细胞(MG)在Aβ作用下可分泌大量的IL-1β〔2〕，Griffin等1989年首次发现AD患者脑中 IL-1活性、MG数量较对照组增加约6倍，提示在AD患者脑中MG可能是IL-1的主要来源〔7〕。本研究首先用Aβ寡聚体公认的AD致病因子作用于BV2细胞，排除其他因素干扰，发现BV2细胞能分泌较多IL-1β至培养液上清。并且Aβ寡聚体与BV2分泌的IL-1β有剂量相关性，提示Aβ寡聚体与BV2细胞合成、分泌IL-1β有因果关系，支持既往观点。

IL-1β在AD中的作用有学者认为起保护作用〔8〕，但多数认为IL-1β参与AD发展的炎症反应中，处于反应链的前端，可进一步引起其他炎症介质如NO的增多，加重炎症反应〔9〕，还可以直接引起神经元tau蛋白磷酸化及突触损伤〔10〕。本研究提示IL-1β可导致tau蛋白异常磷酸化，从而导致细胞骨架形成障碍，最终导致神经元凋亡。

本研究结果提示 BV2细胞可促进 Aβ1-42寡聚体导致的PC12细胞tau(pS396)表达。为明确此作用是否与BV2细胞分泌IL-1β有关，本研究用IL-1ra预先处理PC12细胞，封闭PC12细胞IL-1β受体，IL-1受体拮抗蛋白(IL-1ra)在一级结构与空间构象上，与IL-1具有同源性，是IL-1的竞争性拮抗剂，对IL-1α及IL-1β受体结合能力都很强，足以阻断二者的功能〔11〕。本结果提示BV2细胞加重Aβ1-42寡聚体对PC12细胞的损伤与其分泌IL-1β有关。当然，与对照组相比，IL-1ra并未完全拮抗BV2的损伤作用，因为Aβ1-42寡聚体处理BV2细胞后必然有其他因子产生，参与BV2细胞加重对PC12细胞的损伤过程，这一点也在3 ng/ml IL-1β+PC12组与10μmol/L+BV2+PC12组比较中发现，虽然BV2细胞经Aβ(10μmol/L)处理24 h后产生IL-1β约为3 ng/ml左右，但3 ng/ml IL-1β+PC12组蛋白比值却低于Aβ(10μmol/L)+BV2+PC12组，虽无统计学意义，但提示除了IL-1β外还有其他因素参与此过程。至于还有哪些因子参与还有待于进一步研究。

本研究通过体外细胞培养研究证实，IL-1β通过引起tau异常磷酸化通路参与BV2细胞加重Aβ寡聚体对PC12细胞损伤过程，提示对小胶质细胞活化及对其分泌的炎性介质进行干预，可能是治疗AD的一条可行之路。但体内环境复杂，是否通过阻断AD病人IL-1β的作用，就能有助于阻止AD病情发展，还需进一步探讨。

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