邝杰华 马 骞,2① 陈 刚,2① 毛非凡 周启苓 黄建盛,2 施 钢 张健东,2

军曹鱼基因cDNA克隆及其在性腺周年发育过程中的表达*

邝杰华1马 骞1,2①陈 刚1,2①毛非凡1周启苓1黄建盛1,2施 钢1张健东1,2

(1. 广东海洋大学水产学院 广东 湛江 524025；2. 南方海洋科学与工程广东省实验室(湛江) 广东 湛江 524025)

军曹鱼；；基因克隆；性腺发育；表达分析

基因最初鉴定于斑马鱼()中(Weidinger, 2003)，可编码一种进化上保守的RNA结合蛋白，作为脊椎动物生殖质的重要组分之一，特异表达于生殖系细胞中，并在生殖细胞的发生及发育过程中发挥着重要作用(Gross-Thebing, 2017)。基于此特性，基因常作为分子标记物，广泛应用于鱼类生殖细胞的相关研究(程琳等, 2020)。目前，已在多种脊椎动物中克隆和鉴定出的同源基因，包括小鼠() (Bhattacharya, 2007)、红原鸡() (Aramaki, 2009)、非洲爪蟾() (Horvay, 2006)、大西洋鳕鱼() (Škugor, 2014)、大西洋鲑() (Wargelius, 2016)、泥鳅() (Fujimoto, 2010)、银鲫() (Li, 2016)等。

据报道，基因的表达模式在不同物种中存在明显的差异，如基因仅在小鼠精巢中特异表达(Bhattacharya, 2007)；在非洲爪蟾中，基因则特异表达于卵巢(Horvay, 2006)；而大黄鱼() (陈仕海等, 2015)、大菱鲆() (Lin, 2013)和牙鲆() (Wang, 2015)基因均在性腺中特异表达，但在卵巢中的表达水平要高于精巢。关于基因功能方面，小鼠基因发生突变后，将抑制原始生殖细胞(PGCs)的产生，导致部分特定遗传背景的个体产生睾丸生殖细胞瘤(Youngren, 2005)；抑制非洲爪蟾胚胎发育时期基因的表达将直接导致其PGCs的缺失(Horvay, 2006)；敲除斑马鱼基因可引起PGCs的迁移发生异常，随后调亡，部分雌性个体甚至出现性逆转的现象(Weidinger, 2003)。以上研究结果表明，基因在PGCs发生、迁移及性别分化中发挥着重要的调节作用。

军曹鱼()隶属鲈形目(Perciformes)、军曹鱼科(Rachycentridae)、军曹鱼属()，为广盐暖水性海水鱼类，俗称海鲡、海龙鱼，广泛分布于热带和亚热带海域(东太平洋除外) (Castellanos-Galindo, 2016)，在中国南海部分海域亦有少量分布(陈刚等, 2004)。由于军曹鱼具有生长速率快、易于驯化、抗病力强、肉厚质地细腻等特点(Hamilton, 2013)，近年来在南方沿海地区的养殖发展迅猛，随着人工繁殖和大规模育苗技术的突破，军曹鱼已成为我国极具前景的海水网箱养殖鱼类之一。

本研究克隆分析军曹鱼()基因cDNA全长序列，利用半定量RT-PCR和实时荧光定量PCR技术(qRT-PCR)检测的组织表达分布及其在不同发育期性腺组织中的表达水平，利用原位杂交技术初步分析mRNA在配子形成过程中的表达定位分布，旨在从分子水平阐明基因在军曹鱼配子发生过程中的作用，同时也为进一步研究鱼类PGCs发生、迁移和分化的分子机理提供基础理论资料。

1 材料与方法

1.1 实验材料及处理

实验用军曹鱼于2019年6月—2020年4月采自广东省茂名市电白县某室内养殖基地，军曹鱼幼鱼饲养于直径9 m、水深2.5 m的金属圆形水池内，流水充气，养殖盐度27.0～30.5，温度25.0℃～30.0℃，分别对90、120、150、185、210和360 dph体质良好的军曹鱼进行采样，其中，实验用雌鱼共23尾，体重215.0～5050.0 g，体长29.8～68.5 cm；雄鱼共18尾，体重230.0～4225.0 g，体长29.2～64.5 cm。

对随机采集的军曹鱼活体进行形态学指标的测量，随后立即解剖，取出性腺，鉴定其性别，将同一尾鱼的两叶性腺分开保存，其中一叶性腺于4℃在RNA Later中静置过夜，最后转移至–80℃超低温冰箱保存，用于qRT-PCR实验；另外一叶性腺从中间剪为两段，分别放入4%多聚甲醛(PFA)中，固定24 h后转入焦碳酸二乙酯(DEPC)配制的70%乙醇中，用于切片原位杂交实验。此外，选取150 dph军曹鱼雌雄各1尾，将其脑、肌肉、鳃、肝、肠、胃、脾、体肾、心、皮肤、眼睛、精巢和卵巢分离，经DEPC水冲洗后放入RNA Later中，–80℃保存待用。

1.2 Rcdnd基因全长cDNA的克隆

将采集的军曹鱼卵巢放入液氮中研磨，采用Trizol法(Invitrogen)提取总RNA。通过SimpliNano超微量核酸蛋白测定仪检测总RNA的浓度和纯度，并以1.5%琼脂糖凝胶电泳检测其完整性。参考EasyScript One-step cDNA Synthesis试剂盒(TransGen)说明书，将2 μg总RNA反转录合成第一链cDNA，另取2 μg总RNA，按照SMARTer®RACE 5′/3′试剂盒(Clontech)说明书，合成5′/3′ RACE-Ready cDNA。

从课题组前期获得的军曹鱼全基因组数据库(暂未上传至NCBI数据库)中提取基因的CDS序列信息，分别在序列两端设计上下游特异性引物Rcdnd-F和Rcdnd-R(表1)，PCR反应条件：95℃ 5 min；95℃ 30 s，67℃ 30 s，72℃ 1 min 20 s，共35个循环；72℃ 10 min，PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测，确定为目的片段后用胶回收试剂盒(TransGen)纯化回收，并将纯化产物连接到pMD-18T (TaKaRa)载体，进而转化至DH-5α感受态细胞，筛选挑取单克隆阳性菌落由生工生物工程(上海)股份有限公司测序。根据测序片段，分别在靠近序列5′和3′末端各设计2条RACE引物Rcdnd 5′-R1/R2和Rcdnd 3′-F1/F2 (表1)，采用巢式PCR获取基因5′和3′末端序列。

使用NCBI数据库上的BLASTP对克隆所得Rcdnd氨基酸序列进行比对，下载其他硬骨鱼类及高等脊椎动物的dnd氨基酸序列，利用GenDoc进行氨基酸序列多重比对分析。利用MEGA 5.0软件，以邻接法(neighbour-joining, NJ)构建系统进化树，针对进化树各分支结点均进行1000次重复计算检验。

1.3 Rcvasa基因在各组织及性腺发育过程中的表达

通过组织学观察并参照国内学者(刘筠, 1993)对鱼类性腺的分期方法，依据性腺中生殖细胞的种类、成熟度、数量占比及排列方式进行发育分期的划分，提取不同发育时期军曹鱼的性腺以及150 dph军曹鱼个体各组织的总RNA，按照反转录试剂盒说明书合成cDNA。基于测序获得的基因序列，设计一对特异性扩增引物Rcdnd-F1/R1，并以军曹鱼作为内参基因(表1)。PCR反应条件：94℃ 5 min；94℃ 30 s，62℃ 30 s，72 ℃ 20 s，35个循环；72℃ 10 min。通过琼脂糖凝胶电泳检测在不同组织中的半定量RT-PCR结果，利用Tanon 4100凝胶成像系统采集图像。qRT-PCR实验流程按照SYBR®Premix ExTM试剂盒(TaKaRa)说明书进行操作，使用ABI 7500型实时荧光定量PCR仪检测在不同发育时期精巢和卵巢中的表达，每个实验样品设置3个重复。根据测得的值，采用2–ΔΔCt法(Schmittgen, 2008)计算的相对表达量。所得数据结果均以平均值±标准差(Mean±SD,=3)表示，利用统计学软件SPSS 19.0进行单因素方差分析(one-way ANOVA)及Duncan´s多重比较，<0.05表示有显著性差异。

1.4 性腺组织原位杂交

根据已获得的基因序列，利用Primer Premier 6.0软件设计具有特异性的寡核苷酸探针序列(表1)，探针的5′和3′端用地高辛(DIG)标记，由武汉赛维尔生物科技有限公司合成。

将石蜡包埋的120、210和360 dph军曹鱼精巢和卵巢样品进行组织切片(5～6 μm)，具体杂交过程综合参考相关研究中的方法(李晓妮等, 2017; 史宝等, 2017)。滴加BCIP/NBT显色液进行化学显色，显微观察阳性后再滴加核固红染核，中性树胶封片，最后显微镜检，采集图像分析。

表1 本研究所用引物

Tab.1 Primers used in this study

2 结果与分析

2.1 Rcdnd cDNA全长及序列分析

图1 军曹鱼dnd cDNA全长序列和氨基酸序列分析

下划线指示起始密码子和终止密码子，粗体斜体指示加尾信号，灰色阴影指示RRM识别基序

The initiation codon ATG and stop codon TAA are underlined. The polyadenylation signal AATTAAA are in bold and italic. The RNA recognition motif (RRM) are highlighted in grey shadow

2.2 Rcdnd的组织表达模式

采用半定量RT-PCR检测了在150 dph军曹鱼各组织中的表达水平，结果表明，在性腺中特异表达，且卵巢和精巢中均检测到较高的表达水平，在性腺外的其他组织中均无表达(图4)。

2.3 Rcdnd在性腺周年发育过程中的表达模式

在精巢发育过程中，的表达水平呈逐渐上升趋势，其在90 dph (Ⅱ期)的表达量最低，120 dph (Ⅱ～Ⅲ期)时表达量无显著变化，而在150 dph (Ⅲ期)～ 360 dph (Ⅴ期)的表达量均出现显著升高，其中，185 dph (Ⅲ期)时表达量上升至90 dph的2.68倍，210 dph (Ⅳ期)的表达量与185 dph (Ⅲ期)无显著差异，而360 dph (Ⅴ期)时表达量进一步显著升高并达到最大值，约为90 dph的3.33倍(图5A)。

卵巢发育过程中，的表达水平先显著升高后趋于平稳，90 dph (Ⅰ期)时的表达量最低，随后在120 dph (Ⅰ～Ⅱ期)～360 dph (Ⅲ期)的表达量均显著高于90 dph，其中，150 dph表达量上升至最大值，约为90 dph的2.25倍，185 dph (Ⅱ期)和210 dph (Ⅱ期)的表达量均较150 dph显著降低，而185、210和360 dph发育时间点的相对表达量无显著差异(图5B)。

2.4 Rcdnd在性腺发育过程中的表达定位

利用切片原位杂交技术检测mRNA在军曹鱼不同发育期性腺中的表达定位，结果显示，120 dph军曹鱼的精巢中，mRNA的杂交信号主要分布于精原细胞、初级精母细胞和次级精母细胞的周缘，其中，在精原细胞和初级精母细胞中检测到的杂交信号最强，次级精母细胞中的杂交信号明显减弱，而精细胞中几乎检测不到杂交信号(图6A1)。mRNA在210 dph和360 dph军曹鱼精巢中的表达定位模式与120 dph相似，杂交信号主要分布于精子形成过程中的精原细胞和精母细胞，在精细胞和成熟精子中的表达极其微弱(图6B1、C1)。

图2 军曹鱼dnd氨基酸序列的多重比对

方框表示5个氨基酸特异性保守结构域

The frame regions indicate the five amino acid specific conserved regions

图3 基于dnd氨基酸序列构建的系统进化树(NJ树)

Bootstrap检验的重复次数为1000次，标尺0.05为进化距离

The tree is based on a 1000 bootstrap procedure, the scale bar 0.05 in terms of genetic distance is indicated below the tree

图4 RT-PCR分析Rcdnd在军曹鱼不同组织中的表达

图5 军曹鱼性腺周年发育过程中Rcdnd mRNA的表达水平

上标不同字母表示差异显著(<0.05)

Different superscripts indicate significant difference (<0.05)

在卵巢发育过程中，mRNA主要在生殖细胞中表达，杂交信号均匀分布于细胞质及核仁内。mRNA在卵原细胞中的表达最强，而在初级卵母细胞中的表达相对较弱，且随着卵母细胞的生长发育，在第Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ时相卵母细胞中检测到的杂交信号强度无明显变化(图6A1、B1和C1)。

3 讨论

图6 原位杂交法分析不同发育期性腺中Rcdnd mRNA的定位

A1、B1和C1：120 dph、210 dph和360 dph精巢切片；A2、B2和C2：120 dph、210 dph和360 dph卵巢切片SG：精原细胞；PSC：初级精母细胞；SSC：次级精母细胞；ST：精细胞；SP：精子；OG：卵原细胞；Ⅰ：第Ⅰ时相卵母细胞；Ⅱ：第Ⅱ时相卵母细胞；Ⅲ：第Ⅲ时相卵母细胞

A1, B1 and C1: Sections of testis at 120 dph, 210 dph and 360 dph; A2, B2 and C2: Sections of ovary at 120 dph, 210 dph and 360 dph SG: Spermatogonia; PSC: Primary spermatocyte; SSC: Secondary spermatocyte; ST: Spermatid; SP: Spermatozoa; OG: Oogonium; Ⅰ: Oocyte at Stage Ⅰ; Ⅱ: Oocyte at Stage Ⅱ; Ⅲ: Oocyte at Stage Ⅱ

本研究采集的军曹鱼精巢样品包含了性腺发育分期的Ⅱ～Ⅴ期，其中，90 dph时，精巢处于精母细胞增长期(Ⅱ期)；120 dph时，精巢处于Ⅱ～Ⅲ期；150 dph和185 dph时，精巢均处于精母细胞成熟期(Ⅲ期)，而210和360 dph精巢分别处于精子细胞变态期(Ⅳ期)和精子成熟期(Ⅴ期)。这些样品中，的表达量随着精巢的发育呈逐渐上升趋势，在精子成熟期达到最大值，表明在军曹鱼精子发生过程中发挥一定的调控作用，这与大菱鲆(Lin, 2013)和蓝鳍金枪鱼(Yazawa, 2013)的研究结果相似。采集的卵巢样品包含3个发育分期，其中，90 dph卵巢属于卵原细胞增殖期(Ⅰ期)，120 dph卵巢处于Ⅰ～Ⅱ期，150、185和210 dph卵巢均属于卵母细胞小生长期(Ⅱ期)，360 dph卵巢发育至初级卵母细胞大生长期(Ⅲ期)。表达量在卵原细胞增殖期最低，随着卵巢的发育，表达量显著升高并趋于稳定，卵巢由Ⅰ期发育至Ⅲ期的过程中，卵母细胞通过积累糖类、蛋白质、核酸等原生质，细胞体积不断增大(Nishimura, 2014)，因此，在卵巢发育过程中较高的表达水平可能与生殖细胞原生质的积累密切相关。此外，大菱鲆卵巢发育过程中，基因的表达量在由Ⅰ期发育至Ⅱ期时出现显著的升高，但随着卵巢进一步发育至Ⅲ、Ⅳ期，其表达量呈下降趋势(Lin, 2013)，这与基因在军曹鱼卵巢发育过程中的表达模式存在一定差异，由此推测，基因在卵巢发育过程中的表达模式存在物种差异性。

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Cloning and Expression Analysis ofDuring Annual Gonadal Development of Cobia ()

KUANG Jiehua1, MA Qian1,2①, CHEN Gang1,2①, MAO Feifan1, ZHOU Qiling1, HUANG Jiansheng1,2, SHI Gang1, ZHANG Jiandong1,2

(1. College of Fisheries, Guangdong Ocean University, Zhanjiang, Guangdong 524025, China; 2. Southern Marine Science and Engineering Guangdong Laboratory (Zhanjiang), Zhanjiang, Guangdong 524025, China)

In this study, the full length cDNA sequence of() was cloned using RACE technology for the first time. In total, the sequence comprises 1339 bp, including a 5′-UTR of 59 bp, a 3′-UTR of 173 bp, and an open reading frame of 1107 bp, encoding a protein of 368 amino acids. The deduced amino acid sequence contains a conserved RNA recognition motif and four conserved regions (CR1～4). Comparisons of the deduced amino acid sequence with those of other teleosts revealed the highest percentage identity (72.3%) with.Phylogenetic tree analysis also showed that the dnd ofwas most closely related to the homologous proteins ofReverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) resultsindicated thatwas specifically expressed in the gonads, but not in other tissues. The results of real-time quantitative PCR (qRT-PCR) revealed thatexpression tended to gradually increase as the testis developed (Stages Ⅱ to Ⅴ). During the development of the ovary (Stage Ⅰ to Ⅲ),expressionfirst increased substantially and then stabilized; the highest expression level was found at 150 days post hatching (dph) (Stage Ⅱ). Furthermore, the results of chemical in situ hybridization revealed thatmRNA was mainly expressed in germ cells but barely detected in somatic cells. In the testis,mRNA signals were concentrated in the periphery of spermatogonia and primary spermatocytes; they were only weakly detected in secondary spermatocytes and barely detected in spermatids and spermatozoa. In the ovary,mRNA was highly expressed in oogonia, and the signals became weak in primary oocytes dispersed in the perinuclear cytoplasm. There were no significant differences inmRNA signals detected in oocytes in phases Ⅰ, Ⅱ, and Ⅲ. In conclusion, these findings suggest that thegene may play an important role in gonadal development and provide a theoretical reference for revealing the regulatory mechanism of germ cell differentiation during gametogenesis in.

;; Gene cloning; Gonadal development; Expression analysis

MA Qian, E-mail: maq@gdou.edu.cn; CHEN Gang, E-mail: cheng@gdou.edu.cn

Q785; S917

A

2095-9869(2022)02-0119-10

10.19663/j.issn2095-9869.20210107002

* 财政部和农业农村部: 国家现代农业产业技术体系专项资金、南方海洋科学与工程广东省实验室(湛江)(ZJW-2019-06)和广东海洋大学科研启动经费资助项目(R19022)共同资助 [This work was funded by China Agriculture Research System of MOF and MARA, Fund of Southern Marine Science and Engineering Guangdong Laboratory (Zhanjiang) (ZJW-2019-06), and Program for Scientific Research Start-up Funds of Guangdong Ocean University (R19022)]. 邝杰华，E-mail: 3242864479@qq.com

马 骞，副研究员，E-mail: maq@gdou.edu.cn；陈 刚，教授，E-mail: cheng@gdou.edu.cn

2021-01-07,

2021-02-05

邝杰华, 马骞, 陈刚, 毛非凡, 周启苓, 黄建盛, 施钢, 张健东. 军曹鱼基因cDNA克隆及其在性腺周年发育过程中的表达. 渔业科学进展, 2022, 43(2): 119–128

KUANG J H, MA Q, CHEN G, MAO F F, ZHOU Q L, HUANG J S, SHI G, ZHANG J D. Cloning and expression analysis ofduring annual gonadal development of cobia (). Progress in Fishery Sciences, 2022, 43(2): 119–128

(编辑 冯小花)