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肝组织切片不同保存时间抗原丢失比较

2019-11-04陈高峰马园园陶艳艳

肝脏 2019年10期
关键词:石蜡室温胶原

陈高峰 马园园 陶艳艳

临床与实验研究中,研究人员习惯将组织切片保存在室温条件下,有研究初步发现,组织切片室温保存6个月部分抗体检测不出阳性结果,这提示组织切片室温下保存可能导致抗原丢失[1]。但是组织切片室温保存不同时间抗原是否丢失?不同部位抗原丢失是否一致?组织切片蜡封后是否能减少抗原丢失?针对上述问题,我们采用纤维化肝组织蜡块连续切片,室温条件下放置0、24、48与96周时浸蜡封片,免疫组化染色观察细胞膜、细胞浆、细胞核三个不同部位抗原表达变化,用于指导临床与实验研究中组织切片保存。

资料与方法

一、实验动物

Fisher344 18只,雄性,SPF级,体质量160~180 g,购自北京维通利华实验动物有限公司,许可证号SCXK(京)2012-0001,饲养于上海中医药大学实验动物中心,设施许可证号:SYXK(沪)2009-0069。所有动物均自由饮食饮水。

二、主要试剂

四氯化碳(CCl4),化学纯,批号20140325;橄榄油,化学纯,批号F20140402,购自国药集团;二乙酰氨基芴(2-Acetamidofluorene,2-AAF),Lot#:SLBJ2755V,购自sigma;天狼猩红试剂,货号G1470购自Solarbio;HE试剂,货号D005-1,购自南京建成;免疫组化Ⅰ抗:CK7,货号ab181598;Hedgehog信号通路配体蛋白(sonic hedgehog,SHH),货号ab73958;肝细胞标志物(Hepatocyte nuclear factor 4 alpha,HNF 4α),货号ab216897。Ⅱ抗:小鼠与兔HRP/DAB (ABC)检测试剂盒,货号ab64264,均购自abcam公司。

三、研究方法

(一)模型制备 大鼠适应性饲养1周后,用30% CCl4/橄榄油溶液2 mL·kg-1皮下注射,每周2次,共计6周;第7周开始,模型继续30% CCl4皮下注射的同时添加10 mg·kg-1·d-12-AAF灌胃3周,共9周,建立2-AAF/ CCl4大鼠肝纤维化模型。

(二)样品的采集和处理 造模9周结束,2%戊巴比妥钠2 mL·kg-1腹腔注射麻醉,仰卧位固定,打开腹腔。经下腔静脉采血后从肝右叶切取1.5 cm × 1.0 cm × 0.5 cm大小肝组织1块,10%甲醛溶液固定,脱水、包埋,用于HE、胶原及免疫组化染色。

(三)肝组织石蜡切片保存 每例肝组织石蜡块连续切片12张,分成3组(分别用于HE、天狼猩红胶原与免疫组化染色),每组4张(用于设0、24、48、96周共4个不同时间点)。切片于常温空气中放置0、24、48、96周时浸蜡封片;96周时切片统一脱蜡至水进行HE染色、天狼猩红胶原染色及免疫组化染色(细胞膜蛋白胆管上皮细胞标志物CK7、细胞浆蛋白SHH,细胞核蛋白肝细胞标志物HNF 4α),观察肝组织炎症、胶原沉积与不同部位组织细胞抗原表达变化。

(四)肝组织HE与天狼星红胶原染色 肝组织经中性甲醛缓冲液固定,石蜡包埋。HE染色:石蜡切片,切片为4 μm厚度,二甲苯脱蜡,梯度酒精水化,蒸馏水水洗3~5 min,Harris苏木素液染 15 min,自来水洗3~5 min,5%盐酸酒精分化10 s,水洗蓝化 3~5 min,镜检细胞核,伊红复染10 s,梯度脱水,二甲苯透明,封片。天狼猩红胶原染色:石蜡切片,切片为4 μm厚度,二甲苯脱蜡,梯度酒精水化,蒸馏水水洗3~5 min,天狼星红染色液滴染15 min,无水乙醇分化,二甲苯透明,封片。胶原染色阳性面积分析:采用OlympusDP71显微数码CCD采集图片,用Image-Pro Plus 6.1进行肝组织胶原面积半定量分析。

(五)肝组织免疫组化染色 肝组织石蜡切片脱蜡至水,PBS洗3次各5 min,新鲜配制的3%H2O2,37 ℃封闭10 min,PBS洗3次各5 min;抗原修复(微波柠檬酸修复)把切片放入置有柠檬酸的缓冲液中100 ℃ 10 min,自然冷却;PBS洗3次各5 min;滴加5% BSA封闭液,37 ℃ 10 min,甩去多余液体;滴加一抗50 μL,4 ℃过夜;PBS洗3次各5 min;滴加生物素化二抗,37 ℃ 30 min;PBS洗3次各5 min;滴加试剂SABC 37 ℃ 10 min;PBS洗3次各5 min;DAB显色,苏木素染核,脱水、透明、封片、镜检。免疫组化染色阳性面积分析:采用OlympusDP71显微数码CCD采集图片,用Image-Pro Plus6.1进行肝组织阳性表达面积半定量分析。

四、统计学方法

所有数据均采用SPSS 15.0进行统计分析,计量资料用表示,符合正态性和方差齐性的数据用配对t检验,不符合正态性或方差齐性的数据用非参数检验。

结 果

一、肝组织细胞膜、细胞浆与细胞核抗原表达变化

免疫组化染色结果显示,CK7蛋白表达于胆管上皮细胞,应用ImagePro Plus软件半定量分析显示,0周时CK7阳染面积为12.70%±0.90%;24周时显著减少至9.02%±0.61%,为0周的71.02%(P<0. 05);48周时显著减少至5.97%±0.57%,为0周的47.01%(P<0. 05);96周时显著减少至4.28%±0.61%,为0周阳染面积的33.70%(P<0.05);见图1、表1。

SHH蛋白抗原表达于肝细胞浆,应用Image-Pro Plus 6.1软件半定量分析显示,0周SHH阳染面积为45.44%±6.11%;24周时显著减少至22.44%±2.45%,为0周的49.38%(P<0.05);48周时显著减少至11.96%±1.24%,为0周的26.32%(P<0.05);96周时显著减少至9.44%±1.07%,为0周SHH阳染面积的20.77%(P<0.05);见图2、表1。

HNF-4ɑ蛋白抗原表达于肝细胞核。应用ImagePro Plus 6.1软件半定量分析显示, 0周HNF-4ɑ阳染面积占9.38%±0.62%;24周时显著减少至4.48%±0.55%,为0w点的47.76%(P<0.05);48周时显著减少至1.36%±0.33%,为0周的14.50%(P<0.05);96周时显著减少至1.07%±0.06%,为0周HNF-4ɑ阳染面积的11.41%(P<0.05);见图3、图4。

注:A:0周;B:24周;C:48周;D:96周

图1肝组织切片室温不同放置时间CK7免疫组化染色、HE染色与天狼猩红胶原染色变化(×200)

注:A:0周;B:24周;C:48周;D:96周

图2肝组织切片室温不同放置时间SHH免疫组化染色、HE染色与天狼猩红胶原染色变化(×200)

二、肝组织炎症和胶原沉积变化

HE染色结果显示,模型组肝小叶结构紊乱,小叶内肝细胞疏松,散在的少量点状坏死,汇管区大量炎症伴中度界面炎,偶见浆细胞浸润,纤维组织增生,纤维间隔形成。HE染色显示,0~96周不同时间点肝组织炎症病理无明显改变。见图1、2、3。

天狼猩红染色结果显示,模型大鼠肝脏胶原纤维增生明显,大量纤维间隔向小叶内延伸,可见汇管区间(P-P)纤维间隔和汇管区-中央静脉(P-C)纤维间隔形成,部分有明显的纤维间隔和再生结节。应用ImagePro Plus软件半定量分析显示,与0周相比,肝组织切片室温放置24、48、96周不同时间,CK7染色组、SHH染色组与HNF-4ɑ染色组胶原面积率均逐渐减少,96周胶原面积显著减少至0周的73.76%、74.44%与64.54%。见图1~3与表1。

注:A:0周;B:24周;C:48周;D:96周

图3肝组织切片室温不同放置时间HNF-4ɑ免疫组化染色、HE染色与天狼猩红胶原染色变化(×200)

讨 论

免疫组化是应用免疫学抗原抗体反应的基本原理,对组织细胞内抗原(多肽和蛋白质)进行定位、定性及定量的研究方法[2]。随着免疫组化技术在病理诊断/疗效判断、基础医学研究中的广泛应用,其结果的可靠性、重现性愈来愈受到重视。组织固定、切片保存、染色前处理及染色中的实验操作,任何一个环节出现问题,都可能直接影响免疫组化染色,从而影响诊断或科研结果的准确性。因此许多专家提出重视免疫组化的质量控制和标准化,包括组织取材和固定、石蜡切片保存时间、方法和温度、组织封闭和抗原修复等质量控制[3-4]。

组织切片存储于室温条件下是否抗原会丢失?这一直是困扰着我们的一个问题。本研究中,组织切片分别于室温条件下放置0、24、48、96周时浸蜡封存,96周时统一脱蜡至水后开展HE、天狼猩红及免疫组化染色。随着组织切片放置时间延长至96周,胶原面积显著减少至0周的64.54~74.44%;随着时间延长,CK7阳染面积从0周12.70%下降至96周时的4.28%,仅占0周的33.70%; SHH阳染面积从0周45.44%下降至96周时的9.44%,仅占0周SHH的20.77%%;与0周相比,96周点细胞核抗原HNF 4ɑ仅微弱表达,仅为0周的11.41%。上述结果提示,随着切片室温放置时间延长至96周时,胶原面积约为0周时点的70%;组织细胞抗原在24周时已经出现明显丢失,至96周损失更为严重,尤其核抗原丢失更为突出,究其原因可能与空气中氧化作用有关。

表1 肝组织细胞抗原阳染率与胶原面积率变化(%)

注:与0周相比,#P<0.05,##P<0.01

本研究中切片室温放置时间延长,胶原与抗原表达均逐渐减少,但抗原丢失更为突出。胶原是细胞外基质主要蛋白质成分,纤维胶原的分子结构特征是由3条左手螺旋α肽链绞合成右手旋转的超三螺旋,结构稳定[5],这也可能是胶原丢失没有组织细胞抗原损失明显的原因。有研究者提出[6],若要长期保存组织切片等生物样本应放入-20℃及以下低温保存,但低温条件会受到场地设备等条件限制;本研究采用纤维化肝组织连续切片,分别于室温条件下放置0~96周时石蜡封固切片,结果提示组织切片石蜡封固可以避免抗原损失。所以在实际工作中可以采用来避免抗原损失以便长期保存,这就可以大大降低抗原丢失率,用于指导临床与实验研究中组织切片保存。

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