林燕 聂宇波 戴薇 宋丽云

【摘要】 目的：探讨黄疸新生儿TORCH特异性抗体检测的临床应用。方法：选取2017年1月-2018年12月在本院出生的病理性黄疸新生儿60例为黄疸组，并以同期健康新生兒60例为健康组。比较两组TORCH-IgM抗体和TORCH-IgG抗体阳性表达率及血清胆红素水平（TBIL、IBIL、DBIL）;比较黄疸组TORCH-IgG抗体不同表达水平者血清胆红素水平;分析TORCH-IgM抗体及TORCH-IgG抗体阳性表达与病理性黄疸发生的相关性;分析TORCH-IgG抗体表达与血清胆红素水平的相关性。结果：黄疸组TOX-IgG、RV-IgG、CMV-IgG抗体阳性表达率均高于健康组（P<0.05）;两组TORCH-IgM抗体阳性表达率及HSV-IgG抗体阳性表达比较，差异均无统计学意义（P>0.05）;TORCH-IgG抗体阳性表达组血清TBIL、IBIL均高于阴性组（P<0.05），两组DBIL水平比较，差异无统计学意义（P>0.05）;经Pearson检验分析，TORCH-IgG抗体表达与TBIL、IBIL、DBIL水平均呈正相关（P<0.05）;经Spearman检验分析，TORCH-IgM抗体阳性表达与病理性黄疸发生无相关性（P>0.05），TORCH-IgG抗体阳性表达与病理性黄疸发生呈正相关（P<0.05）。结论：黄疸新生儿TORCH-IgG抗体阳性表达率高于健康新生儿，其TORCH-IgG特异性抗体表达与黄疸的发生及严重程度有关。

【关键词】 黄疸新生儿 弓形虫 风疹病毒 巨细胞病毒 单纯疱疹病毒

[Abstract] Objective： To investigate the clinical application of TORCH specific antibody in jaundice neonates. Method： A total of 60 neonates with pathological jaundice born in our hospital from January 2017 to December 2018 were selected as jaundice group， and 60 healthy newborns in the same period were selected as healthy group. The positive expression rate of TORCH-IgM antibody and TORCH-IgG antibody and serum bilirubin levels （TBIL， IBIL， DBIL） were compared between the two groups. The serum bilirubin levels of patients with different TORCH-IgG antibody expression levels in jaundice group were compared. The correlation between the expression of TORCH-IgM antibody and TORCH-IgG antibody and pathological jaundice were analyzed. The correlation between TORCH-IgG antibody expression and serum bilirubin level was analyzed. Result： The positive expression rate of TOX-IgG， RV-IgG and CMV-IgG in the jaundice group were higher than those in the healthy group （P<0.05）. There were no significant differences in the positive expression rate of TORCH-IgM antibody and HSV-IgG antibody between the two groups （P>0.05）. Serum TBIL and IBIL in the TORCH-IgG positive expression group were higher than those in the negative group （P<0.05）. There was no significant difference in DBIL between the two groups （P>0.05）. Pearson test showed that TORCH-IgG antibody expression were positively correlated with TBIL， IBIL and DBIL levels （P<0.05）. Spearman test showed that there was no correlation between the positive expression of TORCH-IgM antibody and pathological jaundice （P>0.05）， and the positive expression of TORCH-IgG antibody was positively correlated with pathological jaundice （P<0.05）. Conclusion： The positive expression rate of TORCH-IgG antibody in jaundice newborns was higher than that in healthy newborns， and the expression of TORCH-IgG specific antibody was related to the occurrence and severity of jaundice.

[Key words] Jaundice Newborn Toxoplasma gondii Rubella virus Cytomegalovirus Herpes simplex virus

First-authors address： Ganzhou Peoples Hospital， Ganzhou 341000， China

doi：10.3969/j.issn.1674-4985.2019.36.040

TORCH感染主要包括弓形虫（toxopasma，TOX）、风疹病毒（rubella virus，RV）、巨细胞病毒（cytomegalo virus，CMV）、单纯疱疹病毒（herpes virus，HSV）感染，是一组造成新生儿先天性感染，是导致患儿致残、死亡的重要病原体[1]。有报道指出，TORCH感染可能与新生儿黄疸的发生有关，且TORCH感染者黄疸持续时间明显延长[2]。TORCH感染时，会导致全身各脏器功能紊乱，影响机体正常代谢。但目前尚不知TORCH感染导致新生儿发生黄疸的机制。因此，本研究通过检测黄疸新生儿中TORCH特异性抗体的表达情况，旨在探究其与新生儿黃疸的联系，为新生儿黄疸的治疗提供依据，现报道如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料 选取2017年1月-2018年12月在本院出生的病理性黄疸新生儿60例为黄疸组，并以同期健康新生儿60例为健康组。（1）纳入标准：符合《新生儿黄疸诊疗原则的专家共识》关于新生儿黄疸的诊断标准[3]。（2）排除标准：严重心肝肾功能异常者;严重先天性疾病患儿;其他感染性疾病患儿。患儿家属均签署知情同意书，研究经医院伦理学委员会批准。

1.2 方法 （1）TORCH抗体检测方法：采集所有受试者3 mL静脉血待检，应用北京现代高达生物技术有限责任公司提供的TORCH抗体IgG、IgM检测试剂盒，采用酶联免疫吸附法检测两组TORCH-IgM抗体及TORCH-IgG抗体，在操作过程中应严格按照说明书进行操作，尽量避免样本交叉污染。计算样本抗体指数，样本抗体指数=样品吸光度/临界校正液平均吸光度，抗体指数≥1时为阳性。（2）胆红素水平测定：受试者均采集3 mL静脉血，离心，分离血清，采用贝克曼库尔特AU5800型全自动生化分析仪检测血清总胆红素（total bilirubin，TBIL）、间接胆红素（indirect bilirubin，IBIL）、直接胆红素（direct bilirubin，DBIL）水平，以分析黄疸的严重程度。

1.3 观察指标 （1）比较两组TORCH-IgM抗体及TORCH-IgG抗体阳性表达率。（2）比较两组血清TBIL、IBIL、DBIL水平。（3）比较黄疸组TORCH-IgG抗体不同表达水平者血清TBIL、IBIL、DBIL水平。（4）分析TORCH-IgM抗体及TORCH-IgG抗体阳性表达与病理性黄疸发生的相关性。（5）分析TORCH-IgG抗体表达与血清胆红素水平的相关性。

1.4 统计学处理 采用SPSS 17.0软件对所得数据进行统计分析，计量资料用（x±s）表示，比较采用t检验;计数资料以率（%）表示，比较采用字2检验。采用Pearson检验分析指标间相关性;采用Spearman检验分析指标与疾病发病的相关性。以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 两组一般资料比较 黄疸组男40例，女20例;日龄1～30 d，平均（18.48±6.41）d。健康组男42例，女18例;日龄1～30 d，平均（19.35±6.56）d。两组性别、日龄资料比较，差异均无统计学意义（P>0.05），具有可比性。

2.2 两组TORCH-IgM抗体及TORCH-IgG抗体阳性表达情况比较 黄疸组TOX-IgG、RV-IgG、CMV-IgG抗体阳性表达率均高于健康组，差异均有统计学意义（P<0.05）;两组TORCH-IgM抗体阳性表达率及HSV-IgG抗体阳性表达比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表1。

2.3 两组血清TBIL、IBIL、DBIL水平比较 黄疸组血清TBIL、IBIL、DBIL水平均高于健康组，差异均有统计学意义（P<0.05），见表2。

2.4 黄疸组TORCH-IgG抗体不同表达水平者血清胆红素水平比较 TORCH-IgG抗体阳性表达组血清TBIL、IBIL均高于阴性组，差异均有统计学意义（P<0.05），两组DBIL水平比较，差异无统计学意义（P>0.05）。见表3。

2.5 TORCH-IgM抗体及TORCH-IgG抗体阳性表达与病理性黄疸发生的相关性分析 TORCH-IgM抗体阳性表达与病理性黄疸发生无相关性（r=-0.092，P=0.319）;TORCH-IgG抗体阳性表达与病理性黄疸发生呈正相关（r=0.883，P=0.000）。

2.6 TORCH-IgG抗体表达与血清胆红素水平的相关性分析 TORCH-IgG抗体表达与TBIL、IBIL、DBIL水平均呈正相关（r=0.762、0.709、0.157，P=0.000、0.000、0.000）。

3 讨论

新生儿TORCH感染可导致多器官损害，甚至出现一系列严重后遗症，危及新生儿生命[4-5]。有研究指出，TORCH感染在新生儿黄疸中发病率较高，这提示TORCH感染可能是导致新生儿发生黄疸的因素[6-8]。TORCH感染时，可对肝脏细胞造成损害，抑制其对胆红素的摄取，另一方面，TORCH感染可影响胆红素的排泄，从而导致新生儿出现黄疸。本研究中，黄疸组TOX-IgG、RV-IgG、CMV-IgG抗体阳性表达率均高于健康组，差异均有统计学意义（P<0.05），说明黄疸患儿TOX-IgG、RV-IgG、CMV-IgG抗体阳性表达率高于正常新生儿。文献[9-10]指出，黄疸患儿TORCH-IgG抗体阳性表达率高于正常水平，与本研究结果相同。经Spearman检验分析得，TORCH-IgG抗体阳性表达与发生病理性黄疸呈正相关（P<0.05），这表示TORCH-IgG抗体表达与黄疸的发生过程有关，这可能是因为TORCH感染，会抑制小胆管细胞形成，使集合胆红素的排泄受阻，造成机体胆红素及胆汁堆积，从而导致新生儿出现黄疸。

目前，临床上常采用TBIL、IBIL、DBIL值评价患者黄疸程度，胆红素是衰老红细胞被破坏后产生的血红蛋白衍化而成，DBIL是指在肝脏内葡萄糖醛酸化的胆红素，IBIL是指未经肝脏葡萄糖醛酸化的胆红素，二者的和就是TBIL[11-12]。有研究指出，黄疸患儿病情越严重，其血清TBIL、IBIL、DBIL水平越高[13-15]。本研究发现，黄疸组血清TBIL、IBIL、DBIL水平均高于健康组，差异均有统计学意义（P<0.05），说明黄疸患儿血清胆红素水平高于正常个体。TORCH感染会抑制葡萄糖醛酸转移酶活性，促进胆红素分泌，抑制胆红素代谢，使机体胆红素含量升高，加重新生儿黄疸严重程度，延迟黄疸消退时间。本研究发现TORCH-IgG抗体阳性表达组血清TBIL、IBIL高于阴性组，差异均有统计学意义（P<0.05），说明TORCH特异性抗体表达情况与黄疸严重程度有关。TORCH感染会导致肝脏代谢紊乱，抑制胆红素转化为胆汁，从而使血清胆红素含量升高。经Pearson检验分析，TORCH-IgG抗体表达与TBIL、IBIL、DBIL水平均呈正相关（P<0.05），说明黄疸患儿病情越严重，其血清TBIL、IBIL、DBIL水平越高，这表示可通过检测TORCH-IgG抗体表达情况，来预测患儿黄疸严重程度。且有研究指出，黄疸患儿体内胆红素水平与TORCH感染有關[16-18]。

综上所述，黄疸新生儿TORCH-IgG抗体阳性表达率高于健康新生儿，其TORCH-IgG特异性抗体表达与黄疸的发生过程及胆红素水平相关。因此，可通过对黄疸新生儿进行血清TORCH-IgG特异性抗体检测，来判断黄疸严重程度，为临床对黄疸的早期治疗提供依据。

参考文献

[1]代光华.血清TORCH特异性抗体检测在新生儿黄疸病情评估中的价值[J].海南医学院学报，2016，22（11）：1119-1121，1125.

[2]《中华儿科杂志》编辑委员会，中华医学会儿科学分会新生儿学组.新生儿黄疸诊疗原则的专家共识[J].中华儿科杂志，2010，48（9）：685-686.

[3]郑颖，张宁.新生儿高胆红素血症血清TORCH特异性抗体检测的意义[J].中国卫生检验杂志，2015，25（7）：1011-1012.

[4] Shen Z，Zheng S，Dong R，et al.Objectification of facial color inspection to differentiate obstructive/nonobstructive jaundice in neonates by spectrophotometer[J].J Pediatr Surg，2017，52（12）：1981-1983.

[5] Bollu B K，Dawrant M J，Thacker K，et al.Inspissated bile syndrome; safe and effective minimally invasive treatment with percutaneous cholecystostomy in neonates and infants[J].J Pediatr Surg，2016，51（12）：2119-2122.

[6] Chaudhari H，Goyal S，Patil C.Neonates with sickle cell disease are vulnerable to blue light phototherapy-induced oxidative stress and proinflammatory cytokine elevations[J].Med Hypotheses，2016，96：78-82.

[7] Dhaunsi G S，Al-Essa M.Downregulation of Insulin-Like Growth Factor-1 via Nitric Oxide Production in a Hypergalactosemic Model of Neonate Skin Fibroblast Cultures[J].Neonatology，2016，110（3）：225-30.

[8] Barjaktarovic M，Steegers E A P，Jaddoe V W V，et al.The association of thyroid function with maternal and neonatal homocysteine concentrations.[J].J Clin Endocrinol Metab，2017，102（12）：4548-4556.

[9]崔京涛，马良坤，倪安平，等.2008至2015年育龄妇女及新生儿TORCH血清学筛查及临床意义分析[J].中华检验医学杂志，2016，39（4）：281-285.

[10]孙立平，王助衡，底建辉，等.足月显性黄疸新生儿TcB与血清TSB测定的比较[J].中国妇幼健康研究，2016，27（7）：789-791，795.

[11] Kong X，Kong Y，Zhang F，et al.Evaluating the effectiveness and safety of ursodeoxycholic acid in treatment of intrahepatic cholestasis of pregnancy[J].Medicine（Baltimore），2016，95（40）：e4949.

[12]崔法新，王青霞，胥彬，等.病理性黄疸新生儿血清巨细胞病毒DNA检测结果及治疗策略[J].中华实用儿科临床杂志，2016，31（14）：1105-1106.

[13]宋晓妍，孟祥颖，杜红梅，等.患儿TORCH-IgM检测结果分析[J].中华医院感染学杂志，2016，26（6）：1385-1386，1389.

[14]刘俊，杨柳，何杨，等.重庆地区妊娠妇女TORCH感染的调查研究[J].中华医院感染学杂志，2015，25（22）：5250-5252.

[15]张丽，张庆欣，芦莉，等.超声联合试验室检查对宫内胎儿TORCH感染的诊断价值研究[J].中华医院感染学杂志，2017，27（21）：4986-4988.

[16]徐翠香，靳占奎，张丽洁，等.优生优育检查中TORCH抗体检测的临床意义[J].检验医学与临床，2019，16（12）：1650-1652.

[17]张雷.酶联免疫吸附试验法在孕前TORCH3项病原体感染检测中的效果及意义[J].河北医药，2016，38（11）：1685-1687.

[18]王文博.TORCH检测在孕前优生健康检查中的临床应用及意义[J].中外医学研究，2019，17（31）：55-56.

（收稿日期：2019-11-08） （本文编辑：姬思雨）