APP下载

磷脂酰肌醇-3磷酸激酶/AKT/雷帕霉素靶蛋白信号通路参与中枢神经损伤保护与修复的研究进展

2018-12-31匡巍余昌胤

安徽医药 2018年2期
关键词:亚基磷脂神经细胞

匡巍,余昌胤

(遵义医学院附属医院神经内科,贵州遵义 563003)

不同原因造成的中枢神经系统损伤都可表现为突触连接中断甚至神经细胞死亡。与周围神经不同,成年哺乳动物中枢神经对缺血、缺氧等损伤刺激耐受差,当损伤后其再生能力弱[1]。目前对神经损伤后神经功能恢复仍无有效治疗方法,这给患者身心、家庭及社会带来巨大的压力,因而如何促进神经再生成为国内外研究的热点及难点。目前研究发现激活PI3K/AKT/mTOR信号通路不仅减少神经损伤,促进突触重塑,还可诱导神经分化,这些作用均有助于对神经疾病治疗。

1 磷脂酰肌醇-3磷酸激酶/AKT/雷帕霉素靶蛋白(PI3K/AKT/mTOR)信号通路关键信号分子

1.1 PI3K 为原癌基因编码,是细胞内信号传导相关酶。根据一级结构、调控机制和底物特异性不同可将PI3K分为3种亚型,其都具有磷酸化磷脂酰肌醇第3位羟基的能力[2]。

(1)PI3KⅠ型:由催化亚基和调节亚基组成的异二聚体,直接参与细胞表面受体的激活,通过其基因序列又分为ⅠA和ⅠB两个亚型。PI3KⅠA型由催化亚基 p110和调节亚基 p85组成,可以被RTKs、GPCRs及某些原癌基因如Ras激活。在哺乳动物体内,PIK3R1,PIK3R2和PIK3R3基因编码表达 p85α、p55α、p50α、p85β和 p55γ调节亚基,其中前三种调节亚基由PIK3R1通过不同剪切产生,这五种调节亚基统称为p85。调节亚基p85含有SH2结构域,可与含有相应结合位点的靶蛋白相作用,如SH2能与胞外激活的生长因子受体上磷酸化的酪氨酸残基结合或与Ras结合 ,促使p85及p110产生构象变化从而活化P110。活化后的催化亚基p110能催化4,5-二磷酸磷脂酰肌醇磷酸化为3,4,5-三磷酸磷脂酰肌醇。PI3KⅠB型由催化亚基p110γ和调节亚基p101组成,可以被G蛋白偶联受体激活,调节亚基p101通过与G蛋白Gβγ亚基结合活化催化亚基p110γ。

(2)PI3KⅡ型:由单一催化亚基构成,分为PI3KC2α,PI3KC2β和 PI3KC2γ三种亚型,可通过酪氨酸激酶受体、细胞因子受体和整合素激活,催化磷脂酰肌醇、4-磷脂酰肌醇磷酸化为3-磷脂酰肌醇、3,4-磷脂酰肌醇。目前对PI3KⅡ型的功能调控及生理作用尚未研究清楚。

(3)PI3KⅢ型:其结构与Ⅰ型相似,由催化亚基Vps34和调节亚基Vps15/p150组成,只能将磷脂酰肌醇磷酸化为3-磷脂酰肌醇。Vps34在所有真核生物中表达保守,是膜信号转运重要调节蛋白,其活性受到糖、氨基酸等营养物质及G蛋白偶联受体调节,并可通过激活mTOR1促进细胞合成,显示其具有潜在的生长调节功能。此外,PI3KⅢ也参与细胞自噬调控[3]。

1.2 AKT 又名蛋白激酶B(PKB),因其能磷酸化丝氨酸/苏氨酸(Ser/Thr),被称为丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶。AKT有3种结构相似的亚型:AKT1,AKT2和 AKT3,分别由 PKBα、PKBβ、PKBγ基因编码,广泛存在于各种组织。三种亚型均在氨基末端含有一个PH结构域,一个中央丝氨酸/苏氨酸催化域和一个碳末端调节域,当3-磷脂酰肌醇与AKT氨基末端的PH结构域结合促使AKT构象变化,从胞质转移到胞膜上,在3-磷脂酰肌醇依赖激酶1(PDK1)的协同作用下,在Thr308位点磷酸化AKT。AKT S473位点则主要通过PDK2、整合素链激酶(ILK)、雷帕霉素复合物2(mTORC2)和 DNA依赖性蛋白激酶(DNA-dependent protein kinase,DNA-PK)磷酸化,也可受到Thr308磷酸化后的AKT自磷酸化影响[4]。AKT不同位点磷酸化使其对底物选择及活性上产生差异,从而产生复杂的调控方式[5],然而目前尚不明确AKT在不同位点磷酸化产生的生理功能调控作用差异。

1.3 mTOR 是PI3K相关激酶家族成员及PI3K/AKT信号通路的下游分子,属于不典型的丝氨酸/酪氨酸蛋白激酶。mTOR通过与其结合亚基不同分为 mTORC1和 mTORC2。mTORC1由mTOR、Deptor、MLST8、PRAS40、Raptor组成,受胰岛素、生长因子、磷脂酸、氨基酸及其衍生物、机械刺激和氧化应激的调控,调节细胞能量代谢及蛋白合成。mTORC2由 mTOR、Deptor、MSIN1、GβL、RtctorTTI1和TEL2组成。目前对mTORC2信号知之甚少,mTORC2通过尚不确定的机制可对生长因子刺激产生反应,其过程同样需要PI3K参与。mTORC2控制AGC亚家族成员的几种激酶,如血清和糖皮质激素诱导的蛋白激酶(SGK1)和蛋白激酶C-α(PKC-α),并在S473位点磷酸化AKT使其完全激活[6]。

1.4 PTEN 作为PI3K天然抑制剂,参与PI3K通路负调节,在体内细胞中广泛表达,参与细胞周期的调控,防止细胞生长和分裂过快。其主要包括一个磷酸酶结构域和C2结构域。磷酸酶域为其活性部位,而 C2结构域促使其与磷脂膜结合,因而PTEN通过其磷酸酶结构域和C2结构域与磷脂膜结合,将与膜结合的PIP3脱去磷酸,从而抑制AKT激活[7]。

2 PI3K/AKT/mTOR信号通路保护损伤的神经细胞

PI3K/AKT/mTOR信号通路是调节细胞周期的重要通路,该通路可促进细胞增殖、生长,维持细胞存活。研究发现在诱导中枢神经神经损伤时通过激活PI3K/AKT/mTOR信号通路可减轻对神经细胞的损伤作用,减少细胞死亡,而抑制该通路后可导致神经损伤加重,这种保护作用主要通过阻止细胞凋亡及抑制自噬产生。

凋亡是细胞主动死亡的过程,多种损伤刺激包括缺血缺氧、药物、代谢废物堆积、持续癫痫发作等均导致中枢神经细胞凋亡。研究发现激活AKT后可通过多种途径抑制神经细胞凋亡:P-AKT可将Bad磷酸化,从而抑制Bad游离及向线粒体转移,游离态的Bad可与Bax从Bcl-X中置换,Bax游离后形成二聚体移位到线粒体膜上使细胞色素氧化酶C从线粒体中释放,激活caspase级联反应,导致细胞凋亡;P-AKT可直接磷酸化caspase 9抑制其活性,阻止细胞凋亡[8];当转录因子FOXOs转移至细胞核中,可促进凋亡因子转录,诱导细胞凋亡,而P-AKT可通过磷酸化FOXOs使其固定在细胞质中,抑制细胞凋亡[9];p-AKT还参与 CREB激活,活化后的CREB可促进一些细胞因子如BDNF转录表达,BDNF通过PI3K通路作用,加强对受损神经保护[10];神经细胞受到伤害刺激后可快速激活NF-κB,NF-κB可促进抗细胞凋亡蛋白IAP1/2合成,p-AKT则可通过激活IκB激酶促进NF-κB向核内转移启动IAP1/2基因转录及蛋白合成,抑制细胞凋亡[11]。

自噬是细胞自我消化的过程,其对维持细胞存活的作用具有双重性,在正常生理环境中细胞通过自噬作用清除胞内有害物质以及促进细胞器更新,但在病理环境中细胞自身代谢障碍、营养缺乏,在损伤早期可通过有限的自噬作用回收一些大分子蛋白以应对环境压力,促进细胞存活,然而过度的自噬作用将导致维持细胞基本活动的蛋白、细胞器等被消化,细胞则会死亡。自噬可通过多种途径调控,其中AMPK及mTOR1信号通路占主导作用。mTOR1激活可抑制自噬,AMPK激活促进自噬[12]。自噬在中枢神经损伤中的作用同样具有双重性:一方面,在大部分中枢神经损伤过程中,损伤刺激往往产生严重或快速的自噬反应,导致神经细胞死亡,当激活 mTORC1可减少神经细胞自噬死亡[13-14];另一方面在阿茨海默病发生发展过程中自噬作用是有利的,阿茨海默病发生是由于Aβ蛋白堆积导致神经元死亡,Aβ蛋白可通过自噬作用清除,减少毒性物质积累,因此可通过抑制mTORC1加强细胞的自噬作用,延缓阿茨海默病的发展[15]。

3 PI3K/AKT/mTOR信号通路保护血脑屏障

血脑屏障(BBB)是在中枢神经系统中将血液与脑细胞外液分割的高选择性半透膜屏障,脑血管内皮细胞间形成的紧密连接是决定BBB渗透性的重要因素。BBB功能及结构完整性维持了神经正常功能活动。脑卒中、创伤及某些系统性疾病往往造成 BBB破坏,造成神经炎症反应,加重神经损伤[16]。

通过激活PI3K/AKT可缓解BBB破坏。Wang等[17]发现碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)通过PI3K/AKT途径激活Rac1抑制RhoA,上调p120-连环蛋白、β-连环蛋白表达,促进紧密连接蛋白合成,保护BBB。Li等[18]发现粒细胞刺激因子(G-CSF)可通过PI3K/AKT途径抑制糖原合酶激酶3β(GSK-3β),GSK-3β抑制后一方面通过减少血管细胞粘附分子(VCAM)和细胞间粘附分子(ICAM)表达,减轻免疫细胞对毛细血管渗透作用,减轻神经炎症反应,另一方面GSK-3β抑制后也可促进紧密连接蛋白合成,维持BBB稳定。

4 PI3K/AKT/mTOR信号通路可促进损伤后突触修复

中枢神经细胞间通过复杂的突触连接进行信号传递与信息处理,然而各种神经损伤往往造成髓鞘脱失,突触连接中断,这导致了神经功能缺损。

研究发现通过激活 PI3K/AKT/mTOR信号通路,可促进神经突触再生。Park等[19]最先报道了该通路对中枢神经轴突再生作用,他通过对敲除抑癌因子 Rb、P53、Smad4、Dicer、LKB1和 PTEN基因的小鼠视神经(RGCs)进行物理损伤,发现当敲除PTEN基因的小鼠RGCs在损伤2周后再生的神经轴突明显延长,在损伤后第4周再生的轴突已延伸到视交叉区,而其他组无此变化。当敲除PTEN后发现PI3K及其下游分子激活增强,促进了轴突的再生。Miao等[20]也通过对视神经Raptor敲除后发现受mTORC1调控的4E-BP和S6K磷酸化减少,轴突的再生能力减弱,这说明mTORC1可通过磷酸化4E-BP和S6K促进轴突相关结构蛋白合成。当抑制mTORC1上游AKT的激活后,轴突再生的抑制作用比抑制 mTORC1还强,因为 AKT除了激活mTORC1,其还可通过磷酸化作用失活GSK3β,从而减弱 GSK3β对突触再生的抑制作用。目前对mTORC2在神经再生中的作用尚不明确,有研究认为mTORC2可在S473位点磷酸化AKT增强其激活mTOR1的能力,从而促进神经再生,然而也有研究认为S473位点磷酸化的AKT对GSK3β磷酸化作用下降,从而抑制神经再生。

神经髓鞘可以促进神经冲动传递,减少相邻突触间干扰,并营养神经细胞。髓鞘损伤后可导致神经冲动传导异常甚至导致神经细胞死亡,因此神经髓鞘修复对神经纤维再生的意义同样重要。研究发现PI3K/AKT/mTOR信号通路除了促进神经突触再生,在神经髓鞘的形成中也起着重要作用。Zou等[21]发现当抑制mTORC1后,髓鞘前体细胞分化减少,髓鞘无法正常形成。Goebbels等[22]通过激活PI3K/AKT/mTOR通路后发现在无髓鞘的小脑浦肯野细胞平行纤维上形成了髓鞘结构。

5 PI3K/AKT/mTOR信号通路调控神经干细胞分化、生长

以前认为神经细胞作为一种永久性细胞,在神经损伤后往往无法恢复,然而目前发现在脑室周围及海马区域还存在部分神经干细胞。虽然这些细胞仍具有向神经分化能力,但在一般情况系这些细胞也很难向病灶处迁移,分化替代死亡的神经细胞。通过激活PI3K/AKT/mTOR信号通路可促进神经干细胞分化及神经细胞成熟。

研究发现 PI3K/AKT/mTOR信号通路激活可促使并调控神经干细胞分化,尤其在中枢神经发育早期PI3K/AKT/mTOR信号通路就处于较强的激活状态。Fishwick等[23]发现鸡胚神经管部位的AKT及 mTOR信号活跃,当给予小分子抑制剂LY294002(PI3K抑制剂)或雷帕霉素(mTOR抑制剂)后,这些区域分化的神经细胞会减少。此外,在雷帕霉素的作用下,一些表达早期神经元标记的细胞出现在异常的部位。离体实验同样证明PI3K/AKT/mTOR信号通路可调控神经分化。Lee等[24]发现通过持续激活PI3K/AKT/mTOR信号通路可促进神经干细胞(NSCs)向多巴胺能神经分化,而其分化率与mTORC1激活程度呈正相关。Ojeda等[25]发现适度抑制激活的PI3K可增加诱导的NSCs的运动神经元转录因子HB9表达,促进NSCs向运动神经元分化,但过度抑制PI3K则抑制了细胞分化。这些发现表明,PI3K/AKT/mTOR信号是启动神经元分化的必要条件,并具有调控神经分化的作用。

PI3K/AKT/mTOR信号通路调控分化后神经细胞成熟和突触生长。Cloetta等[26]发现mTORC1主要调空分化后神经元大小和细胞数量,当敲除胎鼠脑部神经祖细胞的 Raptor基因,选择性抑制mTORC1表达,小鼠出现了严重的小颅畸形,脑内神经元减少,相对胶质细胞增多了。mTORC2则在神经发育过程中影响着神经元的大小、形态及神经元功能,当敲除胎鼠神经祖细胞的rictor基因后,也表现出小颅畸形,鼠脑内神经元体积减小,细胞形态及突触结构异常[27]。

PI3K/AKT/mTOR信号通路在神经发育过程中起着重要作用,但随着中枢神经发育逐渐成熟,该通路作用被逐渐抑制,这可能是造成潜在的神经干细胞处于休眠状态的原因,因此可通过再激活PI3K/AKT/mTOR信号通路促进神经干细胞分化替代缺失神经元来治疗神经系统疾病。

6 激活中枢神经PI3K/AKT/mTOR信号通路可能的风险

激活 PI3K/AKT/mTOR信号通路对损伤后中枢神经保护及神经再生有利,然而该通路是一把双刃剑,可能带来治疗风险。一方面,在神经发育阶段PI3K/AKT/mTOR信号通路过度激活会导致如巨脑症、局灶性皮质发育不良、结节性硬化症(TSC)等疾病,出现难治性癫痫和智能减退等神经症状[28]。在神经修复过程中,该通路特别是mTOR的激活在促进神经突触重塑的同时,可能导致癫痫发生[29]。另一方面,在神经 PI3K/AKT/mTOR信号通路作为细胞主要促活途径在神经肿瘤发生中也起着重要作用,研究发现多种神经肿瘤由于PTEN突变导致PI3K激活造成[30]。

7 小结与展望

随着中枢神经疾病治疗技术及检查手段日益成熟,中枢神经系统疾病治疗效果得也到部分提高,然而目前治疗技术对神经功能缺损仍无法完全恢复。PI3K/AKT/mTOR信号通路被抑制是造成神经损伤修复困难的重要原因,一方面在中枢神经神经发育过程中为避免神经过度生长及突触错误连接,随着神经成熟PTEN表达逐渐增多,另一方面当中枢神经神经损伤后细胞代谢障碍也可进一步抑制该信号通路[31]。因此,在中枢神经损伤过程中通过激活PI3K/AKT/mTOR信号通路可减少神经细胞死亡,促进突触再生甚至通过潜在干细胞分化替代死亡的神经元,让神经功能缺损恢复成为可能。然而在激活PI3K/AKT/mTOR通路治疗过程中仍需考虑诱导癫痫、肿瘤等风险。目前发现许多药物及细胞因子可通过PI3K/AKT/mTOR信号通路保护治疗神经疾病,但该信号通路在神经中枢的调控作用及机制仍不明确。因此,更准确的了解PI3K/AKT/mTOR信号通路在生理、病理环境中如何调控中枢神经细胞功能活动,将有助于我们有目的地利用该通路相关分子作为靶点对神经疾病进行安全、有效的治疗。

[1] EGAWA N,LOK J,WASHIDA K,et al.Mechanisms of axonal damage and repair after central nervous system injury[J].Translational Stroke Research,2016,8(1):1-8.

[2] VANHAESEBROECK B,GUILLERMET-GUIBERT J,GRAUPERA M,et al.The emerging mechanisms of isoform-specific PI3K signalling[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2010,11(5):329-341.

[3] PASQUIER B.SAR405,a PIK3C3/Vps34 inhibitor that prevents autophagy and synergizes with MTOR inhibition in tumor cells[J].Autophagy,2015,11(4):725.

[4] MANNING BD,TOKER A.AKT/PKB Signaling:Navigating the Network[J].Cell,2017,169(3):381-405.

[5] RISSO G,BLAUSTEIN M,POZZI B,et al.Akt/PKB:one kinase,many modifications[J].The Biochemical Journal,2015,468(2):203-214.

[6] BETZ C,HALL MN.Where is mTOR and what is it doing there?[J].The Journal of Cell Biology,2013,203(4):563-574.

[7] MICHELE M,ITALIA F,FABIANA C,et al.PTEN:multiple functions in human malignant tumors[J].Frontiers in Oncology,2015,5:24.

[8] FU Z,YANG J,WEI Y,et al.Effects of piceatannol and pterostilbene againstβ-amyloid-induced apoptosis on the PI3K/Akt/Bad signaling pathway in PC12 cells[J].Food&Function,2016,7(2):1014.

[9] ZHANGX,TANGN,HADDEN TJ,et al.Akt,FoxOand regulation of apoptosis[J].Biochimicaet biophysica acta,2011,1813(11):1978-1986.

[10]ZUO D,LIN L,LIU Y,et al.Baicalin Attenuates Ketamine-Induced Neurotoxicity in the Developing Rats:Involvement of PI3K/Akt and CREB/BDNF/Bcl-2 Pathways[J].Neurotoxicity Research,2016,30(2):159.

[11]MO MS,LI HB,WANG BY,et al.PI3K/Akt and NF-kappaB activation following intravitreal administration of 17beta-estradiol:neuroprotection of the rat retina from light-induced apoptosis[J].Neuroscience,2013,228(1):1-12.

[12]RUSSELL R C,YUAN H X,GUAN K L.Autophagy regulation by nutrient signaling[J].Cell Research,2014,24(1):42-57.

[13] LEE J,TECEDOR L,CHEN Y H,et al.Reinstating aberrant mTORC1 activity in Huntington′s dsease mice improves disease phenotypes[J].Neuron,2015,85(2):303.

[14]GAO L,JIANG T,GUOJ,et al.Inhibition of autophagy contributes to ischemic postconditioning-induced neuroprotection against focal cerebral ischemia in rats[J].PloSone,2012,7(9):e46092.

[15]SHAFEIMA,HARRISM,CONWAY ME.Divergent metabolic regulation of autophagy and mTORC1-Early events in Alzheimer′s disease?[J].Frontiers in Aging Neuroscience,2017,9:173.

[16]FRIEDMAN A,KAUFER D.Blood-brain barrier in health and disease[J].Seminars in Cell& Developmental Biology,2015,38(Supplement s6):1-3.

[17]WANGZG,CHENGY,YUXC,et al.bFGF Protects against bloodbrain barrier damage through junction protein regulation via PI3KAkt-Rac1 Pathway Following Traumatic Brain Injury[J].Molecular Neurobiology,2015,53(10):1-14.

[18]LI LI,DEVIN WMC,DESISLAVA D,et al.G-CSFattenuates neuroinflammation and stabilizesthe blood-brain barrier via the PI3K/Akt/GSK-3βsignaling pathway following neonatal hypoxia-ischemia in rats[J].Experimental Neurology,2015,272:135-144.

[19]PARK KK,LIU K,HU Y,et al.Promoting axon regeneration in the adult CNS by modulation of the PTEN/mTOR pathway[J].Science,2008,322(5903):963-966.

[20] MIAO L,YANG L,HUANG H,et al.mTORC1 is necessary but mTORC2 and GSK3beta are inhibitory for AKT3-induced axon regeneration in the central nervous system[J].eLife,2016,5:e14908.

[21]ZOU J,ZHOU L,DU XX,et al.Rheb1 is required for mTORC1 and myelination in postnatal brain development[J].Developmental cell,2011,20(1):97-108.

[22]GOEBBELSS,WIESER GL,PIEPERA,et al.A neuronal PI(3,4,5)P3-dependent program of oligodendrocyte precursor recruitment and myelination[J].Nature Neuroscience,2017,20(1):10-15.

[23]FISHWICK KJ,LIRA,HALLEY P,et al.Initiation of neuronal differentiation requires PI3-kinase/TOR signalling in the vertebrate neural tube[J].Developmental Biology,2010,338(2):215-225.

[24]LEE JE,LIM MS,PARK JH,et al.S6K Promotes dopaminergic neuronal differentiation through PI3K/Akt/mTOR-Dependent signaling pathways in human neural stem cells[J].Molecular Neurobiology,2016,53(6):3771-3782.

[25]OJEDA L,GAO J,HOOTEN KG,et al.Critical role of PI3K/Akt/GSK3beta in motoneuron specification from human neural stem cells in response to FGF2 and EGF[J].PloS One,2011,6(8):e23414.

[26]CLOETTA D,THOMANETZ V,BARANEK C,et al.Inactivation of mTORC1 in the developing brain causes microcephaly and affects gliogenesis[J].The Journal of Neuroscience,2013,33(18):7799-7810.

[27]THOMANETZV,ANGLIKERN,CLOETTA D,et al.Ablation of the mTORC2 component rictor in brain or Purkinje cells affects size and neuron morphology[J].The Journal of Cell Biology,2013,201(2):293-308.

[28]CRINO PB.Evolving neurobiology of tuberous sclerosis complex[J].Acta Neuropathologica,2013,125(3):317-332.

[29]CITRARO R,LEO A,CONSTANTI A,et al.mTOR pathway inhibition as a new therapeutic strategy in epilepsy and epileptogenesis[J].Pharmacological Research,2016,107:333-343.

[30]GOSCHZIK T,GESSI M,DENKHAUS D,et al.PTEN mutations and activation of the PI3K/Akt/mTORsignaling pathway in papillary tumors of the pineal region[J].Journal of Neuropathology&Experimental Neurology,2014,73(8):747-751.

[31]BERRY M,AHMED Z,MORGANWARREN P,et al.Prospects for mTOR-mediated functional repair after central nervous system trauma[J].Neurobiology of Disease,2016,85(16):99.

猜你喜欢

亚基磷脂神经细胞
97份安徽省种植小麦品种HMW-GS组成及品质分析
母乳磷脂与婴幼儿配方乳粉开发研究进展
胃癌中主要SWI/SNF复合物亚基突变/缺失与临床预后及肿瘤免疫反应的关系
磷脂结构、膳食来源及营养学研究进展
哺乳动物视网膜中发现新神经细胞
沉默RND3表达对氧糖缺失/复氧复糖损伤海马神经细胞炎症反应和细胞凋亡的影响
为什么大脑能记住事情?
磷脂酰乙醇胺的制备及应用研究进展
右美托咪定抑制大鼠创伤性脑损伤后神经细胞凋亡
心脏钠通道β2亚基转运和功能分析