覃剑，黄冬梅

（1.柳州市工人医院重症医学科，广西 柳州 545003；2.柳州城市职业学院，广西 柳州 545002）

1 研究资料和方法

1.1 纳入和剔除标准

所有患者均符合2012年严重脓毒症与脓毒性休克治疗指南中的脓毒症诊断标准[1]，纳入标准：符合2012年修订的严重脓毒症和脓毒症休克管理指南中脓毒症的诊断定义。脓毒症：根据1992年及2001年华盛顿会议定义，脓毒症即感染引起的SIRS。全身炎症反应综合征（SIRS）：指任何致病因素作用于机体所引起的全身炎症反应，具备以下两项或两项以上体征：①体温＞38℃或＜36℃；②心率＞90次/min；③呼吸频率＞20次/min或PaCO2＜32mmHg；④外周血白细胞计数＞12×109/L或＜4×109/L，或未成熟粒细胞＞10%。排除标准：病例存在以下情况之一：①ICU住院少于72h；②未做PCT检测的患者；③放弃治疗或自动出院患者；④其他资料不全者。

1.2 方法

1.2.1 一般资料

本研究对2016年6月至2018年6月广西柳州市工人医院重症医学科60例ICU患者送检各类病原学标本296份，采用床旁调查和住院病历调查相结合的方法进行，分别调查该院急诊ICU住院患者216人，选取诊断符合脓毒症和严重脓毒症的病人各20例，脓毒症休克的病人20例的临床资料。根据2012年严重脓毒症与脓毒性休克治疗指南[2-3]及临床相关表现将入选病例，分为脓毒症组20例，严重脓毒症组20例，脓毒症休克组20例，研究其感染部位及（血、尿、痰）微生物培养的结果。探讨脓毒症患者降钙素原与感染微生物的关系。

1.2.2 病原学诊断

病原学阳性培养标准是否为致病菌的判断标准则依据2001年国家卫生部颁布的《医院感染诊断标准》。

1.2.3 PCT测定方法

患者入院当天及住院3、7d抽取2mL静脉血送我院临床检验中心免疫室检测。选用法国生物梅里埃公司提供的全自动免疫分析仪VIDAS-12（mini-EIDAS）及配套试剂盒，运用夹心法+全自动荧光定量检测PCT。试剂盒推荐PCT阳性临界值为0.5μg/L，若PCT≥0.5μg/L（ng/mL），即判定为PCT阳性。运用盲法进行批次分析，进行20min的检测，如果无法及时检测，则将血清或血浆分离出来，在2～8℃的冰箱中放置保存备用，并在1d完成检测。

1.3 统计学处理

2 结果

2.1 感染部位分类

见图1。

图1 感染部位分类

2.2 病原体培养与血清PCT检测结果比较

血培养与血清PCT检测结果比较，送检PCT标本296份，PCT≥0.5ng/mL的有185份，阳性率为62.5%。296份PCT标本对应的病原菌培养结果阳性135例，阳性率45.6%（135/296），低于PCT检测阳性率。病原菌培养有无菌生长的PCT阳性率无显著性差异（P=0.066＞0.05，χ2=3.378）。血清PCT检测对病原体培养结果比较，PCT的敏感度为68.1%（92/135），特异度为42.2%（68/161），阳性预测值和阴性预测值分别为49.7%（92/185）和61.3%（68/111）。结果见表1。

表1 病原体培养与血清PCT检测结果比较（n）

3 讨论

在未及时应用抗生素不会给患者带来有临床意义的延误的前提下[4-5]，应尽可能在使用抗生素之前留取其他培养标本，包括尿液、脑脊液、伤口、呼吸道分泌物或可能为感染源的其他体液（1C）。PCT在内毒素等细胞因子诱导下，2～3h开始增加，LPS后2h血浆中可检测到，6～8h体内浓度快速升高，12～48h到达峰值，2～3d后恢复正常。随后有研究表明[6-7]，PCT是由细菌内毒素、TNF-α、IL-6等因素作用于肝、脾、肾、肺的神经内分泌细胞或特殊细胞而产生。动物实验证明，PCT可能是一种次级炎症因子，本身不直接参与启动脓毒血症反应，但可放大并加重脓毒血症病理过程[8-10]。