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肝癌组织中HBXIP和Caspase 9表达变化及临床意义

2018-03-19司超刘玮刘俊李霞斌姚辉华西南医科大学临床医学院四川泸州646000成都市第一人民医院西南医科大学附属医院

山东医药 2018年16期
关键词:肝细胞分化恶性

司超,刘玮,刘俊,李霞斌,姚辉华,(西南医科大学临床医学院,四川泸州646000;成都市第一人民医院;西南医科大学附属医院)

慢性HBV感染是我国肝细胞癌(简称肝癌)的主要致病原因,HBV DNA编码的X蛋白(HBX)与HBV感染致癌紧密相关[1,2]。乙肝病毒X蛋白结合蛋白(HBXIP)作为HBX蛋白的作用因子,通过与HBX和survivn形成复合物调节细胞凋亡,并在多种恶性肿瘤中表达显著增强,与肿瘤的发生发展和患者预后密切相关[3]。Caspase 9作为一种凋亡促进蛋白,位于Caspase级联反应的上游,是线粒体凋亡通路的关键因子。本研究观察了HBXIP与Caspase 9在肝癌组织中的表达,现分析结果并探讨二者在肝癌发生、发展过程中的作用。

1 资料与方法

1.1 临床资料 选取2014年12月~2017年4月西南医科大学附属医院收治的、行手术治疗的肝癌患者54例,男45例、女 9例,年龄36~73(48.67±9.32)岁;HBsAg阳性 49例,血清AFP≥400 μg/L 24例、<400 μg/L 30 例,伴肝硬化27例。肝功能Child-Pugh分级为A级47例、B级7例。术前均未接受放化疗等辅助治疗。术后病理证实为肝细胞癌,单个病灶43例、多个病灶11例,肿瘤直径≤5 cm 21例、>5 cm 33例,包膜完整34例、无包膜或包膜不完整 20例,转移14例,癌栓形成 19例,按照2010年国际抗癌联盟/美国癌症联合委员会(UICC/AJCC)第七次修订的TNM临床分期标准:Ⅰ~Ⅱ期34例,Ⅲ~Ⅳ期20例;高、中分化37例,低分化17 例。术中留取肝癌组织54例份(肝癌组)及手术切缘无肿瘤细胞浸润的癌旁正常组织29例份(癌旁组)。另选取同期因肝脏良性疾病行手术切除的正常肝组织15例份(对照组),患者男5例、女10例,年龄36~80(62.07±12.18)岁,肝囊肿14例、肝血管瘤1例。

1.2 肝组织HBXIP、Caspase 9蛋白表达检测 采用免疫组化Envision法。取三组标本,经中性甲醛固定,常规石蜡包埋,连续4 μm厚切片,采用EDTA修复液高温高压修复抗原,具体步骤按照试剂盒说明书进行。以预实验中HBXIP和Caspase 9阳性的肝癌切片作为阳性对照,以PBS液代替一抗作为阴性对照。HBXIP兔抗人单克隆抗体购自美国Cst公司,Caspase 9兔抗人单克隆抗体购自英国Abcan公司,EDTA修复液购自福州迈新生物技术开发有限公司。HBXIP和Caspase 9阳性染色主要定位于细胞质,以细胞呈黄色或棕黄色为阳性。由两位病理医师进行双盲阅片,根据染色强度与阳性细胞数进行半定量分析。染色强度:细胞无显色为0分,浅黄色为1分,棕黄色为2分,棕褐色为3分。阳性细胞数:≤5%为0分,>5%~25%为1分,>25%~50%为2分,>50%~75%为3分,>75%为4分。将染色强度与阳性细胞数的评分相加,总评分<2分为阴性、≥2分为阳性[4,5]。分析肝癌组织HBXIP与Caspase 9表达与患者临床病理参数的关系及二者的相关性。

1.3 统计学方法 采用SPSS17.0统计软件。计数资料比较采用χ2检验,相关性检验采用Spearman等级相关分析。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 三组HBXIP、Caspase 9表达比较 HBXIP阳性表达率:肝癌组、癌旁组与对照组分别为72.2%(39/54)、48.3%(14/29)、33.3%(5/10);肝癌组明显高于癌旁组及对照组(P均<0.05)。Caspase 9阳性表达率:肝癌组、癌旁组织与对照组分别为38.9%(21/54)、62.1%(18/29)、80.0%(12/15);肝癌组明显高于癌旁组及对照组(P均<0.05)。

2.2 肝癌组织HBXIP、Caspase 9表达与患者临床病理特征的关系 肝癌组织HBXIP表达与组织分化程度、癌栓形成、TNM分期有关(P均<0.05),Caspase 9表达与肿瘤转移和组织分化程度有关(P均<0.05)。见表1。

2.3 肝癌组织HBXIP与Caspase 9表达的关系 肝癌组织中HBXIP表达阳性39例,其中Caspase 9表达阳性11例;HBXIP表达阴性15例,其中Caspase 9表达表达阴性5例。Spearman等级相关性检验显示,肝癌组织HBXIP与Caspase 9表达呈负相关(r=- 0.353,P=0.009)。

3 讨论

HBXIP是从肝癌HepG2细胞中克隆得到的一种细胞组成蛋白,可与HBX蛋白羧基末端结合,负性调节HBX蛋白活性,从而改变HBV的复制周期[6]。HBXIP在哺乳动物的许多组织中广泛表达,尤其是在肌肉组织中显著高表达。HBXIP为一种多功能的调节蛋白,是多种转录因子的辅激活因子。其通过多种分子机制参与调控细胞的生物学行为:① 与HBX和survivin形成复合物抑制Caspase 9激活,阻断Caspase 9介导的细胞凋亡线粒体通路[3]。② 上调细胞中单纯LIM结构域蛋白4、分泌粒蛋白Ⅲ、Lin-28B、YES相关蛋白、钙结合蛋白S100A4等表达,促进细胞增殖[7~10]。③ 与HBX共同定位于中心体的微管上,调节中心体的复制和细胞分裂[11]。④ 抑制细胞色素C氧化酶和丙酮酸脱氢酶α1表达,进而抑制细胞的糖异生作用[12];也可通过激活LXRs/SREBP-1c/FAS信号级联,增加细胞内脂肪酸的合成[13]。近年来研究显示,HBXIP在乳腺癌、卵巢癌、膀胱癌、宫颈癌等多种恶性肿瘤中显著高表达,与肿瘤的生长、浸润转移、血管生成和患者预后密切相关[14,15]。在肝癌方面,孙纪三等[16]研究发现,在42例肝癌组织中HBXIP的阳性表达率为80.95%,明显高于正常肝组织。本研究结果与既往文献报道基本一致,在肝癌组织中HBXIP阳性表达率明显高于癌旁组织和正常肝组织,提示HBXIP表达异常可能在肝癌的演变过程中发挥重要作用,其可能成为肝癌临床诊断的标志物。本研究中,HBXIP在低分化肝癌中的阳性表达率明显高于高、中分化组织;TNM分期Ⅲ~Ⅳ期肝癌组织的阳性表达率明显高于Ⅰ~Ⅱ期组织;伴有癌栓形成者的阳性表达率明显高于无癌栓形成者。提示HBXIP表达增强与肿瘤的临床进展和恶性生物学行为相关,其表达变化可在一定程度上反映肿瘤的恶性程度。推测HBXIP表达升高可能调节某些基因的表达或修饰,从而抑制肝癌细胞凋亡,并促进其异常增殖、浸润转移和恶性分化。

注:肝癌组织HBXIP表达与组织分化程度、癌栓形成、TNM分期有关(P均<0.05),Caspase 9表达与肿瘤转移和组织分化程度有关(P均<0.05)。

Caspase 9是一种能够特异性识别底物中天冬氨酸位点的半胱氨酸蛋白酶,属于Caspase家族启动组成员。在细胞内Caspase 9通常以没有活性的酶原形式存在,当线粒体受到凋亡信号刺激后,细胞色素C被释放到细胞质中,并在ATP的参与下与Apaf1和pro-Caspase 9形成复合物,激活Caspase 9,活化的Caspase 9继续激活下游的凋亡效应因子Caspase 3、Caspase 7,从而介导细胞凋亡的发生。本研究结果显示,肝癌组织Caspase 9阳性表达率低于癌旁组织和正常肝组织,提示在肝癌的发生发展过程中Caspase 9的表达受到抑制,致使细胞凋亡受到抑制,凋亡与增殖之间的平衡被打破,从而增加了肝细胞恶性改变的机会,导致肝癌的形成。进一步的研究发现,Caspase 9在低分化肝癌组织中阳性表达率明显低于高、中分化组织,提示正常肝细胞在向癌细胞转化的过程中可能存在Caspase 9基因表达的筛选,Caspase 9表达阳性的肝细胞容易发生凋亡而失去表达,Caspase 9表达阴性的肝细胞发生凋亡的能力较弱而得以生存下来,发展成为癌细胞。同时本研究还发现,发生肿瘤转移者Caspase 9阳性表达率明显低于无肿瘤转移者,表明Caspase 9表达下调与肝癌细胞的恶性分化和浸润转移相关,其可能作为评估肝癌恶性生物学行为的分子标志物。

研究发现,在肝癌HepG2细胞中,HBXIP能够与HBX和survivin形成复合物,进而抑制Caspase 9激活[3]。但目前尚未见到关于HBXIP和Caspase 9在肝癌组织中相互作用关系的报道。本研究结果显示,HBXIP和Caspase 9在肝癌组织中的表达呈负相关,表明HBXIP和Caspase 9在肝癌的发生发展过程中起拮抗作用,进一步证实了在肝癌组织中HBXIP高表达可能对Caspase 9激活具有抑制作用,通过降低细胞中Caspase 9表达,可抑制细胞凋亡,促进细胞异常增殖、恶性分化和浸润转移。

综上所述,肝癌组织中HBXIP表达增加、Caspase 9表达降低,二者的表达变化可促进肝癌的发生、发展。

参考文献:

[1] Zhang XD, Wang Y, Ye LH. Hepatitis B virus X protein accelerates the development of hepatoma[J]. Cancer Biol Med, 2014,11(3):182-190.

[2] Geng M, Xin X, Bi LQ, et al. Molecular mechanism of hepatitis B virus X protein function in hepatocarcinogenesis[J]. World J Gastroenterol, 2015,21(38):10732-10738.

[3] Marusawa H, Matsuzawa S, Welsh K, et al. HBXIP functions as a cofactor of survivin in apoptosis suppression[J]. EMBO J, 2003,22(11):2729-2740.

[4] 李晓刚,刘双萍,孙抒.乙肝病毒X蛋白结合蛋白过表达对膀胱癌侵袭转移及预后预测价值[J].中华肿瘤防治杂志,2016,23(24):1607-1612.

[5] 郭晓东,李志伟,杨美,等.Caspase-9和Survivin在肝癌组织中的表达及意义[J].临床肝胆病杂志,2014,30(3):253-256.

[6] Melegari M, Scaglioni PP, Wands JR. Cloning and characterization of a novel hepatitis B virus x binding protein that inhibits viral replication[J]. J Virol, 1998,72(3):1737-1743.

[7] Yue L, Li L, Liu F, et al. The oncoprotein HBXIP activates transcriptional coregulatory protein LMO4 via Sp1 to promote proliferation of breast cancer cells[J]. Carcinogenesis, 2013,34(4):927-935.

[8] Liu Q, Bai X, Li H, et al. The oncoprotein HBXIP upregulates Lin28B via activating TF Ⅱ D to promote proliferation of breast cancer cells[J]. Int J Cancer, 2013,133(6):1310-1322.

[9] Wang Y, Cui M, Cai X, et al. The oncoprotein HBXIP up-regulates SCG3 through modulating E2F1 and miR-509-3p in hepatoma cells[J]. Cancer Lett, 2014,352(2):169-178.

[10] Wang Y, Fang R, Cui M, et al. The oncoprotein HBXIP up-regulates YAP through activation of transcription factor c-Myb to promote growth of liver cancer[J]. Cancer Lett, 2017(385):234-242.

[11] Fujii R, Zhu C, Wen Y, et al. HBXIP, cellular target of hepatitis B virus oncoprotein, is a regulator of centrosome dynamics and cytokinesis[J]. Cancer Res, 2006,66(18):9099-9107.

[12] Shi H, Fang R, Li Y, et al. The oncoprotein HBXIP suppresses gluconeogenesis through modulating PCK1 to enhance the growth of hepatoma cells[J]. Cancer Lett, 2016,382(2):147-156.

[13] Zhao Y, Li H, Zhang Y, et al. Oncoprotein HBXIP modulates abnormal lipid metabolism and growth of breast cancer cells by activating the LXRs/SREBP-1c/FAS signaling cascade[J]. Cancer Res, 2016,76(16):4696-707.

[14] Cheng D, Liang B, Li Y. HBXIP expression predicts patient prognosis in breast cancer[J]. Med Oncol, 2014,31(10):210.

[15] Li N, Wang Y, Che S, et al. HBXIP over expression as an independent biomarker for cervical cancer[J]. Exp Mol Pathol, 2017,102(1):133-137.

[16] 孙纪三,张建军,高伟,等.肝细胞癌组织HBXIP和GRIM-19表达及意义的探讨[J].天津医药,2015,43(12):1364-1367.

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