海参铜锌超氧化物歧化酶原核表达载体的构建、表达及活性鉴定
2018-03-02车明月,穆贤,李学一,张齐,丛丽娜,牛庆昌,李成
车 明 月, 穆 贤, 李 学 一, 张 齐, 丛 丽 娜, 牛 庆 昌, 李 成
( 大连工业大学 生物工程学院, 辽宁 大连 116034 )
0 引 言
自由基是机体正常代谢的产物,参与生物体的多种生化过程,如胞内信号转导、细胞生长、免疫、防御等[1-3]。过多的自由基可造成生物膜脂质过氧化损伤,DNA/RNA/氨基酸氧化交联,从而破坏其具有的结构或功能[7]。直接补充外源性抗氧化酶(SOD、CAT)能有效帮助机体清除过多的活性氧,减轻或阻止氧化损伤[8-10]。
海参能很好地抵御氧化胁迫型环境带来的氧化损伤,其超氧化物歧化酶(SOD1)是机体自身抗氧化损伤的重要组成部分[9-11]。研究海参种属SOD1具有很高的开发前景和应用价值;同时,作为辽宁省重要的海产养殖经济物种,研究开发海参SOD1,可以很好地提高其经济附加值。实验利用体外重组表达的Aj-SOD1,并检验其活性,以期为深入研究Aj-SOD1性质提供理论基础。
1 材料和方法
1.1 材 料
1.1.1 海参来源及处理
海参采购于大连新长兴海参市场。在实验室条件下,对海参进行饥饿处理3~5 d,清空肠组织。
1.1.2 菌种与试剂
大肠杆菌DH5α、BL21(DE3),本实验室保存。质粒提取试剂盒,北京天根生化科技有限公司;Protein markers,大连宝生物有限公司;Ni2+-NTA 亲和层析填料,GE healthcare公司;其他试剂均为国产分析纯。
1.2 方 法
1.2.1 提取海参肠组织总RNA
采用Trizol法提取海参肠组织的总RNA。1.5%的琼脂糖凝胶电泳验证RNA提取情况。
1.2.2 反转录cDNA第一链
参照反转录试剂盒使用说明,以海参肠组织总RNA为模板,反转录获得cDNA第一链。
以反转录产物为模板,采用Aj-β-actin 特异性引物:P1-AGTATTTCCTCTCTCTGGTGGAGCG和P2-TCATCACCATTGGCAACGAAAGGT扩增海参β-actin基因片段(278 bp),琼脂糖凝胶电泳验证后,检测反转录后的结果。……
