张毅宏，杨国莉，付　莹，张　钊，曹泽伟，张　俊，王天锡，郭　娜，高俊琴

（1.天津市北辰医院消化内科，天津　300400；2.天津市南开医院消化内科，天津　300100）

西药联合理气中药对糖尿病大鼠胃排空延迟的影响及其机制研究*

张毅宏1，杨国莉1，付莹1，张钊2，曹泽伟2，张俊1，王天锡2，郭娜2，高俊琴1

（1.天津市北辰医院消化内科，天津300400；2.天津市南开医院消化内科，天津300100）

［目的］探讨促胃肠动力西药联合理气中药对糖尿病大鼠胃排空延迟的影响及其机制。［方法］70只7周龄雄性SD大鼠随机分为两组：正常组（A组，n=10），模型组（n=60）。模型组大鼠首先通过腹腔内注射四氧嘧啶建立糖尿病模型，造模成功大鼠随机分为4组：对照组（B组，n=15）、理气中药治疗组（C组，n=15）、伊托必利治疗组（D组，n=14）、伊托必利联合理气中药治疗组（E组，n=14）。依照各组要求，每日予以相应药物灌胃，饲养24周后，全部大鼠行13C胃固体半排空实验，记录胃半排空时间，处死大鼠并取材，进行苏木-伊红（HE）和神经元型一氧化氮合酶（nNOS）免疫组化染色，观察胃壁病理改变。［结果］1）与A组大鼠相比，B组、C组、D组、E组大鼠胃固体半排空时间明显延长（P＜0.01）。2）C组、D组、E组大鼠胃排空时间较对B组明显减少（P＜0.05）；E组大鼠胃排空时间较D组及C组大鼠明显减少（P＜0.01）。3）HE染色结果表明，与A组大鼠相比，B组、C组、D组、E组大鼠胃环肌及纵肌变薄，肌间神经丛数量减少，免疫组化nNOS表达明显减少（P＜0.05）。4）D组大鼠肌间神经丛数目较B组明显增加（P＜0.05），而C组及E组大鼠肌间神经丛数目明显高于D组（P＜0.05），且E组大鼠nNOS阳性神经丛数明显高于D组（P＜0.05）。［结论］规律应用理气中药，可明显促进糖尿病大鼠胃排空，且和伊托必利联合应用，可获得更佳效果。实验结果表明其对平滑肌及肌间神经丛有一定保护作用，并可促进nNOS的表达，此可能是其的作用机制。

理气中药；肌间神经丛；糖尿病；胃排空

中国是糖尿病高发国家，随着糖尿病病程的延长和长期的高血糖水平，可以出现胃动力下降、胃排空迟缓等并发症，临床上称为“糖尿病性胃轻瘫”。目前，糖尿病性胃轻瘫产生机制尚不明确，一般认为可能与自主神经功能障碍、胃肠激素分泌异常、高血糖、平滑肌损害以及微血管病变等因素有关［1］。严格控制血糖水平，同时给予促胃动力药物是目前临床常采用的治疗方法。

中医通过辨证论治，运用中药治疗糖尿病胃轻瘫也取得了很好的效果。陈皮、枳实、木香、香附、玫瑰花是临床上治疗胃肠动力异常的常用中药，五味中药组方有健脾养胃，行气破气除痞，消积化滞的功效，能有效地治疗糖尿病性胃轻瘫［2］。为了进一步明确理气中药对糖尿病胃轻瘫的干预作用及其机制，本实验选用促胃肠动力药伊托必利联合五味理气中药灌服糖尿病胃排空延迟大鼠，观察促胃肠动力西药联合理气中药对糖尿病大鼠胃排空延迟的改善作用与单用伊托比必利或理气中药相比是否更有效，并在神经肌肉水平阐明其机制，从而为临床使用提供基础理论支持。

1　材料与方法

1.1材料

1.1.1实验动物7周龄雄性SD大鼠70只，体质量（250±10）g。

1.1.2主要试剂四氧嘧啶（ALX）：瑞士ALEXIS公司；理气中药（陈皮、玫瑰花、木香、枳实、香附各10 g，按传统工艺制备水煎剂，浓缩至1 g/mL）：广东一方制药有限公司；盐酸伊托必利胶囊：哈药集团制药总厂，规格：50 mg×20粒；精蛋白锌胰岛素注射液：江苏万邦生化医药股份有限公司，400 U/瓶；兔抗鼠神经元型一氧化氮合酶（nNOS）抗体：Santa Cruz公司。

1.2方法

1.2.1糖尿病大鼠模型制备雄性SD大鼠70只，适应性饲养1周后，按照随机数字表法随机分为2组：正常组（A组，10只）和模型组（60只）。所有大鼠禁食12 h，测血糖、称质量，血糖值偏高的大鼠予以剔除。模型组大鼠禁食水24 h后，以新配制的5%ALX溶液按120 mg/kg剂量，经腹腔30 s内快速注入，正常组大鼠腹腔注射等容积生理盐水，2 h后将50%葡萄糖20 mL放入饮水槽中，并恢复常规饲料喂养。72 h后，58只模型组大鼠血糖值在13.5～30.5 mmol/L范围，平均（22.80±3.34）mmol/L，模型大鼠出现进食、饮水量增加，体质量下降，即制模成功。2只大鼠未成模，予以剔除。成模率为96.67%。

*基金项目：天津市北辰区科技发展计划项目（BCWS2011-05）。

作者简介：张毅宏（1967-），女，副主任医师，主要从事消化内系统疾病研究工作。

糖尿病组大鼠造模成功后，对照组（B组）、理气中药治疗组（C组）经随机数字法各分为15只，伊托必利治疗组（D组）、伊托必利联合理气中药治疗组（E组）各14只。

1.2.2给药糖尿病大鼠模型制备成功后，各组均选用普通饲料喂养。在此基础上，A、B组大鼠每日灌服生理盐水10 mL/kg，C组大鼠每日灌服中药20 mL/kg，D组大鼠每日灌服伊托必利125 mg/kg，E组大鼠每日灌服伊托必利125 mg/kg联合中药20 mL/kg。在实验过程中，定期用断尾法测量各组大鼠血糖，并称体质量、记录摄食摄水量。在饲养给药过程中因高渗昏迷、低血糖导致B组2只、C组1只大鼠死亡，至24周饲养结束时，实际各组大鼠数量为：A组10只，B组13只，C组14只，D组14只，E 组14只。

1.2.313C胃排空呼气实验检测准备直径大小不等的桶状塑料瓶若干，剪成两段，在瓶盖上剪一直径与软胶管一致的小口，穿一段长约2 cm的软胶管连接，供大鼠呼吸。在瓶底剪一直径与硬胶管一致的小口，穿一段长约5 cm的硬胶管连接，留约4 cm在瓶外，用胶带将连接处密封。所有动物禁食24 h，收集零时气100 mL后。预先用13C-辛酸和蛋黄煎制好的实验餐（13C-辛酸18 mg加入1/5个蛋黄中），每只动物喂食等量实验餐，立即将大鼠根据体型大小放入适宜的瓶内，头朝瓶盖呼气处，尾对瓶底，连接处用胶带进行密封固定。用一长约5 cm的软胶管将硬胶管与红外线能谱分析仪连接，在仪器负压的吸引下，将瓶内的空气吸入仪器内，收集15、30、45、60、75、90、105、120、150、180、210、240 min气各100 mL检测，计算胃固体半排空时间并记录。

1.2.4组织病理学检测所有大鼠胃组织迅速用10%的福尔马林固定液中固定，石蜡包埋、切片。标本采用苏木-伊红（HE）染色，并进行nNOS免疫组化染色。用显微镜观察胃壁切片组织，重点观测肌间神经丛，高倍镜（40倍）下观察nNOS阳性的细胞数量及强度，于低倍镜（10倍）视野下，测量单位长度内胃壁神经元细胞数量。

1.2.5统计学方法采用SPSS 18.0软件进行统计学分析，计量数据采用均数±标准差（±s）表示，组间比较采用单因素方差分析，重复测量计量资料比较采用重复测量方差分析，P＜0.05为差异有统计学意义。

2　结果

2.1建立DM动物模型造模前各组大鼠血糖波动均在正常范围，且两两之间比较无统计学差异（P＞0.05）。造模后，第1天、第2天和第24周A组血糖无明显变化，为正常波动，与造模前比较差异无（P＞0.05）。B组，C组、D组和E组血糖水平在造模后第1天、第2天、第24周呈现升高趋势，与造模前比较均显著升高（均P＜0.01）。且造模1周后模型组（B组，C组、D组和E组）大鼠体质量较造模前有（20±5）g下降，综合上述表现，可认定造模成功。见表1。此后每周定期测量大鼠体质量，造模1周后，可发现模型组大鼠与对照组大鼠体质量相比较明显降低，差异有统计学意义（P＜0.05）。见表2。

表1　各组大鼠实验前后体质量的变化（±s）Tab.1　The changes of body weight in rats of each group before and after experiment（±s）g

表1　各组大鼠实验前后体质量的变化（±s）Tab.1　The changes of body weight in rats of each group before and after experiment（±s）g

注：与A组比较，*P＜0.05；与B组比较，#P＜0.05；与E组比较，△P＜0.05。

组别动物数　造模前　造模后1周　造模后24周A组　10　220.5±4.6　227.4±5.3　319.1±14.8 B组　13　214.5±4.9　212.3±24.8*　210.1±26.7* C组　14　221.1±3.3　214.7±16.6*#△　214.1±28.5*#△D组　14　220.4±4.3　221.9±23.4*#△　208.5±23.8*#△E组　14　221.6±3.0　211.3±12.8*#　232.6±18.3*#

表2　各组大鼠给药前后血糖的变化（±s）Tab.2　The changes of blood glucose in rats of each group before and after experiment（±s）mmol/L

表2　各组大鼠给药前后血糖的变化（±s）Tab.2　The changes of blood glucose in rats of each group before and after experiment（±s）mmol/L

注：与A组比较，*P＜0.01。

组别　动物数　造模前　造模后1 d　造模后24周A组　10　4.73±0.56　4.51±0.69　5.12±0.55 B组　13　4.55±0.51　23.8±0.29*　24.1±0.33* C组　14　4.31±0.56　25.2±0.25*　23.7±0.23* D组　14　5.02±0.76　23.9±0.41*　22.7±0.61* E组　14　4.60±0.73　24.2±1.68*　23.2±0.25*

2.2胃固体半排空时间B组大鼠胃固体半排空时间较A组大鼠明显延长，差异有统计学意义（P＜0.01），C组及D组大鼠胃固体半排空时间较B组大鼠显著缩短（P＜0.05），而E组大鼠胃固体半排空时间较C组及D组时间明显缩短，差异有显著性（P＜0.01）。见表3。

表3　大鼠13C胃固体半排空时间（±s）Tab.3　13C gastric half-emptying time of rats（±s）

表3　大鼠13C胃固体半排空时间（±s）Tab.3　13C gastric half-emptying time of rats（±s）

注：与A组比较，*P＜0.01；与B组比较，#P＜0.05；与C组比较，△P＜0.05；与D组比较，▲P＜0.05。

组别　动物数　13C胃固体半排空时间（min）A组　10　111.07±7.62 B组　13　200.98±5.74* C组　14　130.41±3.48#D组　14　146.29±7.86#E组　14　116.43±3.77△▲

2.3HE染色结果如图1所示，在HE染色下，正常大鼠胃壁结构、肌层均完整，可见肌间神经丛，糖尿病大鼠（B、C、D、E组）可见胃平滑肌细胞形态改变，胞浆染色淡，透亮，有空泡样变性坏死，胃环肌及纵肌变薄（见表4），胃肌间神经丛数量较正常大鼠明显减少（见表5，P＜0.05）。给药后，D组大鼠胃环形肌厚度较B组及C组大鼠明显增加（P＜0.05），E组大鼠胃环形肌及纵形肌厚度均较B组大鼠增加，差异有统计学意义（P＜0.05），但与C组和D组大鼠相比无统计学差异（P＞0.05）。

肌间神经丛数目方面D组较B组明显增加，C组及E组大鼠肌间神经丛数目较D组明显增加（P＜0.05），E组与C组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）。

2.4nNOS免疫组化染色结果如图2所示，A组大鼠nNOS免疫组化染色表达明显，而B组大鼠nNOS阳性神经数目显著减少，C、D、E组大鼠染色结果可见nNOS细胞阳性表达。统计结果显示（见表5），糖尿病组大鼠nNOS阳性神经丛数量均明显少于A组（P＜0.05），但给药的各组大鼠nNOS阳性神经丛表达高于B组，E组大鼠nNOS阳性神经丛数明显高于D组。

3　讨论

近年来，全球糖尿病患病率呈逐年增高趋势。据统计，美国目前有糖尿病的患者超过2 900万人，预计到2050年，每3个人中就会有一个糖尿病患者［3］。糖尿病是一种慢性代谢紊乱性疾病，发病机制复杂，目前的治疗多为对症治疗，无法根治［4］。

表4　各组大鼠胃壁平滑肌厚度的变化（±s）Tab.4　The changes of the gastric smooth muscle cell of rats of each group before and after experiment（±s）mm

表4　各组大鼠胃壁平滑肌厚度的变化（±s）Tab.4　The changes of the gastric smooth muscle cell of rats of each group before and after experiment（±s）mm

注：与A组比较，*P＜0.01；与B组比较，#P＜0.05；与C组比较，△P＜0.05。

组别　动物数　环形肌厚度　纵行肌厚度A组　10　0.40±0.09　0.06±0.03 B组　13　0.25±0.07*　0.03±0.03* C组　14　0.31±0.08*　0.06±0.01 D组　14　0.39±0.08△#　0.04±0.05 E组　14　0.40±0.04*#　0.06±0.04*#

图1　大鼠胃组织HE染色结果（10×10）Fig.1　HE staining results of stomach tissue in rats（10×10）

图2　大鼠胃组织免疫组化结果（40×10）Fig.2　Results of the immunohistochemical staining of stomach tissue in rats（40×10）

110多年前，Minkowshi等最早用切除狗胰腺的方法建立糖尿病动物模型，随着相关研究的不断发展，目前已有多种建立糖尿病动物模型的方法。选取适当的方法建立糖尿病相关动物模型，对于糖尿病及其并发症的研究具有至关重要的作用［5］，目前通常采用大鼠建立糖尿病动物模型。ALX为常用化学药物［6-7］。四氧嘧啶是一种β细胞毒剂，大鼠等多种动物注射四氧嘧啶后，可对其胰岛β细胞造成不可逆的损害，甚至坏死，影响胰岛素的分泌功能，注射24 h后即可出现持续性高血糖状态，最终导致糖尿病的发生，因此多年来一直用于复制糖尿病动物模型。四氧嘧啶大鼠糖尿病模型是评价抗糖尿病药物疗效及安全性的常用模型［8］。本研究通过腹腔注射ALX的方法建立糖尿病大鼠模型，24 h后血糖明显升高，并一直持续到24周，且模型大鼠多饮、多尿，体质量下降，符合糖尿病的表现，与既往文献报道一致。

表5　各组大鼠肌间神经丛数量及nNOS阳性神经丛数的变化（±s）Tab.5　The changes of the gastric smooth muscle and myenteric nerve plexus of rats of each group before and after experiment（±s）　个/mm

表5　各组大鼠肌间神经丛数量及nNOS阳性神经丛数的变化（±s）Tab.5　The changes of the gastric smooth muscle and myenteric nerve plexus of rats of each group before and after experiment（±s）　个/mm

注：与A组比较，*P＜0.01；与B组比较，#P＜0.05；与D组比较，△P＜0.05。

组别　动物数　胃壁肌间神经丛数目　nNOS阳性神经丛数A组　10　6.83±2.81　4.14±1.70 B组　13　3.12±2.50*　2.13±1.94* C组　14　4.45±1.65*△　3.12±1.74* D组　14　4.27±1.63*#　3.14±1.50* E组　14　4.95±2.10*△　3.45±1.65*△

本研究中糖尿病模型大鼠胃固体半排空时间较正常大鼠也明显增加。既往研究认为可能与自主神经病变有关［9］。中医学多将胃轻瘫归于恶心、反胃、痞满、积滞等病范畴，有人根据其病机命名为胃缓、胃痹［10-11］。从中医角度来说，本病是消渴病日久阴伤气耗，致中气虚损、脾升胃降失和、气机失调为主，脾气虚弱、运化无力为本，气滞、血瘀、湿阻、痰浊、食积、湿热等引起胃失和降为标，为虚实夹杂之证［2］。而关于糖尿病性胃轻瘫的治疗，中医多应用陈皮、枳实、木香、香附、玫瑰花等理气类中药，本方各位药配伍应用共奏运脾和气之效。本实验中的陈皮性温，味辛、苦，入脾、胃、肺经，具行气、疏肝、健脾、止痛等功效。临床常用于脾胃气滞之脘腹胀满或疼痛、消化不良；枳实性寒，味苦、辛，除痞消积，对大鼠胃动力有显著的促进作用，其机制可能与促进胃动素（MLT）释放及减少促胃液素分泌有关［12］。此外枳实还能兴奋大鼠胃肠道移行复合运动波（MMC），其作用与P物质（SP）有关［13］。木香性温，味辛、苦，归脾、胃经，有行气止痛的功效，并善理脾胃之气滞，具有明显的促进胃排空作用。香附性平，味辛、微苦、甘，可行气疏肝，解郁，以治气滞，其对肠动力传输有明显促进作用；玫瑰花性温，味甘，微苦，入肝、脾二经，具有理气解郁、活血散瘀的功效。现在药理研究证实玫瑰花有改善内脏微循环，在组织水平和细胞水平上有显著的抗氧化作用。诸药合用，集辛散、苦降、甘调于一方，虽治在调理脾胃之气，又旁顾肝肺。既理气调中，又培补中焦，兼顾肝肺，而使三焦通达，脾胃调和，枢机畅利，从而使脾胃功能恢复如常［14］，共奏健脾运化、调和气机之功效。西医多给予促胃动力药促进胃排空，本研究旨在观察理气中药、促动力西药伊托必利及两者联合在治疗糖尿病胃轻瘫方面的作用，初步探讨其作用机制。

本实验结果证实，上述五味理气中药组方及促胃肠动力西药伊托必利均具有显著促进糖尿病大鼠胃排空的作用，改善胃轻瘫，并且理气中药较伊托必利促进胃液体排空效果更加明显。理气中药和促胃肠动力西药相联合可明显减少糖尿病大鼠胃固体排空和液体排空时间，疗效优于两者单独应用。为研究其机制，进一步进行病理组织学研究，发现与正常大鼠相比，糖尿病模型大鼠胃组织平滑肌细胞形态改变，肌层变薄，神经丛数量减少。免疫组化发现nNOS表达减少。既往研究也有类似发现，即糖尿病大鼠模型nNOS阳性神经元密度减少［15-16］。应用理气中药或伊托必利24周后，大鼠胃组织肌层变厚，胃壁肌间神经丛增多，nNOS阳性神经元增多，且两者联用在改善胃壁肌间神经丛数目、nNOS阳性神经丛数、平滑肌厚度方面效果优于单独应用。因此，理气中药联合促胃肠动力西药改善糖尿病胃排空时间可能与其对平滑肌和肌间神经丛的保护作用有关。可见，在治疗糖尿病性胃轻瘫时，在给予西药促动力药的同时，适当给予理气中药辅助治疗是合理有效的治疗方法。

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（本文编辑：马英，高杉）

Study on the mechanism and the effects of prokinetic agents combined with Chinese herbs on the delayed gastric emptying in diabetic rats

ZHANG Yi-hong1，YANG Guo-li1，FU Ying1，ZHANG Zhao2，CAO Ze-wei2，ZHANG Jun1，WANG Tian-xi2，GUO Na2，GAO Jun-qin1
（1.Department of Dastroenterology，Tianjin Beichen Hospital，Tianjin 300400，China；2.Department of Dastroenterology，Tianjin Nankai Hospital，Tianjin 300100，China）

［Objective］To observe the effects of prokinetic agents combined with Chinese herbs on the delayed gastric emptying in diabetic rats and the underlying mechanism.［Methods］Totally 70 male SD rats were randomly divided into two groups：normal group （group A，n=10）and model group（n=60）.The rats of model group was established as diabetes model by intraperitoneal injection of alloxan.The successful model rats were divided into four groups：control group（group B，n=15），Chinese herbs treatment group（group C，n=15），Itopride treatment group（group D，n=14），Itopride combined with Chinese herbs treatment group（group E，n=14）.According to the requirements of each group，the corresponding drugs were given to the stomach every day.After 24 weeks of feeding，all rats were given13C-gastric half-emptying time.Then all rats were killed.HE and nNOS immunohistochemical staining were used to observe the pathological changes of gastric wall.［Results］1）Compared with the rats in group A，the gastric emptying time of all rats in model group （group B，C，D and E）were prolonged（P＜0.01）.2）Compared with group B，the gastric emptying time in rats of group C，D and E were significantly reduced（P＜0.05）.Compared with Group D and C，they were significantly reduced in group E（P＜0.01）.3）Compared with group A，the gastric smooth muscle cell in the model group became thinner，and the number of muscle plexus and the expression of nNOS in gastric smooth muscle of rats were significantly decreased in group B，C，D and E.4）The number of muscle plexus in group B was significantly higher than that in group D，while the number in group group D was significantly lower than that in C and group E. Meanwhile，the number of nNOS positive nerve plexus in group D was significantly lower than that in group E.［Conclusion］Combined with Chinese herbs，prokinetic agents can promote the gastric emptying in diabetic rats effectively，and the effects are better than that of single use of Chinese herbs or prokinetic agents.The mechanism may correlated with its protective effects on smooth muscle and myenteric nerve plexus.

Chinese herb；myenteric nerve plexus；diabetic；gastric emptying

R285.5

A

1672-1519（2016）06-0363-05

10.11656/j.issn.1672-1519.2016.06.12

2016-03-28）