向瑞琪，谢 锋,,*，谭 红，李占彬，孙晓红

（1.贵州医科大学公共卫生学院与健康学院，环境污染与疾病监控教育部重点实验室，贵州贵阳 550025；2.贵州省分析测试研究院，贵州贵阳 550000；3.贵州科学院，贵州贵阳 550000）

红托竹荪（Dictyophora rubrovolvata）被称为“山珍之王”和“菌中王后”，是贵州省的特色食用菌产业之一，在贵州的栽培技术水平、产量和产值均为全国第一[1]。红托竹荪子实体分为菌盖、菌柄和菌托3 个部分。其中不可食用的菌托约占整个竹荪鲜重的50%，采摘后被去掉，造成了资源浪费和环境污染[2-3]。食用菌中主要活性成分是多糖[4]，具有降血脂、降血糖[5]、抗氧化、延缓衰老[6]、抗凝血、免疫调节[7]、抗肿瘤和抗病毒等[8-10]功效。研究发现红托竹荪菌托中的多糖是三个部分中含量最高、体外抗氧化活性最强的[11]。近年来关于红托竹荪多糖的研究主要集中在子实体可食部分的提取及其抗氧化，而关于红托竹荪菌托多糖的研究较少。滕春丽等[12]研究超声提取红托竹荪多糖的工艺及其膜分离方法；王新等[13]研究了红托竹荪子实体多糖对耐缺氧及抗运动疲劳效果的影响；叶敏等[14]比较了不同去蛋白方法对红托竹荪子实体多糖损失率和脱蛋白效果。

以上研究中均未有对红托竹荪的边角废料菌托的结构与生物活性的相关探究，因此为探索其构效关系，并与同为贵州省食用菌重点产业的香菇和黑木耳对比，提取三种食用菌多糖后去蛋白透析。采用紫外分光光度计、高效凝胶色谱（High Performance Gel Permeation Chromatography，HPGPC）、红外光谱（Infrared spectrum，IR）、核磁共振（Nuclear Magnetic Resonance，NMR）和刚果红实验对比分析红托竹荪菌托中多糖与其他食用菌多糖的基本结构。通过清除DPPH 和OH 自由基的能力及Fe3+总还原力来比较三种食用菌多糖抗氧化能力，为利用红托竹荪边角废料于工业化生产多糖制品，代替昂贵的食用菌多糖食品，开发红托竹荪边角废料的利用价值和食用菌深加工提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

香菇、黑木耳、红托竹荪菌托 贵州省梵天菌业有限公司提供；标准品葡聚糖Dextran 系列（T-2000、T-150、T-40、T10、T-5） 美国Sigma 公司；溴化钾光谱纯，上海阿拉丁试剂有限公司；透析袋3500 Da 北京索莱宝科技有限公司；铁氰化钾 分析纯，上海麦克林生化科技有限公司；1，1-二苯基-2-苦基肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH） 纯度98%，上海源叶生物科技有限公司；其他化学试剂 均为分析纯，国药集团化学试剂有限公司。

BSM220.4 电子天平 上海卓精电子科技有限公司；Milli-Q 实验室超纯水系统 昆明倍捷科技有限公司；SHB-Ⅲ循环水式多用真空泵 郑州长城科工贸有限公司；HH-4 数显恒温水浴锅 金坛区西城新瑞仪器厂；1901PC 紫外可见光分光光度计、723S可见分光光度计 上海棱光技术有限公司；FD-1A-50 冷冻干燥机 北京博医康实验仪器有限公司；1525 型高效液相色谱仪 美国Waters 公司；iCAN 9 傅里叶变换红外光谱仪 天津市能谱科技有限公司；Bruker Avance III-600 MHz 超导核磁共振仪瑞士Bruker 公司。

1.2 实验方法

1.2.1 食用菌多糖的制备 分别称取粉碎后的食用菌10 g，按照料液比1:25（g/mL）加入蒸馏水，90 ℃提取2 h。抽滤后收集滤液，滤渣在相同条件下重复提取后合并两次滤液浓缩。加入适量的无水乙醇，配制成95%的乙醇浓度，室温下放置过夜。4000 r/min下离心，弃去上层乙醇溶液，底部沉淀加水溶解。采用Sevag 法去除蛋白[15]，加入4 倍体积的Sevag 试剂，匀浆机搅拌20 min 后离心，去除中间层的变性蛋白，重复以上步骤至无蛋白。浓缩后装入透析袋中流水透析2 d，冷冻干燥后得到三种食用菌多糖。采用苯酚-硫酸法分别测定三种食用菌多糖纯度[16]。

1.2.2 紫外光谱分析 称取样品用水配制成1 mg/mL的溶液，在190～400 nm 处的紫外分光光度计进行全扫描。

1.2.3 相对分子量测定 采用高效凝胶渗透色谱法（ High-Performance Gel Permeation Chromatography，HPGPC）测定三种食用菌的相对分子量[17]。测试条件：Waters 1525 型色谱仪，示差折光检测器；色谱柱：Ultrahydrogel™ Linear（300 mm×7.8 mm id×2）；流动相：0.1 mol/L 硝酸钠溶液；流速：0.9 mL/min；柱温：45 ℃。

葡萄标准曲线：称取Dextran T-2000（MW2×107）、T-150（MW133850）、T-40（MW36800）、T10（MW9750）、T-5（MW2700）、MW180）标准品用流动相溶解配制成5 mg/mL 的标准分子量溶液。以洗脱峰的保留时间T（min）为横坐标，葡聚糖标准品分子量的对数值lgMW 为纵坐标，其回归方程为y=13.8534x-0.4627，R2=0.9991。Breeze GPC 软件对曲线进行回归拟合绘制分子量校正曲线。

1.2.4 红外光谱测定 取2 mg 的三种多糖样品，与100 mg KBr 混匀研磨，压片后在4000～400 cm-1进行傅里叶红外光谱测试[18]。

1.2.5 核磁共振分析 取三种食用菌30 mg，溶解于D2O 重水中，移入核磁管中，在25 ℃条件下，用Bruker Avance III-600 MHz 核磁共振波谱仪记录，1H NMR 在600 MHz 测定，13C NMR 在150 MHz 测定[19]。

1.2.6 刚果红实验 参考文献[20]，分别吸取1 mL配制好的1 mg/mL 不同食用菌多糖溶液与同体积80 μmol/L 刚果红溶液混合，再加入4 mL 用5 mol/L氢氧化钠原液配制成0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mol/L的氢氧化钠溶液，蒸馏水为空白对照，在25 ℃下反应10 min，400～700 nm 处测量最大吸收波长。

1.2.7 抗氧化性分析

1.2.7.1 DPPH 自由基清除率的测定 根据王莹等[21]的检测方法并加以改进。用无水乙醇配制0.08 mol/L的DPPH 溶液。吸取2.0 mL 不同浓度（0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL）的三种食用菌多糖样品溶液加入3.0 mL 的DPPH 溶液，混匀后避光反应30 min。蒸馏水为空白对照，于517 nm 波长处测定吸光度值。

式中：A0为蒸馏水+DPPH 溶液的吸光度值；Ac 为样品溶液+蒸馏水的吸光度值；As 为样品溶液+DPPH 溶液的吸光度值。

1.2.7.2 Fe3+总还原力测定 参考罗丽平等[22]的测定方法。吸取2.0 mL 不同浓度（0.5、1.0、1.5、2.0、3.0 mg/mL）的食用菌多糖样品溶液，依次加入2.5 mL的0.2 mol/L，pH6.6 的磷酸盐缓冲液和2.5 mL 1%的铁氰化钾后在50 ℃水浴锅中反应20 min。加入2.5 mL 10%的三氯乙酸，300 r/min 离心10 min。吸取2.5 mL 上清液加入2.5 mL 蒸馏水和0.5 mL 0.1%的三氯化铁。蒸馏水为空白对照，700 nm 处测定吸光度值。

式中：Ah为样品溶液的吸光度值；A0为空白对照的吸光度值。

1.2.7.3 羟基自由基清除率的测定 按照林陈强等[23]的检测方法并改进。吸取1.0 mL 不同浓度的食用菌多糖样品溶液（0.5 、1.0、1.5、2.0、3.0 mg/mL），依次加入用无水乙醇配制10.0 mmol/L 的水杨酸溶液和9.0 mmol/L 的FeSO4各1.0 mL 混合均匀。再加入2.0 mL 蒸馏水和1.0 mL 6.0 mmol/L 的H2O2，37 ℃水浴反应10 min。蒸馏水为空白对照，在510 nm 处测定吸光度值。

式中：A0为空白对照的吸光度值；As 为样品+FeSO4+水杨酸+H2O2的吸光度值；Ac 为样品+FeSO4+水杨酸的吸光度值。

1.3 数据处理

结果表示为平均值±标准差，采用SPSS13.0 软件中的单因素方差分析（ANOVA）进行数据统计分析，P＜0.05 被认为是具有显著性差异。通过Origin 2019软件对数据进行作图，每组实验设置3次重复。

2 结果与分析

2.1 三种食用菌多糖纯度测定

以葡萄糖标准品含量为横坐标，以吸光值为纵坐标绘制标准曲线，得标准线性方程为：y=8.0823x-0.0043，R2=0.9997。以香菇、黑木耳和红托竹荪菌托为原料分别制得的多糖含量为78%±0.23%、81%±0.15%和76%±0.36%。三种食用菌提取的多糖含量与研究[24-26]中的多糖含量相比较低，可能是产地和品种的不同所致。

2.2 三种食用菌多糖紫外光谱分析

三种食用菌紫外全扫描如图1所示，由于三种食用菌多糖的溶液颜色、组成物质及其稳定性的不同导致最大吸光度不同。在260 和280 nm 处红托竹荪菌托无特征吸收峰，在260 nm 处香菇和黑木耳有特征吸收峰，说明通过Sevag 脱蛋白和透析后红托竹荪菌托多糖样品不含核酸和蛋白质，而香菇和黑木耳含有少量核酸，不含蛋白质。

图1 三种食用菌多糖紫外扫描图谱Fig.1 UV scanning spectra of polysaccharides from three edible fungi

2.3 三种食用菌多糖的相对分子量差异

通过高效凝胶渗透色谱法测定三种不同食用菌多糖的相对分子量，三种样品中多糖的相对分子质量分布和其分布范围根据葡聚糖的标准曲线得到，其回归方程为y=13.3579x-0.5349，R2=0.9991。如表1所示，三种食用菌多糖的分子量分布均出现两个洗脱峰。其中香菇多糖的重均分子量（Mw）主要分布在1.18×104Da，黑木耳多糖的重均分子量主要分布在1.29×104Da，红托竹荪菌托多糖的重均分子量主要分布在3.89×104Da。多分散系数（Mw/Mn）分别为0.61、0.39、1.20，多分散系数接近于1，分子量分布越均一。三种食用菌多糖均分布在万级和百万级，并且在分子量分布均一性上红托竹荪菌托多糖最好，香菇多糖其次，黑木耳多糖最差。

表1 不同食用菌多糖的相对分子量Table 1 Relative molecular weights of polysaccharides from different edible fungi

2.4 三种食用菌红外光谱分析

采用傅里叶变换红外光谱法对三种食用菌多糖进行官能团分析。如图2所示，三种食用菌多糖的特征峰相似。在3400～3200 cm-1处的吸收峰是由O-H 引起的伸缩振动，在2900 cm-1附近的吸收峰是由C-H 伸缩振动引起的。三种食用菌多糖分别在3364、3363 和3335 cm-1附近出现特征峰，证明三种多糖都存在羟基-OH。2925、2933 和2931.72 cm-1是亚甲基-CH2的特征峰，羟基和亚甲基是多糖的特征基团[27]。1600 cm-1附近是酰胺基C=O 的特征吸收峰，而在1417 cm-1附近出现的吸收峰是C=O 对称伸缩振动引起的，证明三种食用菌多糖含有羧基-COOH。在1100 cm-1附近为C-O-C 伸缩振动吸收峰，是吡喃糖环的特征峰[28]。在860.10、892.88、898.87 cm-1附近是β糖苷键的特征吸收峰，674.68、609.40、649.89 cm-1附近是α糖苷键特征吸收峰，由图可知，三种食用菌多糖是既具有α构型又具有β构型的酸性多糖。

2.5 三种食用菌多糖核磁共振分析

在图3 中，三种食用菌多糖化学位移δ在4.5～5.5 范围内，有2 处异头氢质子H-1 的化学位移。一般而言，α构型多糖分子异头氢的化学位移δ＞5.0，β构型多糖分子异头氢化学位移δ＜5.0[29]。这表明三种食用菌多糖既存在α构型又存在β构型，且δ5.31处的异头氢质子化学位移指示存在D-半乳糖醛酸（α构型）。

图3 三种食用菌多糖的1H NMR 谱图Fig.3 1H NMR spectra of polysaccharides from three edible fungi

在图4 中，三种食用菌在δ103.00 附近含有一个异头碳信号，这是β糖苷键的典型信号峰。观察到被O 取代的C-6 的信号峰在δ68.83 附近，未取代的C-6 的信号峰处于δ60.71 附近，说明可能存在β-（1→6）-D-吡喃葡萄糖。δ71 附近为α构型C-2，C-3的吸收峰。δ73.04 处是（1→6）糖苷键中的C-5。三种食用菌多糖的核磁共振分析进一步验证红托竹荪的边角废料菌托的多糖与可食用的食用菌多糖具有相似的结构，为其代替昂贵的食用菌原料生产多糖提供参考依据。

图4 三种食用菌多糖的13C NMR 谱图Fig.4 13C NMR spectra of polysaccharides from three edible fungi

2.6 刚果红实验结果分析

根据三种食用菌多糖的最大吸收波长与刚果红溶液的相比是否发生红移判断三种食用菌多糖是否具有三重螺旋结构[30]。如图5所示，三种食用菌多糖的最大吸收峰与对照组相比发生红移，说明香菇、黑木耳和红托竹荪菌托多糖中存在三螺旋结构，与刚果红络合后在NaOH 作用下发生一定的红移。

图5 三种食用菌多糖刚果红实验结果Fig.5 Experimental results of congo red polysaccharide from three edible fungi

2.7 三种食用菌多糖抗氧化活性结果比较

通过测定三种食用菌多糖的DPPH 和羟基自由基的清除率，以及对Fe3+总还原力来判定它们的抗氧化能力。从图6 可以看出，三种食用菌多糖在实验浓度范围内，清除DPPH、OH 自由基和还原Fe3+的能力均随着浓度的增加而增加。当浓度为1.0 mg/mL时，香菇、黑木耳和红托竹荪菌托多糖对DPPH 自由基的清除率依次为59.84%、9.88%和66.86%，对DPPH 自由基的清除能力的IC50值依次为0.055、0.180 和0.010 mg/mL，红托竹荪菌托多糖对DPPH的清除率极显著高于香菇和黑木耳多糖（P＜0.01）。当浓度为3.0 mg/mL 时，香菇、黑木耳和红托竹荪菌托多糖对Fe3+总还原力分别为0.926、0.1552 和0.5958，对Fe3+总还原力的IC50值依次为1.214、1.455 和1.217 mg/mL，香菇和红托竹荪菌托多糖对Fe3+总还原力极显著高于黑木耳多糖（P＜0.01），但香菇多糖与红托竹荪菌托多糖组间无显著性差异（P＞0.05）。当浓度为3.0 mg/mL 时，香菇、黑木耳和红托竹荪菌托对OH 自由基的清除率分别为27.70%、12.91%和35.69%，对OH 自由基的清除能力的IC50值依次为0.350、0.456 和0.195 mg/mL，红托竹荪菌托对OH自由基的清除率极显著高于香菇和黑木耳（P＜0.01）。综合DPPH 和羟基自由基的清除率，以及对Fe3+总还原力实验结果来看，红托竹荪菌托多糖的抗氧化能力最佳，香菇多糖次之，黑木耳多糖最差。三种食用菌多糖的抗氧化能力差异较大，可能是由于种类差异或部分结构组成不同造成的。

图6 三种食用菌多糖抗氧化能力实验Fig.6 Antioxidant capacity of polysaccharides from three edible fungi

3 结论

多糖的结构对其生物活性有很大的影响，因此本研究分别对香菇、黑木耳和红托竹荪菌托中多糖的结构进行了测定，对比了三种食用菌多糖的抗氧化能力。通过Sevag 脱蛋白和透析后红托竹荪托的多糖具有较好的均一性，三种多糖分子量均分布在万级和百万级。通过红外和核磁共振检测出三种食用菌多糖是具有三螺旋结构且含有相似的官能团的α和β构型的酸性多糖，三种食用菌多糖基本结构无显著性差异。此外，三种食用菌多糖都具备抗氧化活性，其中红托竹荪菌托多糖的抗氧化能力最佳，香菇多糖次之，黑木耳多糖最差。红托竹荪的菌托作为边角废料往往在采摘过程中被去掉丢弃造成浪费，就抗氧化活性上，可将其利用于抗氧化食品和药品的开发中，后续可研究其他的生物活性，代替昂贵的食用菌多糖产品，具有良好发展和应用前景。