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巯基化羧甲基壳聚糖载醋甲唑胺纳米球滴眼剂的生物安全性评价

2018-07-20李光远娄建石王晓辉刘佩莉祝君梅

天津医科大学学报 2018年4期
关键词:房水豚鼠培养液

李光远 ,娄建石 ,陈 斌 ,李 楠 ,王晓辉 ,刘佩莉 ,祝君梅

(1.天津医科大学药理学系,天津300070;2.天津市医药科学研究所医用生物材料监测研究中心,天津300020)

醋甲唑胺(methazolamide,MTZ)是一种新型的碳酸酐酶抑制剂[1],通过抑制睫状体中的碳酸酐酶,使房水生成减少,降低眼内压。其作为眼科治疗开角型青光眼、继发性青光眼的常用药物,在临床上得到广泛应用[2-3]。本实验采用乳化-蒸发-交联法,以巯基化羧甲基壳聚糖(thiolatedcarboxymethyl chitosan,tCMCS)为载体[4-5],包裹 MTZ 形成纳米球(thiolatedcarboxymethyl chitosan-carried methazolamide nanoparticles,tCMCS-MTZ-Ns),将其制备成滴眼剂(thiolatedcarboxymethyl chitosan-carried methazolamide nanoparticles eye drop,tCMCS-MTZ-NED)[6]。对该滴眼剂进行眼刺激试验、迟发超敏试验、细胞毒性试验(MTT法和LDH法),为该滴眼剂的应用提供实验依据。

1 材料与方法

1.1 实验材料

1.1.1 实验试剂醋甲唑胺原料药(武汉大华伟业医药化工有限公司。批号:20160912,纯度为99.2%),羧甲基壳聚糖(CMC,浙江澳兴生物科技有限公司,分子量30万,羧化度80%),三聚磷酸钠(TPP,分析纯,天津市光复科技发展有限公司),甲醛(天津市化学试剂批发公司,分析纯,150215),生理盐水(中国大冢制药有限公司,5K72G2),2,4-二硝基氯苯(天津光复精细化工研究所,化学纯,批号:2015年7月11日),弗氏完全佐剂(Sigma,批号:SLBF9338V),二甲基亚砜(天津瑞金特化学品有限公司,批号:2014/05),四唑盐(MTT,BIOSHARP),1640 培养液(HyClone,批号:NZL1265),胰酶细胞消化液(北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司,批号:312ML0110),乳酸脱氢酶(LDH)测定试剂盒(货号:A020-2,微量酶标法),聚山梨酯-80(Tween-80,分析纯,天津市光复科技发展有限公司),乙酸乙酯(分析纯,天津市光复科技发展有限公司),乙醇(分析纯,天津市光复科技发展有限公司),乙醚(分析纯,天津市光复科技发展有限公司)。

细胞株:NCTCclone929(小鼠成纤维细胞L-929,来源:中国科学院上海生命科学研究院细胞资源中心)。

1.1.2 实验动物 日本大耳白兔,雄性,2.0~2.5 kg(北京隆安实验动物养殖中心,许可证编号:SCXK(京)2014-0003)实验前适应性饲养1周。白化豚鼠,雄性,300~400 g(北京隆安实验动物养殖中心,许可证编号:SCXK(京)2014-0003),实验前适应性饲养3d。

1.1.3 仪器 酶标仪(芬兰雷勃公司,MK3),CO2培养箱(赛默飞世尔科技公司,HERAcell 150i),全温振荡培养箱(上海精宏实验设备有限公司,HZP-150),LYL-Ⅱ裂隙灯显微镜(凤凰光学仪器集团有限公司)。

1.2 方法

1.2.1 tCMCS-MTZ-NED制备 将MTZ原料药溶于乙酸乙酯,加入混合乳化剂(Tween-80和无水乙醇),在常温下超声,滴入0.5%HCl,继续超声,滴入tCMC溶液,待乳液变清时,再滴入TPP溶液,继续超声,即得到载药纳米球混悬液。6 000 r/min离心20 min,所得沉淀用乙醚冲洗,-80℃低温冰箱中保存,经冷冻干燥机制成冻干品。

1.2.2 浸提液制备

1.2.2.1 迟发超敏试验浸提液制备:tCMCS-MTZNED按照0.2 g/mL的比例使用生理盐水和芝麻油在37℃下浸提72 h。

1.2.2.2 细胞毒性试验浸提液制备:tCMCS-MTZNED按照0.2 g/mL的比例使用含胎牛血清的DMEM培养液在37℃下浸提72 h。

1.2.3 迟发型超敏反应试验 选用体质量300~400 g皮肤完好的健康白化豚鼠50只,将50只豚鼠按体重分层随机分为5组,样品生理盐水浸提液组10只,芝麻油浸提液组10只,阴性对照生理盐水和芝麻油浸提介质组各10只,阳性对照组0.5%2,4-二硝基氯苯10只。试验前24h剪剃背部区域被毛。

皮内诱导:试验时用75%酒精消毒试验区域后在脊柱两侧从头向尾成对的进行3对(6个点)皮内注射,每点注射0.1 mL。第一对A液,为弗氏完全佐剂与生理盐水或芝麻油等体积混合。第二对B液,为试验样品浸提液,对照组为阴性或阳性对照液。第三对C液,为A液与B液等体积混合。

局部诱导:皮内注射后6 d,各注射部位用10%十二烷基硫酸钠按摩导入,24 h后按组贴敷于B液中浸泡至饱和的滤纸片,固定并留置48 h。

激发:局部诱导后13 d,剪去豚鼠腹部毛发,用75%酒精消毒试验区域后,按组贴敷于C液中浸泡至饱和的滤纸片,固定并留置24 h。

除去敷贴物后24 h和48 h,观察贴敷区皮肤的红斑、水肿等反应,按Magnusson和Kligman分级标准(表1)对每一激发部位和每一观察时间皮肤红斑和水肿反应进行描述并分级。记录观察时间和激发部位红斑和水肿反应分级。

表1 Magnusson和Kligman分级Tab 1 Grading of Magnusson and Kligman

1.2.4 体外细胞毒性试验

1.2.4.1 MTT法:在96孔培养板上接种L-929细胞,接种密度为1×104/mL的细胞悬液,每孔100 μL,细胞培养24 h后,弃去原培养液。空白组(BL)用细胞培养液交换,阴性对照组用浸提比例为0.2 g/mL高密度聚乙烯浸提液(PE)交换,阳性对照组用含5%二甲基亚砜(DMSO)的细胞培养液交换,试验样品组用载银纳米粒凝胶剂浸提液或纳米银浸提液进行交换。置CO2培养箱内37℃培养72 h。更换培养液后 72 h,每孔加入 20 μL、5 g/L 四唑盐(MTT)溶液继续培养4 h后弃去孔内液体,加入150 μL二甲基亚砜,置振荡器上振荡10 min,在酶标仪570 nm和630 nm处测定各孔吸光度。计算相对增殖率(RGR)。细胞毒性反应分级见表2。

表2 细胞毒性反应分级Tab 2 Cytotoxic reaction grading

计算公式为RGR(%)=(570 nm材料组平均值-630 nm材料组平均值/570 nm阴性对照组平均值-630 nm阴性对照组平均值)×100%。

1.2.4.2 LDH法:在96孔培养板上接种L-929细胞,接种密度为1×104/mL的细胞悬液,每孔100 μL,细胞培养24 h后,弃去原培养液。空白组用细胞培养液交换,阴性对照组用浸提比例为0.2 g/mL高密度聚乙烯浸提液交换,阳性对照组用含1%Triton-X-100的细胞培养液交换,试验样品组用浸提液进行交换。置CO2培养箱内37℃培养72 h。更换培养液后72 h,每孔按照说明依次加入试剂盒中试剂,混匀,室温静置5 min,450 nm波长处酶标仪测定吸光度值。计算LDH总释放率(T)。结果见表5。

计算公式为T(%)=(试验样品组的平均吸光度值-溶剂对照组的平均吸光度值)/(Triton-X-100对照组的平均吸光度值-溶剂对照组的平均吸光度值)

1.3 统计分析 采用SPSS17.0进行统计学分析,计算MTT试验中tCMCS-MTZ-NED的半数生长抑制浓度(IC50)和LDH试验中LDH释放率达到50%时tCMCS-MTZ-NED的浓度。

2 结果

2.1 迟发型超敏反应试验 见表3。试验结果表明,受试组和阴性对照组在去除贴敷24 h和48 h后未见红斑、水肿,阳性对照出现不同程度红斑反应,实验材料对豚鼠不致敏。

表3 tCMCS-MTZ-NED对豚鼠迟发型超敏反应试验结果(n=10)Tab 3 Results of delayed type hypersensitivity of tCMCS-MTZNED in guinea pigs (n=10)

2.2 体外细胞毒性试验

2.2.1 MTT试验结果 见表4。试验结果表明,试验样品的浸提液细胞毒性反应为2级。

2.2.2 LDH试验结果 见表5。试验结果表明,试验样品浸提比例为0.2 g/mL时,LDH释放率为37.09%。

表4 tCMCS-MTZ-NED MTT试验结果Tab 4 MTT test results for tCMCS-MTZ-NED

表5 tCMCS-MTZ-NED LDH试验结果Tab 5 LDH test results for tCMCS-MTZ-NED

2.2.3 统计学分析 结果采用SPSS17.0进行统计学分析,计算得出MTT试验中tCMCS-MTZ-NED的半数生长抑制浓度(IC50)为0.24 g/mL,LDH试验中LDH释放率达到50%时tCMCS-MTZ-NED的浓度为0.54 g/mL。

3 讨论

醋甲唑胺是一种碳酸酐酶抑制剂,碳酸酐酶(CA)是一种含锌金属酶,它在睫状上皮细胞中催化CO2和H2O最终生成CO32-,透过腔膜分泌于房水。由于溶液要保持电中性,Na+向房水分泌增加,同时带动Cl-向房水迁移,从而在房水形成高渗透压,促进H2O向房水方向运动,保持房水的离子平衡及其流量[7-8],而青光眼患者由于房水回流不畅引起眼内压升高。碳酸酐酶抑制剂可抑制CA的活性,使HCO3-的生成减少,从而减少 HCO3-、Na+、Cl-和 H2O进入房水,使房水生成减少,起到降低眼内压作用,临床上用于治疗青光眼[9-10]。Calvo[11]等研究发现,纳米球给药系统使角膜渗透性提高了4~5倍。徐咏梅[12]等研究发现巯基化羧甲基壳聚糖生物黏附性更高。本实验首次使用巯基化改性的羧甲基壳聚糖衍生物用于局部眼科给药的载体材料,除改善亲水性,还可与角膜外黏液层中的糖蛋白黏附,使纳米球能更好地集聚在角膜表面,缓释的MTZ不断通过角膜屏障进入房水并维持有效浓度,达到提高MTZ生物利用度的目的。

在此之前,已对本实验材料进行了眼刺激试验,试验结果表明动物双眼对光反射良好,角膜区透明,虹膜、结膜正常,均未见充血,眼睑无水肿,无分泌物生成[13]。本研究依据GB/T16886《医疗器械生物学评价》的评价方法[14],对产品进行了迟发超敏试验和体外细胞毒试验,迟发超敏试验结果表明本材料对豚鼠皮肤无致敏性,在体外细胞毒性试验中,试验样品浓度为0.2 g/mL和0.1 g/mL的浸提液细胞毒性反应为2级,其原因可能是由于纳米球可以透过细胞膜进入细胞内或进入细胞器,并和生物大分子发生反应,使生物膜发生结构改变,从而产生细胞毒性。本试验通过两种方法测定了给药系统的细胞毒性。MTT试验主要检测细胞线粒体功能障碍,即琥珀酸脱氢酶活性的抑制,从而考察细胞活性和生长状态;而LDH试验是检测受试物对细胞膜的破坏。试验结果提示实验材料引起细胞毒性的机理主要是通过影响细胞器的功能,但LDH试验结果显示实验材料也引起了一定程度细胞膜的破坏,为毒性机制的分析提供依据。IC50是细胞半数致死时所需要的药物浓度,该指标能够定量地反映tCMCS-MTZ-NED浓度对细胞毒性的影响,为tCMCS-MTZ-NED的生物安全性评价提供更加全面的数据支持。

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