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结核病免疫机制及疫苗研究进展

2011-01-24达泽蛟祝秉东张颖

微生物与感染 2011年3期
关键词:佐剂结核结核病

达泽蛟,祝秉东,张颖

1. 兰州大学结核病研究中心暨病原生物学研究所,兰州 730000; 2. 美国约翰·霍普金斯大学布隆博格公共卫生学院分子微生物学与免疫学系,马里兰州 21205

结核分枝杆菌(Mycobacteriumtuberculosis, Mtb)是一种顽固的病原体,已感染全世界1/3人口。每年有约900万例新发结核病患者,近200万例死于结核病[1]。随着越来越多耐药菌株的出现,特别是耐多药(至少对2种一线抗结核药物异烟肼和利福平耐药)和广泛耐药(在耐多药的基础上,又对2种主要的二线抗结核药物氨基糖苷类和氟喹诺酮类药物耐药)菌株的出现,给结核病的控制带来了巨大挑战[2]。由于人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)感染、社会经济影响(如部分地区经济发展落后、个体营养状况差)、精神及躯体压力等因素,宿主免疫力低下,最终使处于潜伏期的结核分枝杆菌活化或导致部分个体再感染[3]。这使得当前结核病疫情愈加严峻。

目前,结核病疫情与其化疗药物和卡介苗(bacillus Calmette-Guérin,BCG)的有效性形成矛盾。导致该结果的主要因素包括:结核病需要长期服药和结核分枝杆菌耐药,特别是结核病控制策略没有充分考虑到结核分枝杆菌的潜伏感染。BCG不能提供有效的免疫保护力来抵抗结核分枝杆菌的感染,尤其不会对处于潜伏期的结核病患者产生任何效果。每年900万的新发结核病例,在某种程度上反映了这个问题。结核分枝杆菌的潜伏感染就像一颗定时炸弹,已成为结核病防治的一大隐患。当机体免疫力低下时(如HIV感染、麻疹、营养不良、情绪低落等),潜伏的结核分枝杆菌感染就可能转化为活动性结核病[4]。因此,对于结核病防治,必须兼顾针对活动期和潜伏期的结核分枝杆菌感染。本文将围绕结核病免疫发病机制的研究进展,讨论如何将其用于新疫苗研制,同时对当前新疫苗研发的进展作一综述。

1 结核病免疫机制

当人吸入结核分枝杆菌后,30%个体会被感染。感染个体中,90%处于潜伏期,不到10%发展为活动性结核。处于潜伏感染期的个体,一生中有不到10%的概率发展为活动性结核病。导致以上变化发生的危险因素包括宿主的易感性、社会经济发展落后、年老及其他原因导致的免疫力低下。如HIV感染者发展为活动性结核病的概率每年>10%[5]。

结核分枝杆菌经呼吸道引起肺部感染,在机体建立免疫力前被肺泡巨噬细胞吞噬,并在其中增殖。机体在抗结核免疫反应作用下,细胞及组织病理损伤表现为典型的干酪样坏死,参与的各种免疫细胞包括巨噬细胞、树突细胞、中性粒细胞和淋巴细胞,并构成结核肉芽肿。在机体免疫反应作用下,结核分枝杆菌停止增殖,病理损伤有所局限。但不是所有结核分枝杆菌都被杀死,在机体免疫力低下时又会增殖。干酪样损伤进一步液化,流入血管引起血行播散,形成粟粒型肺结核和肺外结核(如结核性脑膜炎)。病灶液化可侵入气道形成结核空洞,大量结核分枝杆菌在空洞增殖、生长,并通过呼吸道进行传播[6]。

结核分枝杆菌通过补体受体3(complement receptor 3,CR3)[7]、甘露糖受体(mannose receptor,MR)和清道夫受体(scavenger receptor,SR)[8]被巨噬细胞吞噬,形成吞噬体(图1)。吞噬体与溶酶体融合形成自噬溶酶体,溶酶体中的酶再降解结核分枝杆菌的蛋白及其他成分,该过程称为自噬,是天然免疫的一部分。但结核分枝杆菌通过分泌酸性磷酸酶(secreted acid phosphatase,SapM)[9]、蛋白激酶G(protein kinase G,PKG)[10]和糖基化磷脂酰肌醇等来抑制吞噬体与溶酶体的融合[11]。SapM是一种分泌型类脂磷酸酶,能水解磷脂酰肌醇-3-磷酸(phosphatidylinositol-3-phosphate,PI3P)。PI3P是位于吞噬体膜表面的一种运输调节脂类,为吞噬体与溶酶体融合所必需[9]。吞噬体中的结核分枝杆菌清除PI3P,能阻止吞噬体与溶酶体的融合。另外,结核分枝杆菌细胞壁成分脂阿拉伯甘露聚糖(lipoarabinomannan,LAM)可模仿哺乳动物磷脂酰肌醇阻止磷脂酰肌醇3激酶(phosphatidylinositol 3 kinase,PI3K)及其产物PI3P,从而抑制吞噬体发展为吞噬溶酶体,使结核分枝杆菌存活[11,12]。PKG类似于真核细胞的丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶(serine/threonine kinase,Akt),与抑制吞噬体与溶酶体融合有关[10],但确切机制及其宿主靶位还不清楚。最近研究表明,T辅助细胞1型(T helper cell type 1,Th1)相关细胞因子——γ干扰素(interferon γ,IFN-γ)能促进吞噬体与溶酶体融合,并通过干扰素诱导蛋白1(interferon-inducible Golgi membrane associated GTPase,Irgm1/LRG-47)[13,14]和PI3K[15]细胞信号转导通路发挥作用。然而Th2相关细胞因子——白细胞介素4(interleukin 4,IL-4)和IL-13可通过Akt信号途径终止自噬功能和自噬介导的杀菌作用。此外,IL-4和IL-13通过信号转导和转录激活子6(signal transducer and activator of transcription 6,STAT6)转录因子抑制IFN-γ诱发的自噬作用[16]。除吞噬作用相关的细胞信号转导,结核分枝杆菌19kD脂蛋白、脂化甘露聚糖、磷脂酰肌醇甘露糖苷和核酸与巨噬细胞表面Toll样受体2(Toll-like receptor 2,TLR2)、TLR4、TLR9等模式识别受体相互作用,通过髓样分化因子88(myeloid differentiation factor 88,MyD88)、IL-1 I型受体相关蛋白激酶激活TLR介导的细胞信号转导通路,导致核因子κB(nuclear factor κB,NF-κB)活化入核,促进肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor,TNF)、IL-12表达和一氧化氮(nitric oxide,NO)等生成增多[17]。此外,TLR2活化激活巨噬细胞维生素D受体和维生素D-1-羟化酶基因,最终分泌抗菌肽以杀死细胞内的结核分枝杆菌[18]。

图1 结核分枝杆菌与宿主细胞在巨噬细胞水平的相互作用

Fig.1Mycobacteriumtuberculosis-host cell interaction at macrophage level

感染的巨噬细胞和树突细胞分泌各种细胞因子,包括IL-12、IL-23、IL-7、IL-15、TNF,并呈递各种抗原给CD4+T细胞、CD8+T细胞、CD1限制性T细胞(识别脂质抗原)和γδT细胞(图2)[19]。活化的T细胞分泌IFN-γ,与TNF共同激活巨噬细胞,通过活性氮、活性氧介导,杀死胞内的结核分枝杆菌。另外,CD8+细胞毒性T细胞分泌颗粒溶素、穿孔素,杀死胞内结核分枝杆菌。但CD4+Th2产生的IL-4和CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞(regulatory T cell,Treg)产生的IL-10和转化生长因子β(transforming growth factor β,TGF-β)抑制IFN-γ介导的杀结核分枝杆菌作用[20-22],有效下调炎症反应,从而有助于结核分枝杆菌生存。另有研究发现,结核分枝杆菌甘露糖末端修饰的LAM可刺激Treg分泌免疫抑制因子IL-10和TGF-β[23]。近几年来,对以分泌IL-17为特征的新T细胞亚群Th17的研究表明,Th17是重要的炎症反应和CD4+T细胞免疫反应的调节者[24]。Th17分泌IL-17并募集中性粒细胞、单核细胞。CD4+T细胞分泌IFN-γ,刺激趋化因子表达[24]。但IFN-γ亦能抑制Th17分泌IL-17,有利于限制结核分枝杆菌诱导的免疫病理损伤(图2)[25]。虽然近几年免疫学发展迅速,但目前对干酪样坏死及液化的机制仍不清楚。

图2 结核分枝杆菌感染的免疫反应

Fig.2 Cellular immune response toMycobacteriumtuberculosisinfection

2 BCG存在的问题

BCG是Calmette和Guérin将牛型结核分枝杆菌经过230次传代培养,历时13年(1908~1921年)所研制的减毒分枝杆菌。BCG是目前应用最广泛的结核分枝杆菌疫苗,已接种76%新生儿。它能降低小儿患严重结核性脑膜炎及粟粒型肺结核的风险,保护70%~80%的新生儿;但其保护效应不稳定,尤其对患肺结核的成人保护力较差。如在南印度Chingleput地区,BCG的保护率为0%;而在英国学龄儿童中保护率可高达80%[26,27]。尽管BCG得到广泛应用,但面对全球结核病疫情的蔓延却无能为力。因为作为一种预防性疫苗,它不能有效治疗结核分枝杆菌的潜伏感染。此外,由于BCG仍存在一定毒力,免疫力低下的儿童(多为先天性免疫缺陷)接种BCG后可引起结核病样的BCG疾病(经血行及淋巴播散全身)。

BCG缺乏有效性的确切原因还不清楚,可能与以下因素有关[27]:BCG菌株多样,不同菌株的免疫原性可导致不同的保护效应;BCG菌株可能在反复的体外培养中丢失了一些重要的抗原;也可能与宿主的遗传因素有关;环境分枝杆菌的感染可能掩盖BCG的保护力;最近研究显示BCG与临床致病结核分枝杆菌有很大不同,如BCG对流行的临床菌株北京株缺乏有效作用[28];还可能与寄生虫感染增强Th2反应和Treg减弱BCG的保护效应有关[29]。

3 新疫苗

由于现有的BCG存在很多问题,因此寻找新的疫苗尤为重要[19,26,30,31]。总的来说,处于现研究阶段的疫苗可分为3类:暴露前疫苗(预防为主)、暴露后疫苗(针对潜伏感染活化)和治疗性疫苗(可提高化疗的疗效,增强杀菌效果)。

当前候选疫苗也可分为BCG替代疫苗和亚单位疫苗[19,26]。BCG替代疫苗包括表达结核分枝杆菌抗原Ag85和38kD的重组BCG,重组李斯特菌溶素(listeriolysin)[32]或产气荚膜梭菌溶素(perfringolysin)(http://www.aeras.org)的BCG,以及减毒活疫苗(结核分枝杆菌leuD、panCD、lysA、RD-1、phoP和mce2/3的突变体)[33-35]。亚单位疫苗包括蛋白疫苗(使用新型佐剂的融合蛋白Mtb72f、Ag85-ESAT6、Ag85-TB10.4)、表达结核分枝杆菌抗原(如Ag85A)的病毒载体疫苗(痘病毒和腺病毒)[36,37]和DNA疫苗(HSP60、Ag85)[26,38]。表1列出了一系列处于不同研发阶段的结核候选疫苗。其中进展最快的为MVA85A(表达Ag85A的Ankara改良痘苗病毒),用于强化BCG免疫,已进入临床Ⅱ期试验[39]。早期分泌抗原靶蛋白6(early secretory antigenic target 6,ESAT6)已作为诊断抗原,用以区别BCG免疫和结核分枝杆菌感染。因此,在各种研发的疫苗中,含有ESAT6的候选疫苗可能给结核病的诊断带来困难[40]。

表1 处于不同研发阶段的主要候选疫苗

Tab.1 Current tuberculosis vaccine candidates

Vaccine candidateDeveloperStageDescriptionAeras 422AerasClinical ⅠOverexpression of selected antigens and endosome escape to enhance antigen immunogenicityBCG::RD1Institut PasteurPreclinicalRecombinant BCG with reintroduction of RD1 and expressing antigens ESAT6 and CFP10rBCG::ΔureC-hlyMax Planck InstituteClinical ⅠUrease-deleted recombinant BCG expressing listeri-olysin from Listeria monocytogenesAttenuated MtbAlbert Einstein College of MedicinePreclinicalMtb with double deletion of lysA/panCD and RD-1/panCD Mtb ΔphoPInstitut PasteurPreclinicalMtb with inactivation of phoP by inserting a drug-resistance geneMVA85AOxford UniversityClinicalⅡA recombinant modified vaccinia virus Ankara (MVA) containing Mtb antigen 85AAeras 402 / Crucell Ad35Crucell N.V./AerasClinicalⅡA replication-deficient adenovirus Ad35 containing Mtb antigens 85A, 85B, and TB10.4Mtb72FAeras/GlaxoSmithKlineClinicalⅡA fusion protein of Rv1196 and Rv0125 in adjuvant AS01 or AS02H1-CAF01Statens Serum Institut Clinical ⅠA fusion protein of 85B and ESAT6 in adjuvant CAF01H1-IC31Statens Serum Institut Clinical ⅠA fusion protein of 85B and ESAT6 in adjuvant IC31SSI/SP H4-IC31Statens Serum Institut /AerasClinical ⅠA fusion protein of 85B and TB10.4 in adjuvant IC31

Mtb,Mycobacteriumtuberculosis.

目前,BCG和重组BCG初次免疫后再用亚单位疫苗加强免疫的免疫策略被人们所接受[19,26,36]。巴西的研究表明[41],反复接种BCG不能增强BCG的保护效果,即增加接种BCG次数也不能提高疫苗本身的效果。

4 疫苗佐剂

各型疫苗的研发主要集中在抗原筛选方面,但仅考虑抗原是远远不够的,因为单个抗原所引起的免疫效应有限,需合适的佐剂提高其免疫效应和保护力。因此,新一代结核蛋白亚单位疫苗需要寻找一个理想的佐剂。70多年来,铝佐剂是唯一一个在世界范围广泛应用的注册佐剂。另外,MF59在一些国家作为预防流行性感冒(简称流感)和甲型肝炎疫苗的佐剂,已经注册[42,43]。但以上2种佐剂主要介导体液免疫,对以细胞免疫为主的结核疫苗效果不佳。结核分枝杆菌与HIV的合并感染已成为世界公共卫生问题,这2种疾病都以细胞免疫为特点,但现有疫苗缺乏理想的针对细胞免疫为主的佐剂。

近几年来,随着佐剂技术的发展,一系列能诱导较强细胞免疫的佐剂已进入临床试验。如Ag85B-TB10.4、Ag85B-ESAT6和Mtb72F融合蛋白分别在一种阳离子多肽﹝KLKL5KLK与寡脱氧核苷构成的佐剂(IC31)和由单磷酰脂A和皂角苷QS-21构成的水-油乳浊液(AS02A) ﹞介导下,可诱导有效的细胞免疫反应,并具有免疫保护效应[44,45]。由阳离子脂质体二甲基三十六烷基铵(dimo-thylidioctyl ammonium bromide,DDA)和trehalose 6,6-dibehenate (TDB)构成一种新型的复合佐剂CAF01,可辅助结核融合蛋白Ag85B-ESAT6诱导较强的细胞免疫效应。TDB为结核分枝杆菌细胞壁索状因子(cord factor)类似合成物,动物实验显示其保护效果较理想,已进入Ⅰ期临床试验[46]。从以上不难看出佐剂发展的一个趋势,即单个成分的佐剂可能被复合佐剂所取代。单个佐剂的免疫效应有限,且不同佐剂之间各有特点,所以合理搭配不同的佐剂已成为研发新型佐剂的趋势。一些新技术的应用(如纳米技术)也推动了佐剂发展,如以聚乳酸-羟基乙酸共聚物﹝poly(lactic-co-glycolic acid),PLGA﹞为载体的佐剂联合融合蛋白TB10.4-Ag85B,能增强T细胞免疫反应[47]。

虽然佐剂技术有了长足进步,但寻找一个安全、稳定和有效的佐剂,仍需要大量的研究和时间检验。

5 疫苗评价

抗结核疫苗的保护效率通常以免疫原性、结核菌载量(bacterial load)和感染动物的生存时间来评价[19,26]。免疫原性的实验指标包括与保护相关的细胞因子(如IFN-γ、IL-2和TNF-α)分泌量和活化的T细胞数目(CD4+和CD8+T细胞)。评价结核疫苗的保护效率是一项十分复杂的工作,牵涉诸多因素,包括不同的动物模型(小鼠、豚鼠、兔和灵长类动物),不同的免疫途径(皮内、皮下、腹膜内、肌内、鼻内、气溶胶和口腔),不同的剂量(低、中、高),不同的间隔时间和加强次数(4周、6周、8周),不同的毒力菌株(Erdman、H37Rv、临床株),不同的毒株攻击剂量(低、中、高),不同的感染途径(气溶胶、静脉),从感染到检测时间间隔(4周、6周、8周)和不同的判断标准(动物生存状况、菌落形成单位、病理学和脾脏重量)。

在人体评价疫苗的免疫原性更复杂,因为能保护人体有关的免疫参数还未彻底搞清楚。不过,新方法的建立给疫苗筛选带来了启发。如从已注射疫苗动物体内分离T细胞,与巨噬细胞进行体外结核分枝杆菌抑制检测。最近Ⅱ期临床试验表明,BCG初次免疫后用MVA85A强化可诱导较高的细胞免疫反应, IFN-γ和TNF-α分泌增多,并诱导可分泌IL-2的记忆性T细胞[39],但其保护效果仍有待观察。然而,南非的研究发现,新生儿接种BCG 2年后,CD4+T细胞分泌IFN-γ的水平与免疫保护效果并不相关[48]。

新疫苗的临床试验花费巨大,耗时较长,在整个临床试验阶段,评价体系又不够精确,因此新疫苗的临床前研究至关重要。如果能在实验室尽可能系统地评价出理想的新疫苗,就有可能避免临床试验时不必要的浪费,节省大量的资金和时间。合适的动物模型是首先要考虑的问题。不同动物对结核分枝杆菌的敏感性不同,不同动物针对结核分枝杆菌的免疫特点也不同(如小鼠感染结核分枝杆菌后可诱导明显的细胞免疫,但不能形成典型的干酪样坏死病变,而豚鼠恰好相反)。因此,长期以来作为结核免疫研究对象的兔模型,已得到很多学者的重视。有研究表明,兔模型在筛选疫苗方面可能有更好的优势。为避免不同动物模型的局限性,尽可能选择多个动物模型,最后综合评价,也许是不错的办法[49]。

目前,许多实验室都选择H37Rv标准株作为毒力攻击株,这也存在很大的局限性,或许应该选择一些临床菌株如北京株。最好在进行流行病学调查的基础上,选择当地的优势菌株进行毒力攻击实验,这可能更有临床意义[50]。

6 合理的疫苗研发策略

长期以来,人们普遍认为Th1型细胞因子IFN-γ能保护机体抵抗结核病,但过强的Th1型免疫反应会引起组织病理损伤。Th2反应和Treg抑制Th1反应能阻止组织损伤,但会导致结核分枝杆菌存活[16,22]。如何在两者之间找到平衡,在保护组织、局限组织损伤的同时,也能限制甚至杀死结核分枝杆菌,是理想疫苗设计的关键。Th2型细胞因子IL-4、IL-13对抗IFN-γ介导的免疫保护,减少TNF介导的感染细胞的凋亡和诱导型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)的活动,增强Treg作用,提高TNF的毒性,故会减弱抗菌作用[22]。疫苗可能不仅需提高CD4的Th1反应,还要减弱Th2(IL-4)和Treg反应(IL-10、TGF- β)[22]。最近研究表明,重复接种可刺激Th1反应的候选疫苗可能导致随后向Th2反应发展。如有保护效果的Ag85B DNA疫苗经蛋白Ag85B加强后,免疫保护效果丢失。这可能是由于经过强化免疫后,免疫反应向Th2方向发展[51]。Ag85A DNA疫苗初次免疫能增强BCG的保护效果,但BCG免疫后用Ag85A的DNA、85A蛋白或MVA85A强化免疫不能增强BCG的保护力,相反可引起与病理相关的IL-17分泌[52]。

候选疫苗(rBCG::△ureC-hly、DNA疫苗、表达结核分枝杆菌抗原的病毒载体)刺激CD8+T细胞,能提供有效的保护力,抵抗肺结核的发生[32,37,38,53]。德国马普研究所依据宿主与病原体之间的免疫反应,设计了重组BCG(rBCG::△ureC-hly),从BCG剔除了尿素酶基因以防尿素酶碱化吞噬小体空泡,而酸化空泡可利于吞噬小体与溶酶体的融合。此外,该BCG变异株表达来自于李斯特菌的溶菌素基因,导致吞噬小体溶解,更有效地通过主要组织相容性复合物(major histocompatibility complex,MHC)Ⅰ类分子呈递抗原给CD8+T细胞。同时,使已感染的巨噬细胞凋亡,树突细胞摄取其裂解物,反过来进行更有效的抗原呈递,整个过程称交叉致敏[32]。人们依据产气荚膜梭菌溶素研制了一个类似的疫苗。

新型佐剂IC31已用于重组结核分枝杆菌Ag85B和TB10.4蛋白,可有效刺激T细胞和B细胞[44]。此外,佐剂AS02与蛋白亚单位疫苗Mtb72F能诱导Th1免疫反应(表1)[45]。

BCG缺乏RD1区域,已表明将该区域基因互补入BCG能提高其保护力[54],但是否会增强BCG的毒力还有待进一步评价。PhoP是结核分枝杆菌的一个重要毒力致病因子,结核分枝杆菌减毒株H37Ra株毒力降低与phoP基因突变密切相关。phoP突变株亦可能是一个有希望的候选疫苗[34]。最近,H37Ra基因组测序已经完成[55],有可能以H37Ra株为参照研制出新的减毒活疫苗。

利用处于休眠期的蛋白研制针对潜伏感染的疫苗,引起了人们的浓厚兴趣。人们设计了表达休眠相关基因如DosR调节蛋白的重组BCG(表1)[56]或基于DosR蛋白设计亚单位疫苗[57,58]。最近有研究报道,将结核分枝杆菌休眠期抗原Rv2660c和Ag85B、ESAT6融合制备的疫苗既具有预防性疫苗的作用,还可有效预防潜伏感染结核分枝杆菌的复活[59]。

7 结核病疫苗发展面临的挑战

结核病疫苗的发展面临诸多挑战,如缺乏预测临床保护效果的替代指标,这将是疫苗研发的巨大障碍。Ⅲ期临床试验需花费很长时间(3~4年,甚至更长)和大量患者,试验成本昂贵。更重要的是,缺乏临床试验场所。不过,最近Aeras全球结核病疫苗基金会正在印度、南非、肯尼亚和乌干达等地建立试验场地(http://www.aeras.org),包括欧洲和发展中国家的合伙人也正在增建临床试验场地,这些将为结核疫苗的最终应用奠定基础。

8 展望

在结核疫苗的发展研制过程中,出现了很多有趣的问题。许多候选疫苗正在进行临床前研究,有几种已经进入临床Ⅰ期或Ⅱ期试验研究。Aeras全球结核病疫苗基金会受比尔·盖茨及梅林达·盖茨基金会资助,将在肺结核病防治中发挥重要作用,有望在未来几年内开发出能控制结核病疫情的新疫苗 (http://www.aeras.org)。但依然有很多不确定的因素,如动物研究中有效的候选疫苗在人体是否同样有效?所以,有必要进一步探索与人体保护效果有关的人体免疫参数或生物标记,然后用多参数分析复杂的免疫系统。对比分析结核病患者和纯化蛋白衍生物(purified protein derivative,PPD)阳性健康对照的免疫反应,同时动态、长时间监测处于潜伏期感染的个体免疫参数,尤其是发展为结核病和最终未发展为结核病的个体参数,可揭示免疫系统(包括固有免疫和获得性免疫)抗结核及控制潜伏感染的机制。这将使人们不仅更深入了解宿主针对结核分枝杆菌的免疫保护反应,还有助于研发更有效的疫苗。为能更好地控制结核病,不仅需要快速诊断和较短时间的化疗,更重要的是需要一种优于BCG或可强化BCG的疫苗即接触前疫苗,还需要针对结核分枝杆菌潜伏感染的治疗性疫苗。

[1] World Health Organization. World Health Organization Tuberculosis (TB). [Accessed April 17 2007] [EB/OL]. http://www.who.int/tb/en/.

[2] World Health Organization. XDR-TB, extensively drug-resistant tuberculosis [EB/Online]. http://www.who.int/tb/publications/mdr_surveillance/en/index.html.

[3] Small PM, Shafer RW, Hopewell PC, Singh SP, Murphy MJ, Desmond E, Sierra MF, Schoolnik GK. Exogenous reinfection with multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis in patients with advanced HIV infection [J]. N Engl J Med, 1993, 328(16): 1137-1144.

[4] Zhang Y. Persistent and dormant tubercle bacilli and latent tuberculosis [J]. Front Biosci, 2004, 9: 1136-1156.

[5] Collins HL, Kaufmann SH. Prospects for better tuberculosis vaccines [J]. Lancet Infect Dis, 2001, 1(1): 21-28.

[6] Dannenberg A. Pathogenesis of Human Pulmonary Tuberculosis: Insights from the Rabbit [M]. Washington DC: ASM Press, 2006.

[7] Schlesinger LS, Bellinger-Kawahara CG, Payne NR, Horwitz MA. Phagocytosis of Mycobacterium tuberculosis is mediated by human monocyte complement receptors and complement component C3 [J]. J Immunol, 1990, 144(7): 2771-2780.

[8] Ernst JD. Macrophage receptors for Mycobacterium tuberculosis [J]. Infect Immun, 1998, 66(4): 1277-1281.

[9] Vergne I, Chua J, Lee HH, Lucas M, Belisle J, Deretic V. Mechanism of phagolysosome biogenesis block by viable Mycobacterium tuberculosis [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2005, 102(11): 4033-4038.

[10] Walburger A, Koul A, Ferrari G, Nguyen L, Prescianotto-Baschong C, Huygen K, Klebl B, Thompson C, Bacher G, Pieters J. Protein kinase G from pathogenic mycobacteria promotes survival within macrophages [J]. Science, 2004, 304(5678): 1800-1804.

[11] Fratti RA, Chua J, Vergne I, Deretic V. Mycobacterium tuberculosis glycosylated phosphatidylinositol causes phagosome maturation arrest [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2003, 100(9): 5437-5442.

[12] Vergne I, Singh S, Roberts E, Kyei G, Master S, Harris J, de Haro S, Naylor J, Davis A, Delgado M, Deretic V. Autophagy in immune defense against Mycobacterium tuberculosis [J]. Autophagy, 2006, 2(3): 175-178.

[13] Singh SB, Davis AS, Taylor GA, Deretic V. Human IRGM induces autophagy to eliminate intracellular mycobacteria [J]. Science, 2006, 313(5792): 1438-1441.

[14] MacMicking JD, Taylor GA, McKinney JD. Immune control of tuberculosis by IFN-gamma-inducible LRG-47 [J]. Science, 2003, 302(5645): 654-659.

[15] Gutierrez MG, Master SS, Singh SB, Taylor GA, Colombo MI, Deretic V. Autophagy is a defense mechanism inhibiting BCG and Mycobacterium tuberculosis survival in infected macrophages [J]. Cell, 2004, 119(6): 753-766.

[16] Harris J, DeHaro SA, Master SS, Keane J, Roberts EA, Delgado M, Deretic V. T helper 2 cytokines inhibit autophagic control of intracellular Mycobacterium tuberculosis [J]. Immunity, 2007, 27(3): 505-517.

[17] Bhatt K, Salgame P. Host innate immune response to Mycobacterium tuberculosis [J]. J Clin Immunol, 2007, 27(4): 347-362.

[18] Liu PT, Stenger S, Li H, Wenzel L, Tan BH, Krutzik SR, Ochoa MT, Schauber J, Wu K, Meinken C, Kamen DL, Wagner M, Bals R, Steinmeyer A, Zugel U, Gallo RL, Eisenberg D, Hewison M, Hollis BW, Adams JS, Bloom BR, Modlin RL. Toll-like receptor triggering of a vitamin D-mediated human antimicrobial response [J]. Science, 2006, 311(5768): 1770-1773.

[19] Kaufmann SH, Baumann S, Nasser Eddine A. Exploiting immunology and molecular genetics for rational vaccine design against tuberculosis [J]. Int J Tuberc Lung Dis, 2006, 10(10): 1068-1079.

[20] Ribeiro-Rodrigues R, Resende Co T, Rojas R, Toossi Z, Dietze R, Boom WH, Maciel E, Hirsch CS. A role for CD4+CD25+T cells in regulation of the immune response during human tuberculosis [J]. Clin Exp Immunol, 2006, 144(1): 25-34.

[21] Hougardy JM, Place S, Hildebrand M, Drowart A, Debrie AS, Locht C, Mascart F. Regulatory T cells depress immune responses to protective antigens in active tuberculosis [J]. Am J Respir Crit Care Med, 2007, 176(4): 409-416.

[22] Rook GA. Th2 cytokines in susceptibility to tuberculosis [J]. Curr Mol Med, 2007, 7(3): 327-337.

[23] Garg A, Barnes PF, Roy S, Quiroga MF, Wu S, Garcia VE, Krutzik SR, Weis SE, Vankayalapati R. Mannose-capped lipoarabinomannan- and prostaglandin E2-dependent expansion of regulatory T cells in human Mycobacterium tuberculosis infection [J]. Eur J Immunol, 2008, 38(2): 459-469.

[24] Khader SA, Bell GK, Pearl JE, Fountain JJ, Rangel-Moreno J, Cilley GE, Shen F, Eaton SM, Gaffen SL, Swain SL, Locksley RM, Haynes L, Randall TD, Cooper AM. IL-23 and IL-17 in the establishment of protective pulmonary CD4+T cell responses after vaccination and during Mycobacterium tuberculosis challenge [J]. Nat Immunol, 2007, 8(4): 369-377.

[25] Cruz A, Khader SA, Torrado E, Fraga A, Pearl JE, Pedrosa J, Cooper AM, Castro AG. Cutting edge: IFN-gamma regulates the induction and expansion of IL-17-producing CD4 T cells during mycobacterial infection [J]. J Immunol, 2006, 177(3): 1416-1420.

[26] Skeiky YA, Sadoff JC. Advances in tuberculosis vaccine strategies [J]. Nat Rev Microbiol, 2006, 4(6): 469-476.

[27] Fine PE. Variation in protection by BCG: implications of and for heterologous immunity [J]. Lancet, 1995, 346(8986): 1339-1345.

[28] Tsenova L, Harbacheuski R, Sung N, Ellison E, Fallows D, Kaplan G. BCG vaccination confers poor protection against M. tuberculosis HN878-induced central nervous system disease [J]. Vaccine, 2007, 25(28): 5126-5132.

[29] Elias D, Britton S, Kassu A, Akuffo H. Chronic helminth infections may negatively influence immunity against tuberculosis and other diseases of public health importance [J]. Expert Rev Anti Infect Ther, 2007, 5(3): 475-484.

[30] Young D, Dye C. The development and impact of tuberculosis vaccines [J]. Cell, 2006, 124(4): 683-687.

[31] Williams A, Hatch GJ, Clark SO, Gooch KE, Hatch KA, Hall GA, Huygen K, Ottenhoff TH, Franken KL, Andersen P, Doherty TM, Kaufmann SH, Grode L, Seiler P, Martin C, Gicquel B, Cole ST, Brodin P, Pym AS, Dalemans W, Cohen J, Lobet Y, Goonetilleke N, McShane H, Hill A, Parish T, Smith D, Stoker NG, Lowrie DB, Kallenius G, Svenson S, Pawlowski A, Blake K, Marsh PD. Evaluation of vaccines in the EUTB Vaccine Cluster using a guinea pig aerosol infection model of tuberculosis [J]. Tuberculosis (Edinb), 2005, 85(1-2): 29-38.

[32] Grode L, Seiler P, Baumann S, Hess J, Brinkmann V, Nasser Eddine A, Man P, Goosmann C, Bandermann S, Smith D, Bancroft GJ, Reyrat JM, van Solingen D, Raupach B, Ksufmann SH. Increased vaccine efficacy against tuberculosis of recombinant Mycobacterium bovis bacille Calmette-Guerin mutants that secrete listeriolysin [J]. J Clin Invest, 2005, 115(9): 2472-2479.

[33] Sambandamurthy VK, Jacobs WR Jr. Live attenuated mutants of Mycobacterium tuberculosis as candidate vaccines against tuberculosis [J]. Microbes Infect, 2005, 7(5-6): 955-961.

[34] Asensio JA, Arbues A, Perez E, Gicquel B, Martin C. Live tuberculosis vaccines based on phoP mutants: a step towards clinical trials [J]. Expert Opin Biol Ther, 2008, 8(2): 201-211.

[35] Aguilar LD, Infante E, Bianco MV, Cataldi A, Bigi F, Pando RH. Immunogenicity and protection induced by Mycobacterium tuberculosis mce-2 and mce-3 mutants in a Balb/c mouse model of progressive pulmonary tuberculosis [J]. Vaccine, 2006, 24(13): 2333-2342.

[36] McShane H, Pathan AA, Sander CR, Goonetilleke NP, Fletcher HA, Hill AV. Boosting BCG with MVA85A: the first candidate subunit vaccine for tuberculosis in clinical trials [J]. Tuberculosis (Edinb), 2005, 85(1-2): 47-52.

[37] Xing Z, Santosuosso M, McCormick S, Yang TC, Millar J, Hitt M, Wan Y, Bramson J, Vordermeler HM. Recent advances in the development of adenovirus- and poxvirus-vectored tuberculosis vaccines [J]. Curr Gene Ther, 2005, 5(5): 485-492.

[38] Lowrie DB, Tascon RE, Bonato VL, Lima VM, Faccioli LH, Stavropoulos E, Colston MJ, Hewinson RG, Moelling K, Silva CL. Therapy of tuberculosis in mice by DNA vaccination [J]. Nature, 1999, 400(6741): 269-271.

[39] Beveridge NE, Price DA, Casazza JP, Pathan AA, Sander CR, Asher TE, Ambrozak DR, Precopio ML, Scheinberg P, Alder NC, Roederer M, Koup RA, Douek DC, Hill AV, McShane H. Immunisation with BCG and recombinant MVA85A induces long-lasting, polyfunctional Mycobacterium tuberculosis-specific CD4+memory T lymphocyte populations [J]. Eur J Immunol, 2007, 37(11): 3089-3100.

[40] Pollock JM, Andersen P. The potential of the ESAT-6 antigen secreted by virulent mycobacteria for specific diagnosis of tuberculosis [J]. J Infect Dis,1997, 175(5): 1251-1254.

[41] Rodrigues LC, Pereira SM, Cunha SS, Genser B, Ichihara MY, de Brito SC, Hijar MA, Dourado I, Cruz AA, Sant’Anna C, Bierrenbach AL, Barreto ML. Effect of BCG revaccination on incidence of tuberculosis in school-aged children in Brazil: the BCGREVAC cluster-randomised trial [J]. Lancet, 2005, 366(9493): 1290-1295.

[42] O’Hagan DT. MF59 is a safe and potent vaccine adjuvant that enhances protection against influenza virus infection [J]. Expert Rev Vaccines, 2007, 6(5): 699-710.

[43] Gluck R, Moser C, Metcalfe IC. Influenza virosomes as an efficient system for adjuvanted vaccine delivery [J]. Expert Opin Biol Ther, 2004, 4(7): 1139-1145.

[44] Agger EM, Rosenkrands I, Olsen AW, Hatch G, Williams A, Kritsch C, Lingnau K, von Gabain A, Andersen CS, Korsholm KS, Andersen P. Protective immunity to tuberculosis with Ag85B-ESAT-6 in a synthetic cationic adjuvant system IC31 [J]. Vaccine, 2006, 24(26): 5452-5460.

[45] Garcon N, Chomez P, van Mechelen M. GlaxoSmithKline adjuvant systems in vaccines: concepts, achievements and perspectives [J]. Expert Rev Vaccines, 2007, 6(5): 723-739.

[46] Agger EM, Rosenkrands I, Hansen J, Brahimi K, Vandahl BS, Aagaard C, Werninghaus K, Kirschning C, Lang R, Christensen D, Theisen M, Follman F, Andersen P. Cationic liposomes formulated with synthetic mycobacterial cordfactor (CAF01): a versatile adjuvant for vaccines with different immunological requirements [J].PLoS One, 2008, 3(9): e3116.

[47] Shi S, Hickey AJ. PLGA microparticles in respirable sizes enhance an in vitro T cell response to recombinant Mycobacterium tuberculosis antigen TB10.4-Ag85B [J]. Pharm Res, 2010, 27(2): 350-360.

[48] Kagina BM, Abel B, Scriba TJ, Hughes EJ, Keyser A, Soares A, Gamieldien H, Sidibana M, Hatherill M, Gelderbloem S, Mahomed H, Hawkridge A, Hussey G, Kaplan G, Hanekom WA. Specific T cell frequency and cytokine expression profile do not correlate with protection against tuberculosis after bacillus Calmette-Guérin vaccination of newborns [J].Am J Respir Crit Care Med, 2010, 182(8): 1073-1079.

[49] Dannenberg AM Jr. Perspectives on clinical and preclinical testing of new tuberculosis vaccines [J].Clin Microbiol Rev, 2010, 23(4): 781-794.

[50] Kremer K, van der Werf MJ, Au BK, Anh DD, Kam KM, van Doorn HR, Borgdorff MW, van Soolingen D. Vaccine-induced immunity circumvented by typical Mycobacterium tuberculosis Beijing strains [J]. Emerg Infect Dis, 2009, 15(2): 335-339.

[51] Palma C, Iona E, Giannoni F, Pardini M, Brunori L, Orefici G, Fattorini L, Cassone A. The Ag85B protein of Mycobacterium tuberculosis may turn a protective immune response induced by Ag85B DNA vaccine into a potent but non-protective Th1 immune response in mice [J]. Cell Microbiol, 2007, 9(6): 1455-1465.

[52] Romano M, Roupie V, Wang XM, Denis O, Jurion F, Adnet PY, Laali R, Huygen K. Immunogenicity and protective efficacy of tuberculosis DNA vaccines combining mycolyl-transferase Ag85A and phosphate transport receptor PstS-3 [J]. Immunology, 2006, 118(3): 321-332.

[53] Behar SM, Woodworth JS, Wu Y. Next generation: tuberculosis vaccines that elicit protective CD8+T cells [J]. Expert Rev Vaccines, 2007, 6(3): 441-456.

[54] Pym AS, Brodin P, Majlessi L, Brosch R, Demangel C, Williams A, Griffiths KE, Marchal G, Leclerc C, Cole ST. Recombinant BCG exporting ESAT-6 confers enhanced protection against tuberculosis [J]. Nat Med, 2003, 9(5): 533-539.

[55] Zheng H, Lu L, Wang B, Pu S, Zhang X, Zhu G, Shi W, Zhang L, Wang H, Wang S, Zhao G, Zhang Y. Genetic basis of virulence attenuation revealed by comparative genomic analysis of Mycobacterium tuberculosis strain H37Ra versus H37Rv [J]. PLoS One, 2008, 3(6): e2375.

[56] Voskuil MI, Schnappinger D, Visconti KC, Harrell MI, Dolganov GM, Sherman DR, Schoolnik GK. Inhibition of respiration by nitric oxide induces a Mycobacterium tuberculosis dormancy program [J]. J Exp Med, 2003, 198(5): 705-713.

[57] Andersen P. Vaccine strategies against latent tuberculosis infection [J]. Trends Microbiol, 2007, 15(1): 7-13.

[58] Lin MY, Ottenhoff TH. Not to wake a sleeping giant: new insights into host-pathogen interactions identify new targets for vaccination against latent Mycobacterium tuberculosis infection [J]. Biol Chem, 2008, 389(5): 497-511.

[59] Aagaard C, Hoang T, Dietrich J, Cardona PJ, Izzo A, Dolganov G, Schoolnik GK, Cassidy JP, Billeskov R, Andersen P. A multistage tuberculosis vaccine that confers efficient protection before and after exposure [J]. Nat Med, 2011,17(2):189-194.

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