于超,周小凤,吕志栋,毛艳,韩清昕,吴琍

(青岛大学附属医院乳腺中心,山东 青岛 266100)

目前,乳癌已成为全球女性癌症死亡的第二大原因[1],并占全球女性癌症病例总数的1/4[2]。在中国,乳癌的致死人数逐年增加,已成为导致45岁以下女性死亡的主要原因和发病率较高的女性疾病[3-5]。乳癌早期诊断不理想[6]。近几年研究发现,血清中可溶性人B7同源体3(sB7-H3)在多种癌症病人中异常高表达[7-9],并与肿瘤恶性进展和预后密切相关[10-11]。sB7-H3对于癌症诊断和预后评价可能有重要价值。本研究探讨乳癌病人血清中sB7-H3表达及其临床意义,为乳癌早期诊断提供依据。

1 资料和方法

1.1 对象与分组

2018年8月—2019年4月,选取我院收治乳癌病人106例作为研究对象(乳癌组),均为女性。纳入标准:①自愿参加本次研究;②病历及术后病理资料完整;③穿刺及术后病理诊断为浸润性乳癌。排除标准:①伴有其他恶性肿瘤、自身免疫系统疾病和炎症性疾病;②术前有新辅助治疗史;③近3个月有药物应用史。以同期来我院体检中心体检的健康者43例作为对照组,所有对象均为女性。乳癌组病人年龄25～76岁,平均(53.42±10.26)岁;对照组年龄为19～62岁,平均(44.53±11.28)岁。本文研究取得医院伦理委员会批准和病人知情同意,并签署知情同意书。

1.2 检测指标及方法

采集受检者清晨空腹静脉血5 mL,静置0.5 h后,以3 000 r/min离心5 min,取血清并将其保存于-80 ℃冰箱内备用。应用ELISA 法测定标本中sB7-H3表达,试剂盒购自江苏宝莱生物科技有限公司,操作参照说明书进行。

1.3 统计学方法

使用SPSS 21.0软件进行统计学分析,计量资料数据以表示,两组数据间比较采用t检验,多组数据间比较采用单因素方差分析。采用Med Calc 19.0.2软件绘制ROC 曲线。以P＜0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 两组血清sB7-H3表达比较

乳癌组、对照组血清sB7-H3 表达量分别为(26.27±4.21)、(19.44±4.91)μg/L,两组比较差异有显著性(t=8.530,P＜0.01)。

2.2 血清中sB7-H3表达筛选乳癌的最佳截断值

ROC曲线分析显示,曲线下面积为0.854(95%CI=0.787～0.907,P＜0.01);最佳诊断截断值为21.73μg/L,灵敏度为84.0%,特异度为76.7%,约登指数0.607。即以血清sB7-H3 水平21.73μg/L作为区分乳癌和健康人的筛选界值时,诊断价值最高。见图1。

图1 血清中sB7-H3表达诊断乳癌的ROC曲线

2.3 乳癌病人sB7-H3表达与临床病理参数的关系

p TNM 分期较高(Ⅲ期和Ⅳ期)的乳癌病人血清中sB7-H3表达高于分期较低乳癌病人(Ⅰ期和Ⅱ期),差异有统计学意义(t=-2.219,P＜0.05)。淋巴结有转移的病人血清sB7-H3明显高于无淋巴结转移病人,差异有统计学意义(t=-2.205,P＜0.05)。肿瘤浸润淋巴细胞(TILS)≤5%的病人sB7-H3表达高于TILS＞5%的病人,差异有统计学意义(t=2.067,P＜0.05)。而肿瘤大小、组织学分级、分子分型等病理特征与sB7-H3表达无关(P＞0.05)。见表1。

表1 乳癌病人血清sB7-H3表达与临床病理参数的关系(ρ/μg·L-1,)

表1 乳癌病人血清sB7-H3表达与临床病理参数的关系(ρ/μg·L-1,)

注:*p TNM 分期参照第8 版AJCC 乳癌TNM 分期方法;△Her-2(临界)的病人按Her-2阴性进行Luminal分型。

3 讨 论

近年来,人们致力于与肿瘤的诊断和预后评价具有较高临床相关性的血液生物标志物研究[12]。B7-H3为一种表达于人体各类免疫细胞膜上的Ⅰ型跨膜蛋白,愈来愈多研究证实其具有免疫相关作用[13]。对B7-H3 生物学功能的研究发现,B7-H3在调节T 细胞活化过程同时具有共刺激和共抑制作用[14-16];同时有研究显示,B7-H3 在特异性和非特异性免疫调节中均具有重要意义[17]。但B7-H3的作用机制仍不明确。有研究显示,B7-H3与T 细胞上的髓样细胞(TREM-)样转录物(TLT-2)分子上表达的受体结合可增强T 细胞增殖、细胞因子产生和细胞毒性[18]。但这一观点并没有被普遍接受。一些研究人员认为,T 细胞上可能有其他潜在受体[19-20]。B7-H3抑制T 细胞活化的相关机制尚需进一步研究。

有研究显示,B7-H3在人体体液中的可溶性形式sB7-H3能够与B7-H3受体结合。正常人血清,甚至人的成骨细胞和骨髓基质细胞的上清液和前列腺分泌物中均可检测到sB7-H3的表达[21-22],多种疾病病人体内检测到sB7-H3表达水平与健康人群不同[23]。对于sB7-H3的来源,绝大多数研究认为,其是通过基质金属蛋白酶(MMP)切割单核细胞、树突细胞、活化的T 细胞和肿瘤细胞细胞膜上的B7-H3而释放出来,其支持证据是MMP抑制剂能够增强B7-H3在细胞膜上的表达[21]。

关于sB7-H3的生物学功能,有研究认为在肿瘤的发生、发展中,外周血中的游离sB7-H3可以竞争性地与T 细胞表面上的B7-H3 受体结合,阻断B7-H3的T 细胞活化作用,从而具有与B7-H3相反的免疫调节功能[24-25]。CHEN 等[9]研究结果显示,剪切型sB7-H3能够抑制T 细胞增殖,减少细胞因子的分泌。而XIE 等[12]研究结果证明,sB7-H3通过TLR4/NF-κB途径促进胰腺癌细胞的侵袭和转移。提示sB7-H3可能与人体免疫调节有关,并可能在肿瘤发生、发展过程中发挥重要作用。

本研究结果显示,乳癌组血清sB7-H3 表达明显高于健康组,提示血清sB7-H3检测可作为乳癌筛选和辅助诊断的潜在标志物;同时对血清sB7-H3与临床病理参数的关系分析显示,血清中sB7-H3表达与乳癌病人p TNM 分期、是否有淋巴结转移以及TILS表达高低等有关,而与年龄、肿瘤大小及组织学分级等无关,sB7-H3高表达可能提示乳癌分期更高,预后更差。

大量研究认为,TILS 是人体对肿瘤抗原进行免疫反应的标志,其具有潜在预测乳癌病人预后的价值[26-27]。尤其在三阴性与Her-2 阳性乳癌病灶中TILS浸润程度较高,可能与这两种类型肿瘤的免疫原性相对较高有关[28]。值得注意的是,本研究结果显示,血清sB7-H3表达与乳癌组织中TILS水平有关,提示sB7-H3可能参与调节T 细胞对乳癌肿瘤细胞的免疫反应,并有可能抑制T 细胞活化,这与SUN 等[25]研究结果类似。此外有研究发现,MMP除可能参与切割mB7-H3产生sB7-H3,还介导组成肿瘤微环境的细胞外基质的降解,使乳癌组织间质中T 细胞穿透细胞外基质形成的屏障,促进其免疫活性[29],提示血清sB7-H3可能与肿瘤浸润微环境形成存在某种联系。其具体作用机制需要进一步研究。

综上所述,sB7-H3在乳癌病人中高表达,具有成为筛查乳癌血清标志物的良好前景;sB7-H3与乳癌病人术后病理参数存在密切相关性,提示其具有预测乳癌病人临床预后的潜力。sB7-H3可能通过抑制B7-H3对T 细胞的活化功能,促进肿瘤细胞的免疫逃逸,其具体机制尚需进一步研究证实。