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PGS/SF小口径人工血管性能研究及体外细胞共培养

2021-06-02刘月

保健文汇 2021年9期
关键词:共培养结晶人工

文/刘月

心血管疾病是世界上最普遍的疾病之一,脑血管、心血管和外周血管系统中血管直径大多数小于6 mm[1]。

PGS有良好弹性和热稳定性,回弹性在99.5%以上,但是PGS的力学性能较低,降解速率较慢[2-3],PGS到达一定温度后会发生固化,可以通过调节固化温度和固化时间来提高其力学性能。除此之外,还可以与其他材料复合来提高其机械性能。

本文是之前研究的延续,进一步优化了PGS/SF小口径人工血管的制备条件,并对其形貌及机械性能进行了表征,同时在PGS/SF样品膜上开展HUVECs和VSMCs体外细胞共培养实验。

1 实验

1.1 实验材料

聚癸二酸甘油酯(PGS),家蚕生丝,六氟异丙醇(C3H2F6O),聚环氧乙烷(PEO),胰蛋白酶(EDTA),HUVECs,VSMCs,DMEM高糖培养基,胎牛血清(FBS),双抗,二甲基亚砜(DMSO),二乙酸荧光素(FDA),戊二醛(C5H8O2)。

1.2 实验仪器

静电纺丝机(长沙纳仪仪器科技有限公司),CO2培养箱(上海一恒科学仪器有限公司),台式电镜(日立公司),全自动酶标仪(Bio-Tek公司),激光共聚焦显微镜(A1R-si,Confocal Microscope公司)。

1.3 实验方法

1.3.1 PGS热性能研究样品制备

1.3.1 .1 PGS预聚物的合成

将20.225 g癸二酸和9.209 g丙三醇加入到三颈烧瓶中,在三颈烧瓶中通入氮气并置于125℃油浴锅中加热搅拌2天后得到PGS预聚物。放入烧杯中冷却至室温,在4-8℃下密封保存备用。

1.3.1 .2 PGS固化方法

取适量的PGS放入真空干燥箱中,分别设置120、140、150、160℃对PGS预聚物进行固化,固化时间为24 h。用差示扫描量热仪(DSC)对PGS预聚物和固化后的PGS进行分析。

1.3.2 PGS/SF小口径人工血管的制备

称取0.63 g PGS预聚物和0.27 g SF膜放入带有磁力搅拌子的烧杯中,加入定量的六氟异丙醇(HFIP)配制质量分数为9%(w/w)的纺丝液。纺制膜及管状样品。静电纺丝参数为:电压为13.5 kV,接收距离为12 cm,流速为2 mL/h,转速500 rpm,固化温度为150℃。通过扫描电镜、动态表面张力仪观察PGS/SF小口径人工血管材料的微观形貌和吸湿性。通过万能材料试验机和定制的模具对固化后PGS/SF小口径人工血管材料进行径向拉伸测试。依据式(1-1)、式(1-2)计算PGS/SF小口径人工血管的断裂强度和断裂伸长率。

1.3.3 细胞培养及接种

将PGS/SF样品浸入到VEGF,在4℃冰箱中过夜。灭菌后将PGS/SF膜浸泡在培养基中并置于培养箱中过夜,细胞计数后将HUVECs稀释至5×104 cell/mL。吸取1 mL接种到24孔板中的PGS/SF膜上和爬片上;吸取200 μL接种到96孔板中的PGS/SF膜上和空白板上。

将VSMCs稀释至1×106 cell/mL。吸取100 μL接种到24孔板中的PGS/SF膜上和爬片上,3 h后,再加入900 μL培养基;吸取20 μL接种到96孔板中的PGS/SF膜上和空白样上,3 h后,再加入180 μL培养基。

1.3.4 HUVECs和VSMCs细胞共培养

先将HUVECs接种到PGS/SF膜上进行培养,1 d后将膜翻转朝下,用PGS/SF膜代替细胞小室中的Transwell膜,然后放入至12孔细胞小室和24孔细胞小室中,再在膜上接种VSMCs,3 h时后再在膜上加入培养基(细胞接种方式同(1.3.3),共培养时天数按照VSMCs的天数计算)。

1.3.5 统计学方法

采用SPSS软件对试验结果进行统计分析,用Origin作图。结果以平均值±标准差(SD)表示,采用方差分析和t检验计算数据的显著性差异。P<0.05时记为有显著差异(*),P<0.01时记为有极显著差异(**)。

2 实验结果与讨论

2.1 PGS DSC分析

随着PGS的固化和固化温度的升高,PGS的熔融温度和结晶温度逐渐降低,第二次升温的结晶温度低于第一次的结晶温度。这是因为随着固化温度的升高,PGS结晶逐渐转化为凝胶,该处的结晶峰主要是PGS中的凝胶部分引起的,PGS的结晶温度随着凝胶的量的增多而下降。在高温区域,即在75-105℃出现熔融峰,说明在高温区熔融峰在凝胶熔融曲线上仍部分存在[4]。

2.2 PGS/SF小口径人工血管性能研究

2.2.1 PGS/SF形貌分析

图1为不同固化温度下的PGS/SF小口径人工血管微观图像,从图中可以看出,材料中的纤维随机排列,随着温度的升高,纤维的孔隙逐渐减少。

2.2.2 接触角

120℃固化温度下的样品接触角为77.7°,具有亲水性。从130℃开始,材料表面的接触角开始大于90°,具有疏水性。由微观形貌分析可知,随着固化温度的升高,材料表面的孔隙逐渐减少。且PGS的亲水性不足,随着温度的升高,PGS熔融逐渐覆盖在SF纤维表面,导致材料表面的疏水性逐渐增强。

2.2.3 径向拉伸性能

将之前的制备工艺进行优化,即将静电纺丝后的小口径人工血管立即放入到真空干燥箱中,并提高其固化温度,其力学性能得到提升。如图3所示,随着固化温度的升高,断裂强度和断裂伸长率都有所提高,与之相反,杨氏模量随着固化温度的升高而降低。120℃和130℃固化后的PGS/SF小口径人工血管的断裂强度远远低于人内乳动脉断裂强度(3.1 MPa)[5],而140℃-160℃固化温度后小口径人工血管的断裂强度高于人内乳动脉断裂强度。通过以上研究表明PGS/SF小口径人工血管固化温度大于130℃能得到更好地力学性能。

从径向拉伸性能的研究中可以看出,固化温度为150℃的小口径人工血管的断裂强度略低于160℃,但是其断裂伸长率是高于160℃的,所以我们最终选择固化温度为150℃作为小口径人工血管的制备条件。

2.3 细胞共培养

2.3.1 扫描电镜观察细胞形态

HUVECs呈铺路石状黏附在PGS/SF材料上,HUVECs在2,4,8天的细胞数量随着培养天数的增加而增加,证明PGS/SF材料有利于HUVECs的黏附和增殖。

VSMCs在PGS/SF材料上呈长梭形,VSMCs在PGS/SF材料上的细胞数量随着培养天数的增加而增加,证明PGS/SF有利于VSMCs的黏附与增殖。从图4和图5中也可以看出,HUVECs和VSMCs能同时在PGS/SF材料上黏附和增殖,说明HUVECs和VSMCs能同时在材料上进行共培养。

2.3.2 MTT测试

HUVECs和VSMCs在PGS/SF材料上细胞数量随着培养天数的增加而增加,加载VEGF的PGS/SF材料上HUVECs的细胞数量多于未加载VEGF PGS/SF材料上的细胞数量,说明加载VEGF能促进HUVECs的黏附和增殖。

3 结论

(1)随着PGS的固化和固化温度的升高,PGS的熔融温度和结晶温度逐渐降低。

(2)PGS/SF小口径人工血管的疏水性随着固化温度的升高而逐渐增强。断裂强度和断裂伸长率随着固化温度的升高而呈上升趋势,杨氏模量随着固化温度的升高而逐渐降低。

(3)PGS/SF材料有利于HUVECs和VSMCs的黏附和增殖,加载VEGF能促进HUVECs的黏附和增殖,HUVECs和VSMCs能同时在PGS/SF膜上共培养。

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