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骨髓间充质干细胞及其外泌体干预自发性高血压大鼠降低脑卒中风险研究

2020-04-27刘珍君肖梦媛曾维凯余丽琴彭子健魏文燕陈建英

转化医学杂志 2020年2期
关键词:左心室收缩压生存率

刘珍君,王 波,肖梦媛,曾维凯,余 丽,余丽琴,彭子健,魏文燕,陈建英

高血压病是最常见的慢性病之一[1],2016年我国约有2.7亿高血压患者,部分患者并无症状,但可以发生心脑肾等器官损害,导致脑卒中、心肌梗死事件甚至死亡,且脑卒中有高发病率、高致残率的特点,约70%~80%患者因残疾丧失独立生活能力[2-3]。幸运的是,高血压是可以治疗的,降低患者血压水平,可明显减少脑卒中及心脏病事件,显著改善患者的生存质量,有效减轻疾病负担[4]。因此,针对高血压尤其是脑卒中的防治显得尤为重要。

自发性高血压大鼠(spontaneous hypertensive rats,SHR)是1963年日本Okamoto用Wistar京都种大鼠(WKY)通过选择性交配而培育出的品种,是目前国际公认的最接近于人原发性高血压的动物模型,是基础研究及药物筛选的首选[5-6]。前期研究发现间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)及其外泌体(MSCs-exosomes,MSCs-exo)可通过减轻肺血管重构从而达到减低肺动脉压力[7]。本研究通过骨髓间充质干细胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)及其外泌体(BMSCs-exosomes,BMSCs-exo)干预SHR动物模型,观察SHR血压、脑血流灌注量和脑卒中发生情况,探讨BMSCs及BMSCs-exo是否能减低SHR血压,降低脑卒中的发生率。

1 材料与方法

1.1 材料及仪器设备 α-MEM培养基(美国Gibco公司)、DMEM培养基(美国Gibco公司)、胎牛血清(美国Gibco公司)、BCA蛋白定量试剂盒(南京凯基生物科技发展有限公司)、台式超速冷冻离心机(日本HITACHI公司)、高速台式离心机(湖南赛特相仪离心机仪器有限公司)、FACS Calibur流式细胞仪(美国Becton-Dickinson公司)、ALC.V8型动物呼吸机激光多普勒血流灌注成像系统压力换能器(YP900型)(北京新航兴业科贸有限公司)、WinMDl2.9流式数据分析软件(美国WinRAR公司)、Medlab生理记录仪(南京美易)、透射电镜(型号JEM-1400,日本Olympus公司)、纹式血管钳、持针器、眼科剪、手术镊、眼科镊、组织剪、线剪、小型动物开胸器、小型拉钩。

1.2 BMSCs及BMSCs-exo提取、培养与鉴定 取4~5周龄SPF级SD大鼠,取出双侧股骨、胫骨及肱骨,采用胰酶消化法进行传代及全骨髓直接贴壁分离法进行BMSCs鉴定;取常规培养、生长良好的第3代大鼠BMSCs,收集BMSCs-exo,BCA法蛋白定量,电镜下形态鉴定,流式细胞术表型鉴定,技术方法详见参考文献[7]。

1.3 实验动物选取及分组 选用雄性12周龄的SHR 36只,按照随机原则分为3组:BMSCs-exo组、BMSCs组和NaCl组,每组各SHR 12只,进行不同的干预。BMSCs-exo组大鼠通过尾静脉注射30 μg/μL的BMSCs-exo进行干预处理(BCA蛋白定量方法测定其浓度),隔日1次,共注射7次;BMSCs组通过尾静脉注射BMSCs(1×106)干预处理,共1次;NaCl组(阳性对照组)大鼠尾静脉注射生理盐水20 μL/kg进行干预,共1次。选用雄性12周龄的SD大鼠12只,为Nor组(阴性对照组),尾静脉注射生理盐水20 μL/kg进行干预,共1次。

1.4 各组大鼠生活习性观察及脑血流灌注量检测 ①体重测量:各组大鼠每隔1周1次用天平进行称量并记录。②外周血压测量:各组大鼠每周测量2次外周尾动脉血压,将大鼠固定于血压测量固定装置中,尾部外露,测定大鼠尾部动脉收缩压5次,以每次血压相差不超过5 mmHg为准,血压取3次测定平均值,记录各组大鼠的外周动脉压力曲线。③生活习性和脑卒中临床评分:每天喂食水时观察各组大鼠的生活习性有无改变,采用脑卒中临床表现评分:1分为活动少,运动量轻度减少或轻度兴奋;2分为活动很少,运动量明显减少或激惹亢奋;3分为俯卧不动,不能行走,忧郁性症状;4分为瘫痪,不能站立,任何1侧或双侧肢体麻痹。④脑血流灌注量指标检测:在各组大鼠干预的第4~6周,采用多普勒血流测量仪对各组大鼠急性脑血流灌注量进行检测,记录图像及数值。并通过左心室穿刺法,由Medlab生理测量仪测定各组大鼠左心室压力,收集图像并记录数值。

2 结果

2.1 BMSCs的形态学观察 原代培养的BMSCs第3天形态不均一,呈类圆形或椭圆形(图1A);细胞培养至第3代时,为均一的纺锤形成纤维细胞样,排列稍紧密,呈辐辏样、漩涡状集落排列生长(图1B)。对第3代BMSCs进行成骨、成脂诱导分化鉴定,BMSCs经成骨诱导及茜素红染色后,在细胞外基质可见橘红色钙结节沉积形成(图1C),BMSCs经成脂诱导及油红O染色后,在细胞胞浆内可见有红色脂肪液滴形成(图1D)。

2.2 BMSCs-exo的鉴定 透射电镜观察:随机视野下看到提取物直径分布范围集中在30~150 nm,呈囊体结构,形态近似球形或椭球形,大小均一(图2)。纳米示踪分析:取适量提取物稀释至1mL加入样品池,在显示器上观察,样品池内粒子成布朗运动,波峰分布在150 nm左右(图3)。

图3 纳米示踪分析下BMSCs-exo直径波峰图

2.3 流式细胞仪检测BMSCs-exo的表面抗原 经WinMDI 2.9软件对结果进行分析,外泌体BMSCs-exo特异性分子CD63、CD81均为阳性表达(图4)。

图4 BMSCs-exo流式细胞仪鉴定结果图

2.4 各组大鼠尾动脉收缩压测定结果 干预的第6周对各组大鼠进行尾动脉收缩压测定,可通过Medlab生理记录仪器获得大鼠尾动脉收缩压值(图5)。大鼠尾动脉收缩压较正常组(Nor组)显著升高(P<0.001),BMSCS组和BMSCs-exo组尾动脉收缩压较NaCl组降低,仍高于Nor组,差异比较具有统计学意义(P<0.05),但BMSCs-exo组与BMSCs组之间尾动脉收缩压差异比较无统计学意义(P>0.05)(图6)。

图5 各组大鼠尾动脉收缩压图像

注:与NaCl组比较,*P<0.05;与Nor组比较,#P<0.001,△P<0.05,▲P<0.01图6 各组大鼠尾动脉收缩压比较

2.5 各组SHR生存率及脑卒中临床评分 各组大鼠生存率结果:在SHR进行不同组别的干预后第6周,NaCl组大鼠死亡3只,生存率75%(9/12),BMSCs-exo组死亡3只,生存率75%(9/12), BMSCs组死亡2只,生存率83.3%(10/12),SD大鼠没有死亡,生存率为100%(12/12)。

生活习性及卒中评分结果:1分比率:NaCl组25.0%,BMSCs组50.0%,BMSCs-exo组33.3%;2分比率:NaCl组25.0%,BMSCs组16.7%,BMSCs-exo组25.0%;3分比率:NaCl组33.3%,BMSCs组25.0%,BMSCs-exo组25%;4分比率:NaCl组16.7%,BMSCs组8.3%,BMSCs-exo组16.7%。与NaCl组大鼠比较,BMSCs和BMSCs-exo组大鼠1分占比较高,尤其是BMSCs组;4分的占比BMSCs组较低。

2.6 各组大鼠脑血流灌注量测定结果 对各组大鼠进行腹腔麻醉并去除大鼠头颅皮肤以及脂肪组织后,采用激光多普勒血流测定仪器对大鼠脑血流灌注量进行检测(图7),并利用Image-Pro-Plus图像分析软件进行脑血流灌注量数值统计分析。在对SHR模型干预的第6周,NaCl组大鼠脑血流灌注较Nor组大鼠显著下降(P<0.001),BMSCs组和BMSCs-exo组较NaCl组脑血流灌注量升高(P<0.05),但2组间差异比较无统计学意义(P>0.05)(图8)。

图7 各组大鼠脑血流灌注测量图像

注:与NaCl组比较,*P<0.05;与Nor组比较,#P<0.001,△P<0.05图8 各组大鼠脑血流灌注量比较

2.7 各组大鼠左心室平均压力测定结果 通过开胸行左心室穿刺法对各组大鼠进行左心室压力测定,通过Medlab生理记录仪器以及大鼠心功能测量仪获得大鼠左心室压力平均值(图9)。在干预第6周,NaCl组大鼠左心室平均压力显著高于Nor组(P<0.001),BMSCs组和BMSCs-exo组左心室压力均较NaCl组左心室压力降低(P<0.05),仍高于Nor组(P<0.05),但BMSCs组与BMSCs-exo组之间差异比较无统计学意义(P>0.05)(图10)。

图9 各组大鼠左心室压力图像

注:与NaCl组比较,*P<0.05;与Nor组比较,#P<0.001,△P<0.05图10 各组大鼠左心室压力比较

3 讨论

BMSCs是一类具有多向分化潜能的成体多能干细胞,已有研究证实BMSCs移植在心肌梗死、肺动脉高压、肾损伤及脑缺血等发挥一定的作用,并能不同程度修复受损器官功能[8]。据报道BMSCs能分泌促进血管神经生成的生存因子[9],脑缺血动物模型显示干细胞分泌可减少脑损伤和促进神经恢复[10]。研究发现miRNA的细胞间通讯通过外泌体,小的脂质微泡,显示可促进脑的修复[11]。BMSCs-exo表面表达大量的生物活性物质、膜锚定受体、粘附分子、细胞表面特异抗原等,参与调控重要的细胞生理活动,在细胞凋亡、血管生成、炎症反应过程中的作用均有报道,改善脑卒中的神经损伤和神经保护作用,与增强血管神经的生成有关[12]。BMSCs在干细胞治疗应用中存在细胞多向分化以及致瘤性等特点,而BMSCs-exo无以上风险,更具备临床转化优势。研究表明[13],BMSCs-exo可通过功能性血管紧张素Ⅱ1型受体调节血压[14],也可通过自身含有并表达的miRNA调节血压[15]。

BMSCs及BMSCs-exo可显著改善缺血性脑卒中的神经功能缺损、运动功能及日常生活能力,不良反应少[7],但极少用于脑卒中的预防研究。本研究通过对SHR尾静脉注射BMSCs和BMSCs-exo进行早期干预,得出的实验结果为大鼠的脑卒中临床评分为1分占比BMSCs-exo组和BMSCs组明显高于NaCl组,4分组BMSCs较NaCl组降低,而且各组大鼠生存率比较以BMSCs组最低,提示BMSCs和BMSCs-exo进行早期干预SHR能一定程度改善大鼠的活动能力。进一步观察各组大鼠尾动脉收缩压发现,NaCl组血压最高,BMSCs-exo组和BMSCs组干预后平均动脉压有一定程度的下降,尚未降低正常大鼠水平。而且NaCl组大鼠相比较,监测BMSCs-exo组与BMSCs组2组大鼠有创的左心室压力均有一定程度的下降,且脑血流灌注量升高,提示BMSCs及BMSCs-exo干预均降低SHR外周血管压力及左心室压力等,可改善SHR脑血流灌注量,进一步提示大鼠的生活能力的改善可能与大鼠外周血压的降低有关,可降低SHR脑卒中的发生风险和致残率。

在本研究中证实,BMSCs及BMSCs-exo干预SHR后,不仅可明显降低动脉压力,可改善脑灌注量,减低脑卒中的风险和发生机率,并且可降低左心室压力,减轻心脏负荷,降低心功能不全的风险,对高血压所致的心脑血管损害具有显著的预防作用。其机制可能是通过抑制肾素-血管紧张素-醛固酮系统,并调控相关细胞因子生成等,尚有待进一步的研究去证实和完善。

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