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α-半乳糖苷酶及其在饲料中的应用

2019-04-27陈国参王佰涛徐文涛王一雯李寒冰刘德海

中国饲料 2019年7期
关键词:酶制剂残基半乳糖

陈国参, 王佰涛, 徐文涛, 王一雯, 李寒冰, 刘德海

(1.河南省科学院生物研究所,河南郑州 450008;2.河南省工业酶工程技术研究中心,河南郑州450008)

α-半乳糖苷酶,又叫蜜二糖酶(α-galactosidase,EC 3.2.1.22),可以催化不同半乳糖苷底物去除 α-1,6-连接的半乳糖残基(Naumov 等,2004)。大豆和其他豆类作为饲料当中丰富的蛋白质来源,其中含有高浓度的可溶性低聚糖如棉子糖和水苏糖等,其在动物胃肠道中不能被彻底消化,这些未消化完全的糖进入动物肠道后会促进有害菌群的增长,引起胀气和胃肠道紊乱,严重损害动物的健康,降低动物饲料的饲用效率。因此,在动物饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂可以将这些多余的糖彻底清除,抑制其在肠道中发酵,减轻动物胃肠道胀气症状,避免有害致病菌对动物肠道的损害,提高动物的免疫力,增加动物肠道对营养物质的吸收,提高饲料利用率(Ghazi等,2009)。

1 α-半乳糖苷酶的来源与分类

α-半乳糖苷酶在自然界中广泛存在,尤其在细菌、真菌、酵母菌等微生物中分布最广。α-半乳糖苷酶的细菌来源有嗜热芽孢杆菌 (Gote等,2006)、嗜酸乳酸杆菌(Fredslund 等,2011)、发酵乳杆菌 (Carrerasilva等,2006)、青春双歧杆菌(Kim 等,1999)、短双歧杆菌(Xiao 等,2000)等。另外从极端嗜热菌杜氏杆菌及海洋细菌假交替单胞菌也分离得到α-半乳糖苷酶 (Gomes等,2000)。据报道丝状放线菌当中也含有α-半乳糖苷酶,例如从重红色链丝菌和红色糖多孢菌中可分离得到α-半乳糖苷酶 (Post等,2005;Elshafei等,2001)。Brouns等(2006)从高酸度陆地火山地区发现的超嗜热古生菌硫磺矿硫化叶菌P2也可分离纯化得到α-半乳糖苷酶,这种α-半乳糖苷酶具有极高的热稳定性。此外,在真菌中,米曲霉(Shankar等,2007)、烟曲霉(Gurkok 等,2011)、藤仓赤霉(Mulimani等,1995)、简青霉(Luonteri等,1998)、嗜热棉毛菌(Puchart等,2000)及少孢根霉(Han 等,2003)均可作为α-半乳糖苷酶的来源。Wang(2014)等从费希新萨托菌中分离得到一种α-半乳糖苷酶,研究结果表明,其对豆制品具有高度专一的水解活性。

糖苷水解酶根据其氨基酸序列相似性,可将其分成135个家族,即GH-1~GH-135,α-半乳糖苷酶主要归属于其中五个糖苷水解酶 (GH)家族:GH-4、GH-27、GH-36、GH-57 和 GH-97。 其中GH-4家族酶和GH-57家族酶中α-半乳糖苷酶较少,一共只有八种酶具有α-半乳糖苷酶活性,且细菌来源居多。目前大多数已知的α-半乳糖苷酶都属于GH-27家族和GH-36家族。GH-27家族的α-半乳糖苷酶多来自于真核生物,例如:黑曲霉(Vries等,1999);GH-36 家族酶多来自于原核生物,例如:嗜热脂肪芽孢杆菌(Fridjonsson等,1999)和嗜热栖热菌 (Fridjonsson等,2001)。同一种有机体中也可以包含GH-27家族和GH-36家族的α-半乳糖苷酶,例如:浅灰白链霉菌同时含有来自GH-27家族和GH-36家族的多种 α-半乳糖苷酶(Gherardini等,1985)。目前报道的GH-97家族中α-半乳糖苷酶非常少,其中多形拟杆菌来源的α-半乳糖苷酶对钙离子具有高度依赖性(Okuyama等,2014)。

2 α-半乳糖苷酶的酶学特性

2.1 温度及pH对酶活性的影响 不同家族的α-半乳糖苷酶其分子量、最适pH及最适温度等差异较大。大多数α-半乳糖苷酶的分子量为45~400 ku,以单聚体或多聚体形式存在。大多数细菌α-半乳糖苷酶最适pH为6.0~7.5(Gherardini等,1985),真菌和酵母菌α-半乳糖苷酶最适pH为 3.5~5.5(Ulezlo等,1982)。 例如:链霉菌属 sp.S27来源的 α-半乳糖苷酶最适 pH为 7.4(Cao等,2010),费希新萨托菌来源的α-半乳糖苷酶最适 pH 为 4.5(Wang等,2014);疏棉状嗜热丝孢菌来源的α-半乳糖苷酶最适pH为4.6~4.8,在pH 4.0~7.0 酶活性稳定(Svastits等,2009);毕赤酵母菌来源的α-半乳糖苷酶最适pH为5.5,在pH 5.5~9.5酶活性稳定(Chen等,2015)。由于制糖过程中生产温度较高,要求一些α-半乳糖苷酶在较高温度下能够保持良好的稳定性及活性(Gherardini等,1985)。 例如:米赫根毛霉来源的α-半乳糖苷酶最适温度高达 55℃(Chen等,2015),疏棉状嗜热丝孢菌来源的α-半乳糖苷酶能够在温度60~66℃达到最优催化活性,在70℃能保持酶的稳定性(Svastits等,2009)。

2.2 金属离子和糖对酶活性的影响 众所周知,许多化学物质都会对α-半乳糖苷酶的活性造成影响。 例如:Hg2+、Ag+、Cu2+等阳离子对 α-半乳糖苷酶的活性具有显著的抑制效应,主要是因为其可与酶活性中心组氨酸上的氨基、羧基、巯基等基团发生反应(Gote等,2006)。一些研究报道表明,Mn2+、Mg2+、K+等能够对 α-半乳糖苷酶的活性产生活化效应,而大多数其他金属阳离子对α-半乳糖苷酶的活性没有影响或有抑制效应(Rezessyszab等,2007)。 Svastits等(2009)研究表明,从嗜热真菌中提取纯化的α-半乳糖苷酶能够被 Mn2+、Mg2+、K+显著活化,而 Hg2+、Ag+、Ca2+对其有显著的抑制效应。此外,α-半乳糖苷酶的活性还会受到一些糖及糖衍生物的影响,Gote等(2006)研究表明,当采用对硝基苯基-α-D-半乳糖苷作为反应底物时,半乳糖、蜜二糖、棉子糖及水苏糖都会对α-半乳糖苷酶的催化活性产生抑制作用,可能是因为这些化合物的半乳糖残基和对硝基苯基-α-D-半乳糖苷的半乳糖残基结构相似,因此可能会竞争酶的活性位点。Suzuki等(1970)报道,从葡酒色被孢霉中提取的α-半乳糖苷酶能够被D-葡萄糖非竞争性抑制,而Zapater等(1990)报道,从无花果曲霉中提取的α-半乳糖苷酶能够被甘露糖反竞争性抑制。

3 α-半乳糖苷酶的结构及催化特点

α-半乳糖苷酶主要由三个结构域组成,即N-端结构域、C-端结构域及催化结构域。不同GH家族来源的α-半乳糖苷酶结构有所不同,而α-半乳糖苷酶催化作用与酶的结构密切相关,不同糖苷酶家族的α-半乳糖苷酶催化特点不同。

GH-4家族酶包括三个保守残基,即酪氨酸残基、半胱氨酸残基和组氨酸残基,其在催化反应中可以螯合金属离子,半胱氨酸残基大多通过去质子化活化催化酶。GH-4家族糖苷酶属于构型保持酶,作为GH家族中一种特殊的水解酶,是唯一需要Mn2+等二价金属离子及NAD+同时作为辅助因子来参与催化反应的酶。此外,一些GH-4家族糖苷酶还需要还原剂二巯基苏糖醇及β-巯基乙醇的参与(Suresh 等,2002;Thompson 等,1998)。

GH-27家族酶和GH-36家族酶包含了已知的大多数α-半乳糖苷酶,且两个家族结构相近,二者的催化中心都是(β/α)8桶状结构,C-端结构域由β折叠股组成。GH-36家族酶与GH-27家族酶拥有相近的催化亲核体和质子供体,二者α-半乳糖苷酶的氨基酸序列中都存在保守序列 [LIVMFY]-x(2)-[LIVMFY]-x-[LIVM]-D-D-x-[WY],并且发现其在GH-36家族的半乳糖苷酶中部附近,而GH-27家族则在氨基端附近(Fridjonsson 等,1999)。 D-D-x-[WY]是半乳糖苷酶的标志物,其中D是催化中心部分,起酸碱催化作用。Fujimoto等(2003)报道,通过多重同晶置换的方法在分辨率1.5 A条件下确定了GH-27家族大米α-半乳糖苷酶晶体结构模型。其主要包括N-端催化结构域及C-端结构域,N-端催化结构域构成了一个 (β/α)8桶状结构 (TIM桶状结构),C-端结构域由含有希腊钥匙关键基序的八个β折叠股(β夹层折叠)组成。

GH-57家族酶只包含极少数α-半乳糖苷酶,与GH-27及GH-36家族酶不同的是其对蜜二糖和水苏糖的水解能力较弱 (Lieshout等,2009)。GH-97家族酶包含两种构型的酶,即构型翻转酶α-葡萄糖苷酶(BtGH97a)及构型保持酶α-半乳糖苷酶(BtGH97b)(Okuyama 等,2009)。对BtGH97b的晶体结构分析和定点诱变研究结果表明,其结构包括N-端结构域、C-端结构域及催化中心,其中Asp415作为亲核催化剂,催化中心的Ca2+对于酶的催化作用十分关键 (Okuyama等,2014),其充当了路易斯酸的角色。Tracey等(2008)通过与EDTA孵育,发现孵育之后酶的活性大大降低,验证了GH-97家族α-半乳糖苷酶(BtGH97b)对于Ca2+的依赖性。

4 α-半乳糖苷酶的作用机理及应用

4.1 α-半乳糖苷的抗营养机理 如表1所示,不同植物种子中都含有不同含量的α-半乳糖苷,其中大豆和棉籽粕当中总α-半乳糖苷量最高,含量为5%~9%(Kuo等,1988)。 而这些α-半乳糖苷类进入肠道后,经过微生物发酵,转化成挥发性脂肪酸,能够产生二氧化碳和甲烷等气体,引起动物胃肠道胀气,使得动物进食减少,降低动物的生长速度。并且这些未消化的食物还会增加肠道食糜的渗透压,加快肠道对食糜的排空速度,从而降低动物对能量和蛋白质的摄取效率,对动物的生长产生负面影响。

4.2 α-半乳糖苷酶的作用机理 添加α-半乳糖苷酶后,可以加速降解α-半乳糖苷等抗营养因子,防止肠道微生物过度发酵,产生有害气体。同时α-半乳糖苷酶对糖苷的降解也能够防止致病菌在动物肠道上聚集,抑制有害致病菌对动物肠道的损害,提高动物的免疫力,避免在饲料当中使用抗生素。马慧慧等(2013)研究报道,在肉鸡饲料中添加α-半乳糖苷酶后,检测其血液生化指标及微生物菌群数量,结果发现肉鸡白蛋白含量显著升高,肠道有害菌群数量下降,有益菌群数量上升;此外,α-半乳糖苷酶可以破坏植物细胞细胞壁的完整性,促进细胞内蛋白质、淀粉等营养物质的释放,增加动物肠道对营养物质的吸收,提高饲料的利用效率。细胞壁作为植物细胞的重要组成部分,能够保持细胞内外的渗透压,而α-半乳糖苷酶可以破坏细胞壁降低动物肠道渗透压,避免水分在肠道滞留时间过长,减弱肠道内食糜的蠕动,促进营养物质的吸收。因此,通过在动物饲料中添加α-半乳糖苷酶能够促进动物对饲料更好的吸收利用。

表1 不同植物干种子中α-半乳糖苷的含量%

4.3 α-半乳糖苷酶在饲料中的应用 大豆在豆类当中营养价值最高,粗蛋白质含量高达30%~50%,大豆当中所含营养成分能够满足家禽和家畜对营养的需求。但是因大豆当中含有抗营养因子即糖苷类物质,造成大豆的利用率较低。研究表明,可以通过热乙醇提取法将这些糖苷类化合物从大豆当中提取出来,但是在提取过程中会破坏其中的氨基酸和免疫原性蛋白 (Coon等,1990),从而降低家禽和家畜的免疫力。因此在饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂,糖苷类物质可以被内源性消化酶所降解,避免动物胃肠道不良反应,提升大豆的蛋白质生物利用度。

Baucells等(2016)在生长猪和肥育猪的饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂,研究结果表明,与对照组相比试验组生长猪和肥育猪的体重明显增加,各项指标明显提升。Ghazi等(2003)在肉鸡大豆饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂,结果表明,肉鸡对大豆饲料的消化效率提高,增加了大豆饲料的营养价值。蒋小丰等(2009)通过向约克纯种断奶仔猪的玉米大豆饲料中添加不同剂量的α-半乳糖苷酶制剂,分析其对断奶仔猪生产性能的影响,发现与对照组相比,加酶组仔猪生产性能和生化指标均有明显改善,对蛋白质利用率显著提高,同时增加了对粗纤维、粗蛋白质、粗脂肪的表观消化率。戴求仲等(2010)在饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂研究其对黄羽肉鸡生产性能的影响,结果表明,添加酶制剂后可以降解饲料中的α-半乳糖苷,改变肠道底物组成,促进有益菌的生长,抑制有害菌的生长,改善肉鸡生长状况,能够明显降低肉鸡后期和全期料重比,改善试验鸡生产性能。缪志军等(2010)在饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂研究其对番鸭增重和生产性能的影响,结果表明,其能够提高番鸭增重,改善生产性能。

5 结语与展望

α-半乳糖苷酶作为一种糖苷水解酶,在生产生活中应用广泛,尤其是在饲料领域应用前景较好,通过在动物饲料中添加α-半乳糖苷酶制剂,对动物饲料中存在的半乳糖苷等抗营养因子进行降解,可以改善动物胃肠道不良反应,促进动物对饲料中营养物质的利用效率,提高饲料的营养价值。但是α-半乳糖苷酶提取纯化工艺较复杂,热稳定性和酶活性不高,限制了其在生产中的应用,目前通过基因工程技术可以构建新型产α-半乳糖苷酶的工程菌,能够完成高效高活性生产α-半乳糖苷酶的任务,为该酶的开发利用打下坚实的基础,因此,α-半乳糖苷酶的开发潜力不容忽视。

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