李晓姣，赵圣国，郑楠，程建波，王加启



细菌脲酶蛋白复合物及其活化机制

李晓姣1,2,3，赵圣国1,2，郑楠1,2，程建波3，王加启1,2

1 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 动物营养学国家重点实验室，北京 100193 2 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 农业农村部奶产品质量安全风险评估实验室，北京 100193 3 安徽农业大学 动物科技学院，安徽 合肥 230036

脲酶能够催化尿素分解生成氨，在农业和医学领域中具有重要的意义。细菌脲酶蛋白包括结构蛋白 (UreA、UreB和UreC) 和辅助蛋白 (UreD/UreH、UreE、UreF和UreG)，它们在脲酶活化过程中各自具有独特的作用，结构蛋白形成脲酶活性中心，而辅助蛋白主要负责镍离子的传递。文中综述了细菌脲酶蛋白复合物的结构和功能，以及各蛋白之间如何相互作用完成其活化过程，以期为脲酶活性调控研究及脲酶抑制剂开发等提供理论指导。

细菌脲酶，结构蛋白，辅助蛋白，活化机制

脲酶 (尿素酶，EC 3.5.1.5) 广泛存在于植物、动物、细菌、真菌和人体中，可以催化尿素水解形成氨和碳酸氢盐[1]。尿素在自然界中大量存在，是生命过程主要的代谢物之一，通常情况下，尿素非常稳定，极难水解。脲酶存在情况下，尿素的水解速率是无催化反应速率的1014倍。脲酶的主要作用是将尿素变成可供有机体使用的氮源，在自然界氮的新陈代谢过程中扮演着关键性的角色。

植物脲酶的主要作用是催化被植物体吸收的尿素的水解，使其作为可供吸收的氮源参与植物的生命过程，还可以参与植物防御系统中蛋白氮的转运通路，履行对植物病原体的防御功能。在反刍动物生产中，饲喂尿素可以节约蛋白质资源，降低饲料成本，尿素在瘤胃内被瘤胃壁和瘤胃内容物中主要来自于链球菌属、埃希氏菌属、乳酸杆菌属等的微生物分解并释放氨[2]，氨与酮酸结合被用于合成微生物蛋白，为机体提供优质氮源[3-4]。尽管脲酶的存在有着积极的意义，但也会造成不利影响。尿素水解过快会造成氨的非生产性挥发，当氨超出瘤胃微生物的利用能力，则易导致动物氨中毒[5]。此外，幽门螺杆菌、结核分枝杆菌、奇异变形杆菌等细菌脲酶与人和动物的许多发病机制相关，如幽门螺杆菌水解尿素产生的氨可以毒害胃粘膜的上皮细胞，因此医学上通常使用脲酶活性测试实验来确诊幽门螺杆菌的感染。

由于脲酶独特的生物学功能，其相关研究一直受到广泛关注，包括不同来源脲酶的蛋白质晶体结构及活化机制、脲酶的催化水解机理、脲酶抑制剂的研发应用等。脲酶的活性是影响尿素分解的主要因素，具有活性的脲酶属于蛋白复合物，其活化需要各蛋白 (结构蛋白UreABC、辅助蛋白UreD/UreH、UreE、UreF和UreG等) 相互配合共同发挥作用将Ni2+传递至脲酶活性中心。此外，脲酶的活化还需要二氧化碳和GTP等的共同参与。文中重点介绍细菌脲酶蛋白质的结构特性、促进脲酶金属中心组装的相关辅助蛋白的功能以及脲酶蛋白的活化路径，以期为调控脲酶活性提供理论指导。

1 细菌脲酶基因簇结构

不同细菌来源的脲酶基因簇的结构有所不同，它们在基因的数量和顺序上存在差异，包含结构基因 (、和)、辅助基因 (、、、、和等) 和调节基因 (等)[6]。如图1，编码产气克雷伯氏菌脲酶的3个结构基因 () 的侧翼是编码辅助蛋白的4个基因 (位于上游，、和位于下游)。豆科根瘤菌的脲酶基因顺序与产气克雷伯氏菌相同，但有几个未被注释的开放阅读框 (ORF) 插入其中[7]。除此之外，许多细菌位于之后，如嗜热性芽孢杆菌sp. TB-90[8]。在胸膜肺炎放线杆菌中，簇前面含有编码镍转运 (、、、、) 和尿素转运的基因 ()[9]。幽门螺杆菌脲酶基因簇由、以及5个下游基因、、、和(与其他细菌的同源) 组成。还有一些微生物具有独特的脲酶基因，如幽门螺杆菌除了含有完整的脲酶基因簇以外还具有第二组结构基因[10]。枯草芽孢杆菌缺乏可识别的辅助蛋白基因[11]，这表明辅助蛋白不是体内脲酶活化的必需因素。

图1 细菌脲酶的基因簇组成[12]

2 细菌脲酶蛋白及其复合物

细菌脲酶蛋白包括结构蛋白和辅助蛋白。由结构基因、和编码的γ、β和α亚基所形成的三聚体结构为脱辅基脲酶 (Apourease)，不具有脲酶活性。大多数细菌脲酶的活化需要至少4种辅助蛋白UreD/UreH、UreF、UreG和UreE的协助，分别由辅助基因/、、和编码。此外，一些细菌在脲酶基因簇内还包含有其他辅助基因，这些辅助基因编码的蛋白质可能具有ATP结合、尿素转运、镍离子转运等功能，如HypA、HypB和UreI等。

2.1 结构蛋白

虽然不同来源的脲酶亚基数目、单体结构均有不同，但这些单体通常具有保守的氨基酸序列 (相似性超过50%)[12]。单体的活性区域均位于α亚基，每个亚基含有被氨基甲酰化赖氨酸桥接的双核镍离子活性位点[13-14]。细菌脲酶通常由编码的α亚基 (分子量在60–76 kDa)、编码的β亚基 (分子量8–21 kDa) 和编码的γ亚基 (分子量6–14 kDa) 组成 (αβγ)3三聚体结构，如产气克雷伯氏菌脲酶 (图2A) 和巴氏芽孢杆菌脲酶。幽门螺杆菌脲酶的单体α亚基 (编码) 和β亚基 (编码) 组成 ( (αβ)3)4杂聚体结构 (图2B)，其UreA与产气克雷伯氏菌的UreA-UreB融合体同源，UreB与产气克雷伯氏菌的UreC同源。

2.2 辅助蛋白

2.2.1 UreD/UreH

在大肠杆菌中外源表达产生的UreD/UreH是不溶的，与麦芽糖结合蛋白融合时 (MBP-UreD)，产气克雷伯氏菌的UreD是可溶的，并结合2当量的镍离子[14]。在脲酶金属中心组装的过程中，UreD/UreH可能作为募集其他辅助蛋白的支架和镍插入活性部位的直接促进剂，但其具体的镍转移方式仍不清楚。目前对于UreD的镍转移方式有2种推测，一种是UreD通过表面残基转移镍离子，另外一种是镍离子穿过UreD蛋白内部通道进入脲酶活性中心[15]。此外，UreD/UreH对脲酶的活性具有重要意义，单独添加镍离子也可以在不存在UreE、UreF或UreG的情况下使脱辅基脲酶产生部分活性，但UreD/UreH不存在时无法激活脲酶[16]。

图2 产气克雷伯氏菌和幽门螺旋杆菌的脲酶结构蛋白[12]

2.2.2 UreF

产气克雷伯氏菌外源表达的UreF蛋白也是不溶的，幽门螺杆菌UreF的天然形式是可溶的并且在单体和二聚体之间呈现平衡[17]。研究发现，UreF高度保守的C末端残基在UreF:UreH复合物的形成中起重要作用，UreF:UreH复合物形成后，UreF的C末端残基的排序发生改变，形成α螺旋 (残基236–243)，其与UreH链15–17位的氨基酸残基结合。在UreF不存在的情况下，UreH链15–17位上暴露的疏水性残基可能会使蛋白质不稳定，导致包涵体形成[18]。但是单独的UreF的C末端残基不足以与UreH形成可溶性复合物，还可能涉及UreF的其他残基。此外，UreF和UreH之间的界面保守性较差，这可能是由于UreF和UreD/UreH序列内的相似性较低的缘故。

2.2.3 UreG

UreG是一种可溶性蛋白，其金属结合特性已经从多种微生物中得到鉴定，包括产气克雷伯氏菌[19]、巴氏芽孢杆菌[20]、结核分枝杆菌[21]和幽门螺杆菌[22]。产气克雷伯氏菌的UreG是单体，结合1当量的锌离子或镍离子，巴氏芽孢杆菌和结核分枝杆菌的UreG蛋白质是二聚体，2个单体通过二硫键连接，每个二聚体可以结合3个锌离子和4个镍离子[20]。幽门螺旋杆菌UreG蛋白的单体结合0.5当量锌离子和2当量镍离子[22]。

UreG是参与调控镍供应的SIMIBI (信号识别颗粒MinD和BioD) 类的GTP酶[23-24]。SIMIBI GTP酶的生物功能通常由二聚化调控[25]。在GTP、镍和碳酸氢盐存在的条件下，UreG在单体和二聚体形式之间的转换使其能够动态组装和拆卸金属结合位点以将镍递送至目标脲酶。UreG的GTP酶活性还可通过调控UreF来提高脲酶金属中心组装的保真度[26]。研究表明，2个UreG的单体间的二聚体界面含有Cys66-Pro67-His68金属结合基序，锌的配位层是由来自UreG二聚体的每个单体的残基Cys66和His68形成的，而UreG的Cys66和His68突变会导致其镍离子结合能力丧失[27]。

2.2.4 UreE

UreE是金属伴侣蛋白，在产气克雷伯氏菌中，每个UreE同源二聚体结合6个镍离子[28]。大多数镍与UreE富含组氨酸的C末端 (HGHHHAHHDH HAHSH) 结合，但缺乏该区域的截短形式 (H144* UreE) 形成的同源二聚体仍然可以结合2个镍离子[29]。幽门螺杆菌UreE蛋白在其C末端缺少富含组氨酸的区域，每个二聚体结合1个镍离子[30]。

UreE可以与UreG相互作用成UreG:UreE复合物[31-33]。对于幽门螺旋杆菌，UreE二聚体与2个UreG单体结合，其结构可以通过锌离子稳定[34]。而来自产气克雷伯氏菌的UreE二聚体与1个UreG单体结合后的结构，锌离子或镍离子均可使其达到稳定状态[35]。

2.2.5 其他辅助蛋白

HypA和HypB与细菌中[Ni,Fe]-氢化酶生物合成相关，它们对幽门螺杆菌和肝螺旋杆菌的脲酶活性具有重要作用[36]。氢化酶是一种与细菌能量来源相关的酶，HypA是一种镍结合蛋白，被认为是氢化酶成熟的镍伴侣蛋白[37]。UreE可与HypA形成三元复合物，由1个UreE二聚体和1个HypA单体组成。这种相互作用促进镍从HypA向UreE的传递并增强脲酶活性[38]。幽门螺杆菌HypB不结合镍，但其与UreG同源，具有氢化酶激活所需的GTP酶活性[39]。通常认为HypA和HypB通过形成HypA:HypB复合物将镍插入到氢化酶的大亚基中，化学交联研究表明HypA和HypB可形成异二聚体。在上述两种螺杆菌中，和的突变几乎消除了脲酶和氢化酶的活性[40]。

存在于胃和口腔细菌中，例如幽门螺杆菌和唾液链球菌，该基因编码的蛋白被称为尿素的转运蛋白。UreI转运蛋白是分子量为21.7 kDa的内膜蛋白，其结构由6个亚基组成，每个亚基各自独立运作并对应单一的功能通道[41]。UreI可以将尿素递送至胞内，随后脲酶将尿素转化为氨，UreI蛋白的活性对pH呈现很强的依赖性，其转运作用在pH 6.0左右时关闭，在pH 5.0或更低时完全打开，使尿素迅速转运至细胞质内[42]。

胸膜肺炎放线杆菌的、、、基因编码的蛋白可能具有镍转运功能，用大肠杆菌表达基因及脲酶基因 ()，在普通LB培养基的培养条件下即可具有完整脲酶活性，而仅含脲酶基因 () 的细胞需要补充镍离子以实现完整的脲酶活性[9]。假结核耶尔森菌脲酶基因簇中的5个基因 (、、、和) 也具有镍转运的功能，该区域的缺失会消除脲酶活性并降低微生物吸收镍的速率[43]。唾液链球菌57.I 的脲酶基因簇的下游含有3个基因 (、和)，的插入失活会导致脲酶蛋白无法组装镍离子并丧失活性[44]。

3 细菌脲酶的活化过程

脲酶的活化实质上是镍离子与脲酶蛋白的金属组装过程，UreE将镍离子传递给UreG[27,45]之后，携带镍离子的UreG需要将镍离子转移给UreF，然后再穿过UreD/H通道进入脲酶，才能完成金属中心的装配[14,46-47]。化学交联试验表明，UreF与UreH的结合可以诱导脲酶的构象变化[48]，使镍离子和二氧化碳进入活性位点[49]。

通过确定不同物种的脱辅基脲酶蛋白结构，发现脲酶的活性中心含有2个催化所必需的镍离子，还有1个羧酸化的赖氨酸作为桥键，其羧基的2个氧原子分别与镍离子配位[11]。在活化过程中，UreB是促进辅助蛋白与脲酶脱辅基蛋白相互作用的主要参与者，并指导镍离子高效掺入 (UreC)新生活性位点[50]。有研究显示，用含碳酸氢盐与镍离子的缓冲液孵育脲酶脱辅基蛋白，可产生约15%的活性脲酶蛋白；而先用镍离子孵育脲酶脱辅基蛋白再加入碳酸氢盐，则没有检测到脲酶活性，这一发现表明，CO2必须先于镍与脲酶蛋白结合才能使其激活[51]。

目前提出的脲酶活化路径有3种 (图3)，差异主要体现在辅助蛋白与结构蛋白的结合方式以及辅助蛋白之间的结合顺序上，但最后均需形成UreABC:UreD:UreF:UreG复合物，该复合物的形成被认为是镍插入脲酶活性位点的关键步骤。此外，UreE-UreG的结合在脲酶的活化过程中也具有重要作用，将UreABC:UreD:UreF:UreG与纯化的UreE混合，用生理浓度下的碳酸氢盐、镍和GTP孵育可将脲酶蛋白激活至野生型水平，但它们之间具体的分子机制还不完全清楚。

3.1 模式1：UreD、UreF和UreG依次与UreABC结合

UreD是产气克雷伯氏菌脲酶体内活化所必需的，UreD与编码脲酶结构蛋白的基因过度表达时，可以得到纯化的UreABC:UreD蛋白复合物[51,53]。MBP-UreD可以在细胞内与UreABC联合，但不能与UreAC (即脲酶缺失UreB) 联合。化学交联研究结果表明，UreD紧邻UreB和UreC[48]，而小角度X射线散射 (SAXS) 研究也证实了UreABC: UreD复合物中，UreD与UreABC复合物的UreB结合[49]。

图3 脲酶活化机制与模式示意图

UreF和UreD以及UreABC的高度表达可以形成UreABC:UreD:UreF复合物，但是仅表达UreF与UreABC无法形成复合物。将纯化得到的UreABC:UreD:UreF复合物用天然凝胶的蛋白免疫印迹进行分析，发现每个 (UreABC)3脱辅基蛋白含有0–3个UreDF异二聚体[17]。小角度X射线散射实验显示UreD和UreF之间紧密接触，2种辅助蛋白都结合在UreB附近[49]。化学交联和蛋白水解片段的基质辅助激光解吸电离质谱进一步证明了UreF与UreD之间的关系，研究显示，UreD抗体不能检测到UreABC:UreD:UreF复合物，但是能检测到UreABC:UreD复合物，这表明UreF与UreD抗原表位结合[17]。

将UreG与UreABC:UreD:UreF混合可以得到UreABC:UreD:UreF:UreG复合物，在标准激活条件下，该复合物可以得到60%的活性脲酶，使用高于生理水平的碳酸氢盐和镍离子孵育脲酶蛋白，会降低脲酶活性，但提高GTP的浓度会极大地促进脲酶活化[54]。将UreG的与GTP相关的作用位点进行突变，会极大地降低UreABC:UreD:UreF: UreG复合物脲酶的活性，说明UreG的GTP酶的作用对脲酶的活化具有重要意义。

3.2 模式2：UreD:UreF:UreG直接与UreABC结合

产气克雷伯氏菌可以在体内单独表达UreD: UreF:UreG复合物，但其溶解性很差[19]。幽门螺杆菌的UreH:UreF:UreG复合物的结构显示 (图4)，UreF需要与UreH结合形成复合物引发构象变化后，UreF二聚体才具有结合2个UreG的能力。UreG先前被认为是一种特定的锌离子结合伴侣，没有镍结合能力[40]，而UreG:UreF:UreH复合物的结构清楚地表明UreG可以结合镍离子[55]。

MBP-UreD:UreF:UreG复合物具有很好的溶解性，并且可以与脱辅基脲酶结合[51]。在含有高浓度镍和碳酸氢盐的标准缓冲液中，异源三聚体UreG:UreF:UreH可以与脱辅基脲酶结合并促进脲酶活化，说明UreG:UreF:UreH复合物作为脲酶特异性分子伴侣发挥功能[56-57]。

图4 幽门螺杆菌(UreH:UreF:UreG)2复合物的结构[53]

图5 幽门螺杆菌UreE2/Ni的结构[30]

3.3 模式3：UreE:UreG与UreABC、UreD: UreF的结合

UreE被认为是脲酶活化过程中的镍来源，UreE与镍结合的结构位于2个UreE单体之间的界面处 (图5)[30]。拉下实验 (Pull-down assay) 表明，产气螺杆菌UreG和UreE在镍存在下形成复合物，它们之间通过蛋白质相互作用进行镍的转移[35]。有研究提出，UreG与UreE之间的相互作用位置可能位于UreG镍结合位点附近的蛋白质表面，而这个位置被埋在(UreH:UreF:UreG)2复合物中[27,58]。GTP可以诱导UreG的构象变化，使(UreH:UreF:UreG)2复合物不稳定，UreG从复合物中解离并与携带镍荷电的UreE二聚体形成(UreE:UreG)2复合物[59]。

幽门螺杆菌中，UreG与UreE在GDP存在的条件下形成UreE2:UreG复合物，但在GTP存在的条件下则会形成 (UreE:UreG)2复合物，并接受来自UreE的镍[27]。携带镍离子的UreG二聚体可以与脱辅基蛋白和 (UreH:UreF)2形成具有活性的脲酶复合物[49]。这可能是由于GTP水解为GDP导致UreG的CPH基序的构象发生变化，破坏了由Cys66/His68组成的正方形平面构型，使 (UreE:UreG)2复合物释放了携带镍离子的UreG。而此时的UreG处于CDP约束状态更倾向与 (UreH:UreF)2形成 (UreH:UreF:UreG)2复合物，该复合物继续转运镍离子进一步促进脲酶活化[59]。

4 总结与展望

综上所述，细菌脲酶的活化需要结构蛋白、辅助蛋白 (UreD/H、UreE、UreF和UreG)、镍离子、GTP水解及碳酸氢盐共同发挥作用。在活化过程中，UreD是第一个与结构蛋白结合的辅助蛋白；UreF可以与UreD结合增加UreD的可溶性，也可作为GTP酶的活化蛋白来调节UreG的功能。UreG是一种GTP酶，在脲酶活化中，将GTP替换为不可被水解的GTP类似物会抑制脲酶活化，表明UreG的GTP酶活性是脲酶活化所必需的。最后，UreE在GTP存在的条件下，将其募集的镍离子转移给UreG或结构蛋白与UreF2H2形成的复合物。脲酶活化是一个复杂的过程，目前研究较为广泛的是产气克雷伯氏菌和幽门螺旋杆菌细菌脲酶蛋白的功能性质以及活化方式，但是还有许多基本问题未得到解答，各脲酶蛋白在活化过程中的确切功能仍然未知。此外，自然界中的微生物大部分都是未培养微生物，无法通过分离培养获得菌株及其生理代谢特征，因此未培养微生物脲酶的基因结构与功能是否与可培养微生物类似值得深入研究。基于目前的研究现状，笔者认为，未来还应在以下几个方面加强研究。

1) 本实验室从事瘤胃尿素分解菌研究多年，包括瘤胃尿素分解菌的体外分离与培养、脲酶抑制剂的开发应用以及通过高通量测序确定了瘤胃中的脲酶优势分解菌群等。在尿素分解菌的体外培养方面，我们通过厌氧滚管和调整培养基等技术，从瘤胃液分离得到了溶糊精琥珀酸弧菌、布氏密螺旋体和白色瘤胃球菌，从瘤胃壁上分离获得了地衣芽孢杆菌和奇异变形菌，共5种尿素分解菌[60]。为了抑制瘤胃脲酶活性，我们实验室还对脲酶抑制剂乙酰氧肟酸的合成工艺进行了优化，通过奶牛饲养实验验证了该产品显著抑制了瘤胃尿素的分解。还运用自主研发的人工瘤胃模拟系统进行了体外发酵实验，尿素和乙酰氧肟酸分别作为激活剂和抑制剂，利用高通量测序技术研究尿素分解菌16S rRNA 基因变化，揭示了瘤胃优势尿素分解菌为假单胞菌属、链球菌属、嗜血杆菌属、芽孢杆菌属、奈瑟氏菌属、放线菌属和琥珀酸弧菌科[5]。

但是我们对抑制剂抑制尿素分解菌的作用原理并不清楚，因此将研究方向进一步扩展为：找到瘤胃优势脲酶分解菌，研究该细菌脲酶的活化模式，继而为开发新的脲酶抑制剂垫定基础。由于目前对瘤胃中尿素分解菌的分布和多样性知之甚少，而脲酶基因 () 是分析各种环境中的尿素分解菌的目标基因。我们通过尿素饲喂奶牛，收集瘤胃液相、固相和瘤胃壁的细菌样品，使用Miseq进行基因的扩增和测序，多样性分析表明，甲基球菌科、梭菌科、类芽孢杆菌科、螺杆菌科和嗜甲基菌科的基因丰度较高[4]。

随着宏基因组学的快速发展，为研究未培养微生物种类与功能提供了重要研究方法，因此通过宏基因组技术获得未培养微生物脲酶基因簇，开展结构分析、活化过程和影响因素研究，将是未来重点开展的研究方向。所以我们利用宏基因组测序技术将得到的基因片段进行拼接、Binning (分箱分析)、绘制基因草图，得到了多个基因簇。再将这些基因簇与之前得到的优势细菌序列进行比对，最终获得优势脲酶细菌的基因簇。将脲酶基因全长和结构基因在体外诱导表达，发现脲酶全长基因表达的蛋白的活性远高于结构蛋白的活性，还需进一步研究该细菌脲酶蛋白的生物功能。

2) 辅助蛋白的功能研究：已有研究证明，带镍的UreG二聚体可以与UreF2H2和结构蛋白形成复合物，并且UreG和UreF2H2之间的相互作用对于脲酶活化至关重要，但是尚不清楚UreG二聚体是如何与结构蛋白和UreF2H2相互作用的。并且UreG可以与UreE形成UreE2G2复合物，该复合物中UreG是以单体的形式还是二聚体的形式与UreE2结合也未知。目前比较缺乏对UreD/UreH与UreF的研究，我们在实验过程中也发现UreD与UreF相对于其他辅助蛋白稳定性和可溶性均较差，而UreD/UreH与UreF是脲酶活化方面的关键辅助蛋白，所以UreF与UreD/UreH之间如何转移镍离子并传递至结构蛋白将是今后研究的重点。

3) 脲酶抑制剂的开发：先通过将具有活性的脲酶蛋白与抑制剂进行体外实验，通过IC50等指标筛选出具有活性抑制作用的产品。之后利用等温量热或表面等离子共振等技术研究该抑制剂所抑制的关键功能蛋白，对新型脲酶抑制剂的开发应用具有重要意义。

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Progress in bacterial urease complexes and their activation mechanisms

Xiaojiao Li1,2,3, Shengguo Zhao1,2, Nan Zheng1,2, Jianbo Cheng3, and Jiaqi Wang1,2

1 State Key Laboratory of Animal Nutrition, Institute of Animal Science, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100193, China 2 Laboratory of Quality & Safety Risk Assessment for Dairy Products of China Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Institute of Animal Sciences, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100193, China 3 College of Animal Science and Technology, Anhui Agricultural University, Hefei 230036, Anhui, China

Urease decomposes urea to ammonia, and has application potential in agriculture and medical treatment. Urease proteins include structural proteins (UreA, UreB and UreC) and accessory proteins (UreD/UreH, UreE, UreF and UreG), each of them has its own unique role in urease maturation. The structural proteins form the active center of urease, and the accessory proteins are responsible for the delivery of nickel. We review here the structure and function of bacterial urease complexes, and how each protein interacts to complete the activation process. We hope to provide theoretical basis for the regulation of urease activity and the development of urease inhibitors.

bacterial urease, structural protein, accessory protein, activation mechanism

June 10, 2018;

October 11, 2018

National Natural Science Foundation of China (Nos. 31501981, 31430081), the Agricultural Science and Technology Innovation Program (No. ASTIP-IAS12), Modern Agro-Industry Technology Research System of China (No. CARS-37).

Shengguo Zhao. Tel: +86-10-62816069; Fax: +86-10-62897587; E-mail: zhaoshengguo@caas.cn

国家自然科学基金 (Nos. 31501981, 31430081)，中国农业科学院科技创新工程 (No. ASTIP-IAS12)，现代农业产业技术体系专项资金(No. CARS-37) 资助。

2018-11-21

10.13345/j.cjb.180239

http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1998.Q.20181119.1735.001.html

(本文责编 陈宏宇)