沈 帆，程文慧，范一菲，沈 兵，钟明奎

阻塞性睡眠呼吸暂停(obstructive sleep apnea, OSA)产生原因是睡眠时上气道塌陷阻塞，从而导致呼吸暂停与通气不足，进而引起打鼾、睡眠结构紊乱、血氧饱和度下降频发和白天嗜睡等一些症状，是多种心血管疾病的独立危险因素，是造成患者致残和死亡的主要原因。OSA可产生多种危害，如间歇性低氧(intermittent hypoxia，IH)、高碳酸血症、胸内负压剧烈波动、睡眠中断和结构紊乱，其中IH是OSA的主要病理生理学特点和损伤机制，被认为是引起心血管疾病的最为重要的因素[1]。组蛋白去乙酰化酶(histone deacetylases, HDAC)将乙酰基团从组蛋白或者非组蛋白上的ε-N-乙酰赖氨酸中去除掉，进而调节蛋白质活性水平的一类酶家族。HDAC是表观遗传调控子，调控了组蛋白乙酰化及去乙酰化的水平高低、核染色质的构象变化、组蛋白和DNA之间相互作用、转录和转录后修饰等。研究[2]表明HDAC在心血管疾病的发展中发挥着重要的调控作用，保护心血管的重要途径之一便是抑制HDAC，所以抑制HDAC可能对心血管疾病的诊断以及治疗是一种全新的方案[3]。该研究将探讨间歇性低氧引起的小鼠心肌损伤是否可以通过HDAC抑制剂SAHA予以保护及其作用的可能机制。

1 材料与方法

1.1动物清洁级雄性昆明小鼠，18～23 g，购自安徽医科大学实验动物中心。动物分笼饲养，自由摄食和饮水，通风良好，室温 18～25 ℃。

1.2仪器和试剂测氧仪(CYS-1 型，南京新飞分析仪器制造有限公司)；医用压缩氧气(浓度>99.9%)、压缩氮气(浓度>99.99%)由合肥众益化工产品有限公司充装；Vorinostat(suberoylanilide hydroxamic acid, SAHA)购自美国Selleck公司，用溶媒将SAHA配制成5 mg/ml，配置好后立即使用，溶媒的配比方案为ddH2O+30% PEG300+5% Tween 80+2% DMSO；Dihydroethidium(DHE)(上海碧云天生物技术有限公司)。

1.3方法

1.3.1间歇性低氧模型的制备和分组 小鼠在适应性饲养1周后进行实验，随机分成正常氧组(Sham组)、间歇性低氧组(IH组)、正常氧SAHA干预组(Sham+SAHA组)及间歇性低氧SAHA干预组(IH+SAHA组)，每组7只。根据本实验室之前研究出的方案，使用氮气不断充入间歇性低氧箱内，稀释低氧箱内氧气[4]，将IH组以及IH+SAHA组小鼠放进低氧仓内，进行每天8 h的间歇性低氧处理，处理时间一共连续4周。Sham组和Sham+SAHA组除不充入氮气和氧气外，其余均与IH 组相同处理。在间歇性低氧处理2周之后，Sham+SAHA组以及IH+SAHA组连续2周每天使用SAHA 50 mg/(kg·d)给予腹腔注射，而Sham组和IH组腹腔则注射相同体积溶媒。实验第4周末，处死小鼠，计算小鼠心脏指数，HE染色和VG染色观察心脏病理形态学改变，DHE染色观察小鼠心肌中活性氧物(reactive oxygen species,ROS)含量。

1.3.2心脏重量指标测定 实验模型制备完成后首先给小鼠测量体重。再使用10%水合氯醛用腹腔注射的方法麻醉小鼠，注射剂量是0.05 ml/10 g，再使用眼球摘除取血的方法，获取各组小鼠的血液。取血之后，在迅速使用粗剪刀剖开小鼠的胸腔，剪下小鼠心脏与胸主动脉。心脏剪下之后，去除附着的结缔组织，并且将粘在心脏上的细小脂肪以及残留的血液在生理盐水中轻轻摆动去除，并将心脏用滤纸完全吸干之后再称量重量，并且用直尺测得小鼠的胫骨长度，计算得出心脏重量/体质量(mg/g)以及心脏重量/胫骨长度(mg/cm)的比值。

1.3.3心脏组织学观察 小鼠的心脏被洗净吸干水后，首先使用10%多聚甲醛对其进行灌流，之后放在多聚甲醛溶液中固定，在经脱水机脱水之后，用石蜡包埋机包埋成蜡块。使用石蜡切片机将心脏蜡块标本切成4 μm薄片，用毛笔蘸到温水中展开，之后使用载玻片捞出，之后将其用90 ℃烤20 min进行脱蜡，再分别使用HE和VG胶原染色，最后使用树脂封片，并用显微镜进行观察和拍摄。拍摄所得图像使用Image J软件计算心肌细胞的横截面积。

1.3.4心脏中ROS的测定 将新鲜心脏取出，OTC包埋液氮冷冻后置-80 ℃冰箱保存。用冰冻切片机(Leica，德国)将冷冻后的标本切成5 μm的切片，用 PBS 洗涤，将配好的ROS探针DHE(5 μmol/L)在37 ℃烘箱内与标本在避光湿盒内反应30 min。DHE 在超氧化物生成处被氧化成为溴化乙锭，与 DNA 相结合之后，激发出红色的荧光，可以通过观察荧光的强度检测ROS含量。

2 结果

2.1SAHA对间歇性低氧小鼠心脏肥大的影响使用小鼠的心脏重量/体质量、心脏重量/胫骨长度的比值和心肌细胞横截面积对心肌肥大进行评价。四组小鼠心脏重量/体质量比值[F(3，24) =58.52，P<0.001]、心脏重量/胫骨长度比值[F(3，24) =14.35，P<0.001]存在明显差异。和Sham组相比，IH组小鼠心脏重量/体质量比值与心脏重量/胫骨长度比值显著增加(P<0.001)，出现了心脏肥大。使用SAHA处理1周后，和IH组相比，IH+SAHA组的小鼠心脏重量/体质量比值与心脏重量/胫骨长度比值下降明显(P<0.01)，提示IH小鼠心肌肥大可被SAHA抑制；SAHA对Sham组小鼠心脏重量/体质量和心脏重量/胫骨长度比值没有影响(图1)。

图1 SAHA对间歇性低氧小鼠心脏重量的影响

A：心脏重量/体质量比值；B：心脏重量/胫骨长度比值；与Sham组比较：***P<0.001；与IH组比较：##P<0.01

HE染色结果显示，四组小鼠心肌横截面积存在明显差异[F(3，186)=55.58，P<0.001]。与Sham组相比，IH组小鼠心脏的心肌细胞横截面积显著增加(P<0.001)；SAHA可降低间歇性低氧引起心肌细胞横截面积的增加(P<0.01)，但Sham组小鼠没有影响(图2)。

图2 SAHA对间歇性低氧小鼠心肌细胞横截面积的影响 ×400

A:Sham组；B：Sham+SAHA组；C：IH组；D：IH+SAHA组；E：心肌横截面积半定量分析的结果统计图；与Sham组比较：***P<0.001；与IH组比较：##P<0.01

2.2SAHA对间歇性低氧实小鼠心肌纤维化的影响VG染色结果显示：与Sham组相比，IH组小鼠心肌胶原纤维明显增多(棕黄色细胞)，SAHA治疗显著改善了IH组小鼠心脏纤维化；Sham小鼠无论是否应用SAHA，心肌均未出现纤维化(图3)。

2.3SAHA间歇性低氧小鼠心肌中ROS的影响DHE荧光染色结果显示：与Sham组相比，IH组小鼠心肌中活性氧明显增加，SAHA治疗可显著抑制IH小鼠ROS水平；SAHA对Sham组小鼠心肌ROS水平没有影响(图4)。

3 讨论

本研究显示间歇性低氧4周后，小鼠心脏重量/体质量和心脏重量/胫骨长度比值、心肌细胞横截面积、心肌胶原纤维沉积及心肌ROS显著增加，提示间歇性低氧可引起心肌重构及氧化应激；应用组蛋白去乙酰化酶抑制剂SAHA干预可明显改善间歇性低氧引起的心肌损伤及ROS增加。本研究结果表明组蛋白去乙酰化酶抑制剂SAHA可以改善间歇性低氧小鼠的心肌损伤状况，其可能机制是抑制了细胞内的氧化应激反应。

图3 SAHA对间歇性低氧小鼠心肌细胞纤维化的影响×400

A:Sham组；B：Sham+SAHA组；C：IH组；D：IH+SAHA组

图4 SAHA对间歇性低氧小鼠心肌细胞ROS的影响 ×400

A:Sham组；B：Sham+SAHA组；C：IH组；D：IH+SAHA组

心脏重构是心脏对各种心血管疾病中出现的有害刺激的适应性反应，但长期重塑常导致慢性心力衰竭或心源性猝死。 因此，控制心肌重构的进程十分重要。许多研究发现染色质重塑，特别是HDAC在心脏基因表达调控中起着重要作用。目前已有18种进化保守的哺乳动物HDAC被鉴别出来，并且可分成四类(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ)，依据是系统发育的保守性。此外，已发现多达1 750个HDAC的非组蛋白靶蛋白，一些很重要的细胞生理过程则通过此类非组蛋白的乙酰化和去乙酰化进行调节，比如细胞周期、细胞骨架重组、内吞作用与囊泡运输[5]。由于HDAC活性在生理和病理过程中至关重要，HDAC抑制剂已被开发为多种疾病的治疗选择，如癌症、情感障碍和艾滋病等[6]。HDAC抑制剂按结构可分为四类：短链脂肪酸(丁酸盐、丁酸苯酯和丙戊酸)、异羟肟酸盐(SAHA和TSA)、氨基苯甲酰胺(FK-228)和环肽。SAHA是光谱HDAC抑制剂，可抑制I类和II类HDAC活性，是首个被美国FDA批准作为HDAC抑制剂的临床用药，用于治疗皮肤T细胞淋巴瘤和多发性骨髓瘤[6]。近些年有研究报道， SAHA、TSA以及丙戊酸等等一类HDAC抑制剂可以防止由几类不同因素导致的心脏肥大[7-9]，有希望成为治疗心脏肥厚和与之有关疾病的新药物方案。

反复间歇性低氧可能导致氧化应激反应加剧与活性氧物质增加，与OSA导致的并发症紧密有关[10]，在心肌重构的过程中ROS依赖性途径有很重要的影响[11]。ROS引起生物作用主要是通过导致DNA、蛋白质、脂质非特异性的氧化损伤或者影响特定的细胞信号传导通路来实现。ROS细胞内主要来自线粒体电子传递链与氧化酶，与ROS代谢相关的酶主要包含NAD(P)H氧化酶、黄嘌呤氧化酶与一氧化氮合酶(NOS)、超氧化物歧化酶(SOD)以及过氧化氢酶(CAT)等，其中NADPH氧化酶在心脏重构病理过程中起到相当关键的作用[11]。此次研究使用SAHA抑制了间歇性低氧小鼠心脏ROS的增加与心肌重构，其原因是否与NADPH氧化酶相关需要下一步的研究。