萧翡音

作者单位：516600 汕尾市人民医院

新生儿败血症作为一种危害新生儿健康的危重病症, 主要指的是细菌在新生儿期逐渐侵入血液循环, 繁殖且产生一定量的毒素, 进而引发新生儿全身性感染等, 该病是目前引起新生儿发生死亡的主要因素, 临床上早期及时准确的对该病患儿进行诊断与治疗, 对降低新生儿败血症的死亡率以及并发症发生率具有十分重要的临床意义。新生儿败血症的发病十分的隐匿, 早期临床症状较为轻微, 缺乏一定的特异性。传统的血培养检测方法耗时长, 容易受到多种因素的影响,不能够在早期为临床医生提供诊断依据。本研究中针对败血症新生儿检测血培养联合血清PCT、hs-CRP水平的应用价值进行分析, 现报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料 选取2016年8月～2018年8月本院收治的65例败血症新生儿作为实验组, 另选同期65例健康新生儿作为对照组。实验组中男30例, 女35例；日龄1～25 d, 平均日龄(12.35±8.32)d。对照组中男31例, 女34例；日龄1～26 d, 平均日龄(12.69±8.52)d。两组新生儿性别、日龄等一般资料比较差异无统计学意义(P＞0.05), 具有可比性。本次研究均得到医院伦理会同意。

1.2 纳入及排除标准 纳入标准：所有患儿经检查均符合2003年 《中华儿科杂志》中的诊断标准；所有患儿由直系亲属负责签订责任同意书, 家属均是在自愿的情况下积极配合本次研究［1］。排除标准：排除不愿意积极配合临床治疗的新生儿；排除合并其他相关疾病的新生儿。

1.3 方法

1.3.1 血培养 实验组新生儿使用 Bact/ALE R T 3D 全自动血培养仪进行检测, 在操作过程中血培养仪若报警阳性,可立刻取出阳性瓶进行取样涂片, 随后开展革兰染色及镜检, 与此同时种到哥伦比亚血平板, 放置CO2培养箱, 设置孵育温度为35～37℃设置孵育时间为24～48 h, 观察血平板上是否有菌落生长, 若厌氧瓶呈现阳性, 需要进一步加种厌氧血平板, 可在厌氧条件下将其孵育, 孵育时间为24～72 h, 随后开展耐氧试验, 最后可根据分离细菌特征进行鉴定分型等［2］。

1.3.2 PCT检测步骤 两组新生儿均采用双抗体夹心法进行检测, 检测时间为18 min, 取30 μl的样本, 将生物素化的单克隆PCT抗体和钌复合物标记的单克隆 PCT抗体同时孵育, 进而形成抗原抗体夹心复合物, 加上包被链霉亲和素的磁珠微粒之后进行孵育, 复合体和磁珠可借助生物素和链霉素进行有效的结合, 之后将反应液直接吸入测量池, 借助电磁作用可将磁珠吸附在患儿的电极表面, 给电极加电压, 促进复合体进行化学发光, 并且通过光电倍增器进一步测量患儿的发光强度, 随后采用Elecsys软件进行自动定标, 得出结果即可［3］。

1.3.3 hs-CRP检测步骤 采集两组新生儿的空腹静脉血,促凝离心后开始检测, 利用试剂前需要摇匀, 之后可严格根据BN ProSpec全自动蛋白分析仪操作规程开展检测［4］。

1.4 观察指标［5］对比两组的血清PCT、hs-CRP水平以及实验组中血清PCT、血清hs-CRP、血培养阳性率的差异。

1.5 统计学方法 采用SPSS20.0统计学软件进行数据分析。计量资料以均数±标准差(±s)表示, 采用t检验；计数资料以率(%)表示, 采用χ2检验。P＜0.05表示差异具有统计学意义。

2 结果

2.1 血培养及血清PCT、hs-CRP诊断结果 实验组新生儿中, 血培养检出阳性40例、阳性率61.54%, 血清PCT检出阳性56例、阳性率86.15%, 血清hs-CRP检出阳性53例、阳性率81.54%。血清PCT、hs-CRP阳性率均明显高于血培养,差异具有统计学意义(P＜0.05)；血清PCT与血清hs-CRP阳性率比较差异无统计学意义(P＞0.05)。见表1。

2.2 血清PCT、hs-CRP检测水平 实验组新生儿血清PCT、hs-CRP水平分别为 (4.21±2.35)ng/ml、(13.11±2.29)mg/L,均明显高于对照组的(0.25±0.11)ng/ml、(4.48±1.16)mg/L, 差异具有统计学意义(P＜0.05)。见表2。

表1 血培养及血清PCT、hs-CRP诊断结果［n, n(%)］

表2 两组血清PCT、hs-CRP检测水平比较( ±s)

表2 两组血清PCT、hs-CRP检测水平比较( ±s)

注：与对照组比较, aP＜0.05

组别 例数 血清PCT(ng/ml) 血清hs-CRP(mg/L)对照组 65 0.25±0.11 4.48±1.16实验组 65 4.21±2.35a 13.11±2.29a t 13.5709 27.1041 P 0.0000 0.0000

3 讨论

败血症目前作为新生儿期常常出现的危重疾病, 该病的发生率主要占活产婴的 1%～10%, 是导致新生儿伤残和死亡的主要原因, 血培养阳性在临床上被公认是诊断败血症患儿的金标准, 但是由于血培养时间较长, 容易受到多种因素的影响, 使得检测阳性率低, 相当多的时候, 血培养是阴性, 但具有败血症的临床表现, 不能够对新生儿败血症开展有效的早期诊断, 进而给新生儿败血症治疗造成较多的困难［6］。

血培养阳性患儿使用抗生素后, 可借助PCT的动态监测进一步了解患儿的全身炎症反应情况, 进而检测患儿的临床治疗效果。可借助PCT水平更一步优化抗生素疗程, 缩短整个治疗疗程。但是PCT仅仅只能够作为间接性感染性指标,因此, 临床医生在治疗该病患儿的同时需要结合其他相关的临床资料, 同时开展血培养、检测hs- CRP水平等。尽管临床上检测出的PCT水平在一定程度上存在假阴性结果或者非特异性升高等现象, 但是由于PCT仍然作为发现潜在危及生命感染的可靠性诊断指标［7］。hs-CRP作为一种由肝细胞合成的急性时相蛋白, 主要反映患儿的是否存在炎症, 能够对患儿的受感染程度进行较好的反映, 若患儿发生感染, hs-CRP浓度增加会导致炎症程度逐渐增加。败血症新生儿开展有效治疗后, 短时间内血清PCT和hs-CRP可逐渐恢复正常。因此,血培养联合血清PCT和hs-CRP指标诊断新生儿败血症可明显的提高阳性率, 同时降低误诊率和漏诊率, 为临床医生在治疗后判断患儿的预后提供有利的依据, 方便其及时调整患儿的治疗方案, 同时指导医生合理使用抗生素［8-12］。三种方法联合检测可为临床医生提供治疗新生儿败血症的依据。

综上所述, 血清 PCT、hs-CRP检测均可作为新生儿败血症诊断的重要指标, 在血培养的同时可考虑进行血清 PCT、hs-CRP检测以提高新生儿败血症检出率, 临床价值较高。