APP下载

MMPs和RAGE参与机械通气肺损伤的研究进展

2018-03-04陈翔黄霞廖品琥

右江医学 2018年6期

陈翔 黄霞 廖品琥

【关键词】 MMPs;RAGE;VILI

中图分类号:R563.8 文献标识码:A DOI:10.3969/j.issn.1003-1383.2018.06.025

机械通气(mechanical ventilation,MV)是救治危重病患者的重要手段之一,但机械通气对肺组织的牵张作用也可导致机械通气肺损伤(ventilator induced lung injury,VILI)[1]。基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)通过对肺基底膜的重塑,参与VILI的生物伤过程,同时,晚期糖基化终末产物受体(receptorf or advanced glycation end-products,RAGE)是介导MMPs活性的重要受体,参与介导肺损伤过程的炎性细胞因子释放[2~3]。本文综述MMPs、RAGE及它们在VILI中的互相作用。

1 MMPs概况

1.1 MMPs的分类

MMPs根据作用底物不同被分为5大类。第一类为膠原酶,主要水解底物是纤维素胶原,包括MMP-1、MMP-8、MMP-13、MMP-18;第二类为明胶酶,作用底物为Ⅳ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ型胶原,包括明胶酶A(MMP-2)和明胶酶B(MMP-9);第三类为基质水解酶类,其水解底物比较广泛,主要为Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅸ型胶原、蛋白聚糖、明胶等,包括MMP-3、MMP-10、MMP-11;第四类是膜型MMPs;第五类是其他MMPs[4]。

1.2 MMPs的结构

MMPs结构上具有高度同源性,所有MMPs基因由同源性的10个外显子,9个内含子组成。MMPs基因经一系列加工处理后,形成并具有以下5个结构域。①信号肽区域:将翻译的产物引导进入内质网,由第1外显子编码;②酶原肽段区域:在催化激活时裂解使MMPs酶原被激活,由第2外显子编码;③催化活性区:该区域为锌离子结合的位点,促使酶催化作用的发挥,由第3~5外显子编码;④富含脯氨酸的铰链区:连接催化活性区和C-羧基末端;⑤C-羧基末端:参与识别大分子底物及与金属蛋白酶组织抑制剂(tissue inhibitor of metalloproteinase,TIMPs)结合,与酶的底物特异性相关[5]。

1.3 MMPs/TIMPs的调节

TIMPs是一组能抑制MMPs活性的多功能因子,主要由巨噬细胞、成纤维细胞和内皮细胞合成。目前发现的TIMPs有4种,TIMP1~4,其中TIMP1~2能抑制所有已知MMPs活性。TIMPs主要通过对MMPs的负性调节,参与ECM重塑和机体的病理生理过程:①在MMPs酶原的活化阶段,TIMPs通过与MMPs结合,形成稳定的复合体,阻碍酶原的激活和MMPs的活化;②在活化的MMPs阶段,TIMPs与活化的MMPs结合形成紧密的复合体,阻断MMPs与底物结合而抑制其活性[6]。

2 MMPs参与VILI 进程

生理状态下,MMPs在肺内极低量表达,MMPs/TIMPs处于动态平衡状态,维持ECM的结构完整和功能正常。VILI时,机械张力导致肺内皮细胞和上皮细胞损伤,促使中性粒细胞聚集、激活并释放MMPs,使血浆MMPs上升,并通过MMPs/TIMPs之间的动态调节,影响VILI的发展和转归;同时,VILI的进程与MMPs的表达也相互影响[7]。

机械牵张促使肺血管内皮细胞MMP-2表达上升,MMP-2水平随机械牵张时间增加而上升,协同使用刀豆球蛋白A并不能升高MMP-2的表达水平,提示机械牵张引起MMP-2水平升高[8]。而Haseneen等研究发现机械牵张时膜型1-MMP增加引起了MMP-2的活化,提示机械牵张可以通过膜型1-MMP激活MMP-2参与VILI。机械牵张小鼠胎肺细胞,MMP-2水平升高,MMP-9表达下降,MMP-2表达升高可造成ECM的过度降解以及肺泡上皮基底膜的断裂,MMP-9则更多参与ECM重塑与修复,而非造成炎症反应,这些研究结果表明机械牵张引起MMP-2水平升高和MMP-9表达下降,最终促使肺细胞损伤加重,影响VILI的发展和转归[9]。在VILI进程中,炎性因子如TNF-α、IL-1β等的释放也能提高MMP-2的表达水平,造成肺泡通透性上升,加重肺的损伤[10]。

在实验动物,MV后新生兔肺组织中MMP-2表达水平显著上升,肺组织学观察结果显示,MMP-2表达变化与病理损伤程度一致,提示MMP-2水平可反映肺损伤程度[11]。大潮气量通气促使大鼠MMP-2和MMP-9活性升高,表明MMP-2和MMP-9处于活化状态,对ECM及气管壁和肺泡结构的破坏作用增强,且肺组织MMP-2 mRNA和MMP-9 mRNA表达水平上升,但TIMP-1 mRNA和TIMP-2 mRNA的表达无明显变化,伴随有肺泡壁弥漫性出血水肿及肺泡结构的破坏,PaO2/FiO2下降,提示MMPs与其抑制剂TIMP之间的比例失衡,可能是VILI发生的因素[12]。机械通气导致肺组织有不同程度的中性粒细胞和巨噬细胞浸润,支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)中巨噬细胞计数与MMP-9表达水平呈正相关,且MMP-9表达水平与VILI病理改变程度呈正相关;肺组织中性粒细胞计数、活性与肺组织中MMP-9的表达和活性呈正相关,应用四环素类衍生物,抑制中性粒细胞的活性,MMP-9的表达与活性下降,肺损伤程度降低,这些研究结果提示巨噬细胞和中性粒细胞均通过分泌MMP-9参与VILI进展,而MMP-9的表达升高引起ECM的重塑,导致上皮细胞受损,炎症细胞迁移到肺泡腔,释放炎症因子,产生瀑布效应[13]。在MMP-3和MMP-9的基因缺失后,MV的炎性反应和肺损伤程度减轻[14~15]。因此,MV能引起MMPs活性和表达水平的改变,导致MMPs/TIMPs比例失调,参与VILI进展。

3 RAGE概况

RAGE属于免疫球蛋白超家族的膜受体[16],是多配体受体,在肺组织中主要表达于肺泡巨噬细胞、内皮细胞等。RAGE通过与不同配体结合,促进细胞内氧化应激反应,引起细胞和组织损害[17]。

3.1 RAGE结构

RAGE基因定位于6p21.3,共含有11个外显子,是由胞外域、跨膜域和胞内域共同组成的膜受体,胞外域主要能结合配体;胞内域能结合各种细胞内信号分子,与RAGE信号转导有关[18]。RAGE主要有3种异构体,由蛋白酶水解或者mRNA的选择性剪切产生。①全长型RAGE:具有完整的胞内域,跨膜域和胞内域结构。胞外段具有V型片段紧接2个C型片段的免疫球蛋白样结构,其V型片段含有2个N-糖基化位点,为配体结合部位;胞内段较短。②N端截短型RAGE:N端缺乏V型免疫球蛋白样区域,一般不能与配体结合。③C端截短的RAGE:又称可溶性晚期糖基化终末产物受体(souble receptor for advanced glycation end-products,sRAGE),缺乏C端部分序列。sRAGE仅由胞外段構成,保留与配体结合的能力,但由于缺失跨膜域和胞内域而没有激活信号转导通路功能。sRAGE可与全长RAGE竞争结合配体,抑制信号转导,从而保护细胞免受损伤[19]。

3.2 RAGE参与VILI进程

生理状态下,RAGE主要表达于肺泡Ⅰ型细胞,主要起维持肺泡稳定的作用,在其他组织和细胞中表达较低。机械张力激活细胞表面RAGE,通过与配体相互作用,引起下游炎性因子的转录;同时,机械牵张促使细胞膜表面的RAGE胞外段裂解,通过毛细血管和肺泡壁渗透到血液和肺泡水肿液中,导致RAGE/sRAGE之间出现动态调节,影响VILI的发展和转归[20]。受机械牵张的肺泡上皮细胞,通过激活MAPK的P38α信号转导通道,使RAGE和其mRNA表达量明显上升,调节RAGE的表达,RAGE与配体结合激活信号通路导致下游炎性因子转录,参与了肺损伤的过程[21]。在实验动物,通过NF-κB信号转导通道的激活,MV后小鼠肺组织的RAGE mRNA表达明显上升,小鼠BALF中中性粒细胞数和IL-6、IL-1β等炎症因子水平明显上升,但在RAGE基因敲除的小鼠,MV后RAGE mRNA的炎性细胞因子的表达水平无明显变化,这些实验结果提示是MV引起RAGE的炎性细胞因子的上升表达[22~23]。sRAGE与RAGE竞争结合配体,减低IL-6、MIP-2等炎性细胞因子的表达[22]。肺保护性通气的使用,降低了患者BALF中RAGE和血浆sRAGE的表达水平,抑制RAGE胞外段裂解形成sRAGE,减少了炎症因子的释放,促使PaO2/FiO2下降,减轻肺损伤,改善患者的预后[20~24]。

4 MMPs与RAGE相互作用参与VILI进程

RAGE可通过与配体结合,激活相应的细胞信号转导通道促进炎性因子和MMPs的表达,炎症细胞激活也会释放MMPs。而RAGE通过与AGEs的结合,促使巨噬细胞MMP-9的表达升高[25]。这些研究结果提示,RAGE可以调控MMPs的表达水平,造成ECM的重塑和基底膜的损伤,参与VILI的肺损伤进程。大鼠肺泡上皮细胞的MMP-3、MMP-13与RAGE的表达水平相关,抑制MMP-3、MMP-13活性,RAGE表达也下降,组织学结果显示肺病理损伤程度下降,提示RAGE表达水平与MMPs和肺损伤程度相关。MMP-3、MMP-13还可以促使RAGE胞外段裂解形成sRAGE,sRAGE通过与RAGE竞争结合配体,从而限制肺损伤程度[26]。MMP-9是RAGE介导的ECM和胶原降解的下游效应物,RAGE转基因小鼠的肺泡Ⅱ型细胞中RAGE过度表达,肺组织MMP-9表达升高,病理显示肺泡基底膜破坏,胶原降解,导致肺泡通透性上升,肺水肿[27]。使用抑制MMP-9活性的多西环素预处理MV的小鼠,其肺组织MMP-9活性降低, 其竞争结合配体sRAGE表达上升,抑制RAGE信号通路的激活,减轻肺损伤[28]。因此,RAGE、MMPs共同参与了VILI的发生发展。

5 结语

MMPs和RAGE与VILI的发生发展密切相关,但其在VILI中的作用机制仍需进一步研究。

参 考 文 献

[1] Pinhu L,Whitehead T,Evans T,et al.Ventilator-associated lung injury[J].The Lancet,2003,361(9354):332-340.

[2] 陈 林,尚 游,姚尚龙.机械通气所致肺损伤的分子生物学机制研究进展[J].中华危重病急救医学,2014,26(2):126-128.

[3] Zhang HB,Zhang Y,Chen C,et al.Pioglitazone inhibits advanced glycation end product-induced matrix metalloproteinases and apoptosis by suppressing the activation of MAPK and NF-κB[J].Apoptosis,2016,21(10):1082-1093.

[4] Ruddy JM,Ikonomidis JS,Jones JA.Multidimensional Contribution of Matrix Metalloproteinases to Atherosclerotic PlaqueVulnerability:Multiple Mechanisms of Inhibition to Promote Stability[J].J Vasc Res,2016,53(1-2):1-16.

[5] Maciejczyk M,Pietrzykowska A,Zalewska A,et al.The Significance of Matrix Metalloproteinases in Oral Diseases[J].Adv Clin Exp Med,2016,25(2):383-390.

[6] Kim J,Lee J.Matrix metalloproteinase and tissue inhibitor of metalloproteinase responses to muscle damage after eccentric exercise[J].J Exerc Rehabil,2016,12(4):260-265.

[7] Greenlee KJ,Werb Z,Kheradmand F.Matrix metalloproteinases in lung:multiple,multifarious,and multifaceted[J].Physiol Rev,2007,87(1):69-98.

[8] Haseneen NA,Vaday GG,Zucker S,et al.Mechanical stretch induces MMP-2 release and activation in lung endothelium:role of EMMPRIN[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2003,284(3):L541-547.

[9] Hawwa RL,Hokenson MA,Wang Y,et al.Differential Expression of MMP-2 and -9 and their Inhibitors in Fetal Lung Cells Exposed to Mechanical Stretch:Regulation by IL-10[J].Lung,2011,189(4):341-349.

[10] Roomi MW,Monterrey JC,Kalinovsky T,et al.Modulation of MMP-2 and MMP-9 by cytokines,mitogens and inhibitors in lung cancer and malignant mesothelioma cell lines[J].Oncol Rep,2009,22(6):1283-1291.

[11] 花少棟,杜 江,刘秀香,等.基质金属蛋白酶2和基质金属蛋白酶9在新生兔高氧机械通气肺损伤中的表达[J].中国全科医学,2008,11(22):2043-2046.

[12] 张定宇,姚尚龙.机械通气致肺损伤大鼠肺组织基质金属蛋白酶的表达[J].中华麻醉学杂志,2005,25(7):519-522.

[13] 花少栋,杜 江,唐 雯,等.新生兔机械通气肺损伤MMP-9与白细胞相关性的研究[J].中国妇幼保健,2007,22(34):4916-4920.

[14] Puntorieri V,McCaig LA,Howlett CJ,et al.Lack of matrix metalloproteinase 3 in mouse models of lung injury ameliorates the pulmonary inflammatory response in female but not in male mice[J].Exp Lung Res,2016,42(7):365-379.

[15] Rahman M,Zhang S,Chew M,et al.Platelet shedding of CD40L is regulated by matrix metalloproteinase-9 in abdominal sepsis[J].J Thromb Haemost,2013,11(7):1385-1398.

[16] Neeper M,Schmidt AM,Brett J,et al.Cloning and expression of a cell surface receptor for advanced glycosylation end products of proteins[J].J Biol Chem,1992,267(21):14998-5004.

[17] Rouhiainen A,Kuja-Panula J,Tumova S,et al.RAGE-mediated cell signaling[J].Methods Mol Biol,2013,963:239-263.

[18] Wong FN,Chua KH,Kuppusamy UR,et al.Association of the receptor for advanced glycation end-products (RAGE) gene polymorphisms in Malaysian patients with chronic kidney disease[J].PeerJ,2016,4:e1908.

[19] Khazaei M,Karimi J,Sheikh N,et al.Effects of Resveratrol on Receptor for Advanced Glycation End Products(RAGE) Expression and Oxidative Stress in the Liver of Rats with Type 2 Diabetes[J].Phytother Res,2016,30(1):66-71.