答：采血是动物实验常见的操作，我们可以在不同的情况下选择恰当的方法，现总结如下：

(1)剪尾采血：所需血量较少时采用，适用于涂片、试纸检测血糖等。鼠尾消毒后，浸在45℃～60℃左右的温水中10～30 s，使尾部血管充盈，用刀片或剪刀割去尾尖小鼠1～2 mm，大鼠3～5 mm，自尾根向尾尖捋尾巴，让血液流出。每只实验动物一般可采血10次以上。小鼠每次可取血0.1 mL；大鼠0.3～0.5 mL。如果长期反复取血，由近鼠尾末端向近心端操作。

(2)眼眶静脉丛采血：采血量较多，且动物不致死，适用于实验中血液指标的检验。取血时拇指及食指压迫颈部两侧，使眶后静脉丛充血。手持硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5～1.0 mm)，与鼠面成45度的夹角，由眼内角刺入，刺入后再深入小鼠约2～3 mm，大鼠约4～5 mm，穿刺适当血液能自然流出。多次建议左右两眼轮换取血。小鼠每次可采血0.2～0.3 mL；大鼠每次可采血0.5～1.0 mL。

(3)摘眼球取血：此采血方法动物可致死，多用于小鼠。小鼠倒置，尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出，用眼科弯镊迅速夹去眼球，血液从眼眶中流入EP管。注意不要反复用镊子刺眼眶，容易溶血。每次采血量0.6～0.1 mL。

(4)腹主动脉采血：采血量大，动物致死，多用于大鼠。动物麻醉，仰卧固定，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器抽取血液，速度要慢，防止溶血。小鼠每次可采血1.0～1.5 mL；大鼠每次可采血8 mL以上。