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岩龙胶囊对Lewis肺癌小鼠Bcl-2、Caspase-3及CyclinD1表达的影响

2015-04-26卢秀梅吴万垠

亚太传统医药 2015年9期
关键词:低剂量批号阴性

卢秀梅,李 岩,李 翎,吴万垠

(1.香港岩龙中医药有限公司,中国 香港;2.广州中医药大学第一附属医院 实验中心,广东 广州 510405;3 广东省中医院,广东 广州 510120)



岩龙胶囊对Lewis肺癌小鼠Bcl-2、Caspase-3及CyclinD1表达的影响

卢秀梅1,李 岩1,李 翎2,吴万垠3

(1.香港岩龙中医药有限公司,中国 香港;2.广州中医药大学第一附属医院 实验中心,广东 广州 510405;3 广东省中医院,广东 广州 510120)

目的:研究岩龙胶囊对Lewis 肺癌荷瘤小鼠瘤细胞的Bcl-2、Caspase-3及CyclinD1的表达,探索其抑瘤机制。方法:将40只Lewis 肺癌瘤株转染成功的C57BL/6小鼠随机分为四组: 岩龙胶囊高剂量组、岩龙胶囊低剂量组、阳性对照组、阴性对照组各10只。造模第4天,岩龙胶囊两组均灌胃中药,阳性对照组腹腔注射顺铂注射液,阴性对照组用等体积生理盐水灌胃,均每天1次,共给药10天,并记录小鼠一般情况,造模第14天处死小鼠,测取各项指标。结果:与阴性对照组比较,岩龙胶囊高剂量组和阳性对照组的瘤重明显减小,差异有统计学意义(P<0.05或P<0.001)。岩龙胶囊高、低剂量组和阳性对照组的抑瘤率分别为19.41%、8.68%、39.34%。与阴性对照组比较,岩龙胶囊高剂量组和阳性对照组的肺转移结节数明显减少,差异有统计学意义(P<0.05或P<0.001)。岩龙胶囊高、低剂量组和阳性对照组的肺转移抑制率分别为40%、32.4%、53.3%。与阴性对照组比较,岩龙胶囊高剂量组和阳性对照组能明显降低Bcl-2和CyclinD1的表达,并能提高Caspase-3的表达,差异有统计学意义(P<0.01,P<0.001,P<0.05)。结论:岩龙胶囊对Lewis肺癌小鼠有一定的抑瘤和抗转移作用,机制可能与降低Bcl-2和CyclinD1的表达,提高Caspase-3的表达有关。

岩龙胶囊; Lewis 肺癌;Bcl-2;Caspase-3;CyclinD1;表达

岩龙胶囊是中医肿瘤专家李岩教授所研制,其配方用于恶性肿瘤临床与实验研究有20余年,适用于多种常见恶性肿瘤。该方由蛇莓、龙葵等复方中药组成,功能以清热解毒化瘀为主,扶正为辅。既往Ⅰ期实验证实岩龙胶囊对Lewis肺癌瘤株转染的C57BL/ 6 小鼠有抑瘤和抗肺转移作用[1],并能提高小鼠的CD4表达和降低CD44V6表达[2]。本次Ⅱ期实验进一步研究岩龙胶囊对这类小鼠的Bcl-2、Caspase-3及CyclinD1表达的影响,探讨其抑瘤和抗转移的作用机制。

1 材料及方法

1.1 实验动物

SPF级C57BL/6小鼠,动物许可证号:SCXK(粤)2008-0002。小鼠和SPF级鼠饲料购自广东省医学实验动物中心。小鼠常规饲养,自由饮水。

1.2 实验环境

动物房室温20~25℃,湿度40%~70%,实验环境设施许可证号:SYXK(粤)2008-0092。

1.3 药物

1.3.1 受试药物 岩龙胶囊由广东岩龙肿瘤防治研究所提供,批号:120208。临床用量:2.7g/天(3次/天,3粒/次,0.3g/粒),小鼠等效剂量:0.55g/kg。给药剂量:岩龙胶囊高剂量:等效剂量8倍, 即4.4g/kg;岩龙胶囊低剂量:等效剂量4倍, 即2.2g/kg。给药剂量及方法:0.5mL灌胃给药,每日1次。

1.3.2 阳性对照药 顺铂注射液(DDP),南京制药厂有限公司,批号:20110401,国药准字:H20030675。顺铂注射液为疗效可靠、抗瘤谱广的药物,适用于小细胞与非小细胞肺癌、睾丸癌、卵巢癌、宫颈癌、子宫内膜癌、前列腺癌、膀胱癌、黑色素瘤、肉瘤、头颈部肿瘤及各种鳞状上皮癌和恶性淋巴瘤等的治疗。给药剂量及方法: 0.001g/kg,腹腔注射。

1.3.3 阴性对照 生理盐水,四川科伦药业股份有限公司,批号:T1206011。剂量及方法:0.5mL灌胃,每日1次。

1.4 试剂与仪器

流式细胞试剂Cleaved Caspase-3 (Asp175) (5A1E) Rabbit mAb (PE Conujgate)(Cell Signaling Technology,批号:1212012);BCL-2(C-2)PE(Santa Cruz Biotechnology,批号:G3009);RbmAb to Cyclin D1 (SP4) (FITC) (abcam , 批号:GR84529-1);Goat Anti-Rabbit IgG-PE(二抗),(Santa Cruz Blotechnology,批号:B1412);TritonX-100 (华美生物工程公司 ,批号BR2681);甲醛 (广州市中南化学试剂有限公司,批号:310609);冰醋酸 (天津市永大化学试剂有限公司,批号:20100818);苦味酸 (广州化学试剂厂,批号:20081201-1);无水乙醇(天津科密欧化学试剂有限公司,批号:20120206);AE200型电子分析天平(Mettler);微量移液器(日本NICHIRYO);T25B型组织分散机(马来西亚JKIKA WORKS);TDL-5-A离心机(上海安亭科学仪器公司);流式细胞仪(美国BECKMAN COULTE公司 ALTRA型,四色荧光,配套EXPO 32 采集分析软件)。

1.5 实验方法

1.5.1 动物造模[3]使用已冷存的Lewis肺癌细胞,按每只小鼠0.2mL(约含活细胞 1 × 107个)接种于6~8周龄的C57BL/6小鼠背侧皮下。

1.5.2 实验分组及给药 将有肿瘤生长的小鼠随机分组:岩龙胶囊高、低剂量组,阳性对照组,阴性对照组。每组10只。造模第4天,开始灌胃给药,每天1次,共给药10天。用药后观察小鼠一般情况。造模第14天,处死小鼠,测瘤重,计算抑瘤率;切取瘤体组织测Bcl-2、Caspase-3、CyclinD1,计数肺表面转移结节数。

抑瘤率(%)=(对照组瘤重平均值-用药组瘤重平均值)/对照组瘤重平均值×100%

肺表面转移结节数观察方法:将肺组织于Bouin’s固定液(饱和苦味酸-甲醛-冰醋酸=75∶25∶5)中固定24h,再用无水乙醇浸泡至肺组织颜色恢复,转移灶为白色结节,记录肺转移瘤灶的数目。

肺转移抑制率(%)=(对照组平均肺表面转移结节数-治疗组平均肺表面转移结节数)/对照组平均肺表面转移结节数×100%

瘤体处理:切取瘤体组织约5g,于培养皿上以100目不锈钢滤网上研磨,以PBS液反复滤过冲洗10次,滤液经300目滤纸过滤至流式管中,离心1 200rpm×5min,弃上清。加入2mL PBS液吹打分装成3管,离心1 200rpm×5min,弃上清,分别作Bcl-2、Caspase-3、CyclinD1检测用。

Bcl-2检测方法[4]:于样品中加入1mL 2%多聚甲醛固定,放置15min,离心(1 200rpm× 5min),加入1mL 0.1%TritonX-100(破膜剂),放置15min,离心弃上清液,加入BSA 2mL洗涤,离心弃上清液,加入Bcl-2抗体(1∶50稀释)100μL,混匀,室温放置20min,加入BSA 2mL洗涤1次,弃上清液,加入1mL PBS上流式细胞仪检测。

Caspase-3检测方法[5]:于样品中加入1mL 2%多聚甲醛固定,放置15min,离心(1 200rpm× 5min),加入1mL 0.1%TritonX-100(破膜剂) ,放置15min,离心弃上清液,加入BSA 2mL洗涤,离心弃上清液,加入Caspase-3抗体(1∶50稀释)100μL,混匀,室温放置20min,加入BSA 2mL洗涤一次,弃上清液,加入二抗(1∶50稀释)5μL,混匀,室温放置20min,加入BSA 2mL洗涤1次,弃上清液,加入1mL PBS上流式细胞仪检测。

CyclinD1检测方法[6]:于样品中加入1mL 70%乙醇固定,放置15min,离心(1 200rpm×5min),加入1mL 0.1%TritonX-100(破膜剂) ,放置15min,离心弃上清液,加入BSA 2mL洗涤,离心弃上清液,加入CyclinD1抗体(1∶50稀释)100μL,混匀,室温放置20min,加入BSA 2mL洗涤一次,弃上清液,加入1mL PBS上流式细胞仪检测。

1.6 统计学方法

2 结果

四组小鼠移植瘤株后存活并生长。

2.1 瘤重和抑瘤率

岩龙胶囊对Lewis肺癌细胞荷瘤小鼠干预治疗后,高剂量组和阳性对照组的瘤体重量明显减小,与阴性对照组对比,分别为P<0.05和P<0.001。低剂量组与阴性对照组对比差异无统计学意义。岩龙胶囊高、低剂量组和阳性对照组的抑瘤率分别为19.41%、8.68%、39.34%。详见表1。

表1 岩龙胶囊对肺癌小鼠瘤体重量和抑瘤率的影响 (n=10)

注:与阴性对照组比较:*P<0.05 ,***P<0.001。

2.2 肺转移结节数和肺转移抑制率

岩龙胶囊对Lewis肺癌细胞荷瘤小鼠干预治疗后,高剂量组和阳性对照组的肺转移结节数明显减少,与阴性对照组对比,分别为P<0.05和P<0.001。低剂量组与阴性对照组对比差异无统计学意义。岩龙胶囊高、低剂量组和阳性对照组的肺转移抑制率分别为40%、32.4%、53.3%。见表2。

表2 岩龙胶囊对肺转移结节和肺转移抑制率的影响 (±s)

注:与阴性对照组比较,*P<0.05,***P<0.001。

2.3 Bcl-2、Caspase-3和CyclinD1的表达

岩龙胶囊对Lewis肺癌细胞荷瘤小鼠干预治疗后,高剂量组和阳性对照组能明显降低细胞凋亡抑制基因Bcl-2和细胞周期蛋白CyclinD1的表达,同时能提高细胞凋亡基因Caspase-3的表达。岩龙胶囊高剂量组与阴性对照组比较,对Bcl-2、Caspase-3和CyclinD1的影响中P值分别为P<0.01、P<0.001、P<0.05。阳性对照组与阴性对照组比较,对Bcl-2、Caspase-3和CyclinD1的影响中P值分别为P<0.001、P<0.001、P<0.01。低剂量组与阴性对照组比较差异无统计学意义。详见表3。

表3 岩龙胶囊对肺癌小鼠Bcl-2、Caspase-3及CyclinD1表达的影响 (±s,n=10)

注:与阴性对照组比较,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001。

3 讨论

岩龙胶囊的组方体现了李岩教授早在20多年前中医肿瘤组方的特点,不但考虑整体观念,而且重视“辨证与辨病”相结合。Ⅰ期和Ⅱ期实验结果均表明了岩龙胶囊对Lewis肺癌细胞荷瘤小鼠有一定的抑制肿瘤生长和抗肺转移作用。然而,岩龙胶囊的组方是针对多种恶性肿瘤使用的,在“辨证”上是以蛇莓、龙葵、白英同为君药,以当归、郁金、丹参同作臣药和佐药之用,共奏以清热解毒化瘀为主、扶正为辅之功。在“辨病”的抗癌作用上,既往大量实验证明方中各药均有较强的作用,如蛇莓水提物抗人体肝癌(7721)、胃癌(7901)、食管癌(Eca109)、卵巢癌(SKOV-3)、宫颈癌(Hela)、子宫内膜癌(HEC-1B)、鼻咽癌(BGC-823)、肺癌(NCI-H460)等癌细胞;龙葵抗乳腺癌(MCF-7)、肝癌(SMMC-7721,HepG2)、胃癌(MGC-803)、肉瘤(S180)等癌细胞;白英抗卵巢癌(HO-8910)、宫颈癌(Hela)、肉瘤(S180)(肝癌H22)、白血病(K562)、鼻咽癌(HONE-1)、口腔上皮癌(KB)、肠癌(HT29)等癌细胞;郁金抗白血病(HL60、K562)、胃癌(SGC 7902、MGC 803)、肝癌(Bel 7402)、结肠癌(SW620)等癌细胞;丹参抗舌癌(TCA-83)、肝癌(Ang-2、HepG2)、乳腺癌(MDA-MB-231)、肺癌(NCI-H460)、肠癌(LoVo)、宫颈癌(Hela)胆管癌(HCCC-9810)、前列腺癌(DU145)、子宫内膜癌(KLE)等癌细胞。 因此,本方对多种恶性肿瘤都有较好的疗效。

Bcl-2基因家族是与细胞凋亡有关的基因,包括Bcl-2、Bcl-X和Bax,三者形成细胞调亡的其中一个调控系统,其中Bcl-2属抗调亡基因,其表达的产物可增加多种促调亡因素的抗性,而延长细胞的寿命。其抑制调亡的机制可能与下列因素有关:①抗氧化作用,抑制细胞超氧化物的积累;②与Bax的产物形成异源二聚体Bax/ Bcl-2后,等于减少了导致细胞调亡的Bax/Bax同源二聚体的形成;③影响细胞内Ca2+重新分布,而抑制了某些Ca2+依赖的酶发挥酶解活性[7]。本实验中岩龙胶囊能明显降低该基因的表达,提示岩龙胶囊可以通过降低Bcl-2以促进癌细胞凋亡,可作为其抑制肿瘤一种机制。

Caspase-3基因是与细胞凋亡有关基因的ICE家族(Caspase-1 ~11)中的一员。该家族的成员都具有胱氨酸蛋白酶的活性,可促使细胞调亡。Caspase的激活途径有两个:①死亡受体途径:细胞表面Fas、TNF-α、TRAIL受体与相应配体结合后,可通过活化相关死亡结构域及死亡效应域,顺应激活Caspase-8和Caspase-10、Caspase-6、Caspase-7,最后是Caspase-3而导致细胞调亡;②线粒体途径:细胞内细胞色素C凋亡交互因子(CIFA)分解线粒体中细胞色素C后,细胞色素C与Caspase(Apaf-1)结构域中的P环结合,并激活Caspase-9,再激活Caspase-3而导致细胞调亡[7]。实验中岩龙胶囊能明显提高该基因的表达,提示岩龙胶囊可以通过提高Caspase-3以促进癌细胞凋亡,可作为其抑制肿瘤的另一种机制。

CyclinD1是细胞周期蛋白中CyclinD家族中的三个亚型(D1、D2、D3)之一,是肿瘤细胞正调控因子,调节细胞周期从G1期向S期的转换。CyclinD1与CDK4或CDK6形成复合物后激活CDK,并通过磷酸化其下游关键底物Rb,使其释放出结合的转录因子E2F,促进DNA转录,使细胞跨过G1-S监测点而促进细胞增殖。正常组织中CyclinD1表达较低或不表达,而肿瘤组织中常有CyclinD1的扩增、重排、以及突变,导致蛋白表达产物增多,是多种恶性肿瘤发生的一个重要的因素[8]。本实验中岩龙胶囊能明显降低该基因的表达,提示岩龙胶囊可以通过降低CyclinD1以降低癌细胞增殖,可作为其抑制肿瘤的一种机制。

综上所述,结合两期实验结果,岩龙胶囊对CD4、CD44V6、Bcl-2、Caspase-3和CyclinD1的干预,表明了其对恶性肿瘤的抑瘤机制是多角度和多靶点的,也反映了中医中药治疗恶性肿瘤的复杂机制。

[1] 卢秀梅,吴万垠.岩龙胶囊对Lewis肺癌小鼠的抑瘤作用研究[J].中国医药指南,2013,11 (1):462-464.

[2] 卢秀梅.李岩防治肿瘤学术思想及岩龙胶囊对Lewis肺癌的作用 [D]. 广州:广州中医药大学,2013.

[3] 李春艳,王颖,刘浩,等.C57BL/6 近交系小鼠 Lewis 肺癌动物模型: 建设性描述肺癌损害程度的指标[J].中国临床康复,2003, 7(26) :3582-3583.

[4] 解丽君,赵松,郝娜,等.亚慢性摄入酒精诱导大鼠生精细胞凋亡及其分子机制研究[J]. 毒理学杂志, 2011,25(6):402-405

[5] 李威,易银,吴昊,等.Ⅲ型干扰素信号通路诱导肺癌细胞凋亡的机制研究[J].北京医学, 2011,33 (12):989-992.

[6] 朱艳琴,王凯娟.苦参素注射液对Eca-109细胞周期及CyclinD1、CDK4蛋白表达的影响[J].郑州大学学报:医学版,2008,43(6):1082-1085.

[7] 杨吉成.现代肿瘤基因治疗实验研究方略[M].北京:化学工业出版社,2008:23-26.

[8] 孙晓杰,李 珅.肿瘤分子诊断与靶向治疗[M].上海:第二军医大学出版社,2009:79-81.

(责任编辑:宋勇刚)

2014-11-23

卢秀梅(1974-),女,博士,研究方向为中医治疗肿瘤。

吴万垠(1964-),男,博士,广东省中医院教授,研究方向为中西医结合治疗肿瘤。

R285.5

A

1673-2197(2015)09-0006-03

10.11954/ytctyy.201509003

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