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狂犬病病毒糖蛋白跨膜区和膜内区的替换对其生物学特性的影响

2015-03-09于桂梅周微微祖述龙王子龙葛金英步志高

中国预防兽医学报 2015年8期
关键词:免疫原性滴度日龄

于桂梅,周微微,祖述龙,王子龙,2,陈 曦,葛金英*,步志高*

(1.中国农业科学院哈尔滨兽医研究所 兽医生物技术国家重点实验室/农业部兽医公共卫生重点实验室,黑龙江 哈尔滨 150001;2.河北农业大学 动物医学学院,河北 保定 071000)

狂犬病是由狂犬病病毒(Rabies virus,RV)引起的人和动物神经系统病变,死亡率高达100 %,为重要的人兽共患病之一[1]。RV 为弹状病毒科狂犬病毒属,具有囊膜的单股负链RNA 病毒。该病毒主要编码5 种蛋白:核蛋白(N)、磷蛋白(P)、基质蛋白(M)、病毒RNA 聚合酶(L)和一个糖蛋白(G)[2-4]。其中G 蛋白以三聚体的形式锚定于病毒囊膜表面,并能够与细胞表面的受体结合,介导膜融合使病毒侵入细胞[5]。同时,G 蛋白是RV 主要的抗原蛋白,刺激机体产生中和抗体[6]。

本研究以新城疫病毒(NDV)融合蛋白(F 蛋白)的跨膜区(TM)和膜内区(CT)替换RV G 的相应部分,研究其对G 蛋白在表达G 蛋白的重组NDV(rL-RVGTC)中的表达及相关生物学特性的影响,结果显示TM 和CT 对RV G 的形成病毒蚀斑及免疫原性是必不可少的。

1 材料和方法

1.1 主要实验材料 表达RV G 蛋白的重组NDV(rL-RVG)、重组NDV 弱毒疫苗株rLaSota(rL)、NDV感染克隆pBRN-FL-PmeⅠ、辅助核蛋白(pBS-NP)、磷蛋白(pBS-P)、和大聚合酶蛋白(pBS-L)重组质粒、表达GFP 蛋白的NDV 重组病毒和RV 重组病毒均由本实验室构建;表达T7 聚合酶的重组痘病毒vTF7-3 由Moss 博士惠赠;鸡抗NDV、犬抗RV 高免血清均由本实验室制备[7];FITC 标记兔抗犬IgG(IgG-FITC)、羊抗鸡IgG-TRITC、兔抗鸡IgG-HRP 及羊抗兔IgG-HRP 二抗均购自Sigma 公司。SPF 鸡胚和SPF 雏鸡由本研究所SPF 实验动物中心提供;SPF 级BALB/c 鼠购自北京维通利华公司。

1.2 表达RVGTC基因的重组感染性克隆的构建为将RV G 的TM 和CT 替换为NDV F 蛋白的TM和CT,人工合成嵌合RVGTC 基因,并在其两端分别引入转录调控启动子(GS)、终止子(GE)序列及PmeⅠ酶切位点。经PmeⅠ酶切处理后插入感染性克隆载体pBRN-FL-PmeⅠ中,构建表达RVGTC 基因的pBRN-FL-RVGTC 感染性克隆。

1.3 重组病毒的拯救及鉴定 参考文献[7]的方法拯救病毒。提取血凝阳性的鸡胚尿囊液总RNA。以RV G 蛋白基因特异性引物进行重组病毒RT-PCR 鉴定,并将拯救的重组病毒命名为rL-RVGTC。

1.4 RVGTC蛋白表达的检测 分别将MOI 为0.1的rL、rL-RVG 和rL-RVGTC 感染BHK-21 细胞,24 h后以预冷的3%的多聚甲醛室温固定20 min。分别以犬抗RV(1∶50)和鸡抗NDV(1∶100)为一抗,兔抗犬IgG-FITC(1∶100)和羊抗鸡IgG-TIRTC(1:100)为二抗,采用0.5 μg/mL 的DAPI 进行细胞核染色。利用激光共聚焦显微镜进行间接免疫荧光检测(IFA)。

将rL、rL-RVG 和rL-RVGTC 接 种BHK-21 细胞,培养72 h 后刮取细胞裂解处理后,分别以鼠抗β-actin(1∶5 000)、兔抗RV(1∶50)和鸡抗NDV(1∶100)为一抗,兔抗鸡IgG-HRP(1:2 000)或羊抗兔IgG-HRP(1∶2 000)为二抗,经western blot 进行检测。

1.5 rL-RVGTC扩散方式的观察及其滴度的鉴定以rL、rL-RVG 及rL-RVGTC 分别感染BHK-21 细胞,在感染不同时间点分别固定相应细胞进行IFA检测,观察重组病毒是否形成蚀斑。同时收集相应时间点的细胞培养上清液,利用9 日龄~11 日龄SPF 鸡胚测定其中重组病毒含量(EID50),对比3 种病毒在细胞培养过程中产生子代病毒能力的变化。

1.6 重组病毒的致病性试验及病毒的生长曲线对重组病毒rL-RVGTC F3 代进行鸡胚平均致死时间(MDT)、脑内致病指数(ICPI)及静脉致病指数(IVPI)等致病性指标测定,检测RVGTC 蛋白的表达对NDV 致病性的影响。

以剂量为104.375EID50的rL、rL-RVG 和rL-RVGTC分别接种10 日龄的SPF 鸡胚,每12 h 分别收取5个鸡胚的尿囊液测定其TCID50,直至108 h,并根据测定结果绘制生长动力学曲线。

1.7 重组病毒的免疫试验 24 只6 周龄的BALB/c小鼠随机平均分成两组,分别经肌肉注射途径接种5×107EID50的rL-RVG 和rL-RVGTC,于免疫后第3周和第4 周后采血,测定血清中NDV 和RV 的特异性中和抗体,第4 周进行二次加强免疫,二免后间隔两周(待抗体水平变化平稳后延长采血间隔时间到4 周)采血测定两组小鼠抗体水平变化,比较TM 和CT 的替换对G 蛋白免疫原性的影响。

2 结果

2.1 表达RVGTC基因的重组病毒感染性克隆的构建和重组病毒的拯救 利用人工合成的编码G 蛋白的TM 和CT 序列替换为NDV F 蛋白相应部分RVGTC 蛋白基因插入NDV 感染性克隆pBRNFL-PmeI 中,构建表达嵌合RVG 蛋白RVGTC 的重组NDV cDNA 克隆pBRN-FL-RVGTC。

将pBRN-FL-RVGTC 与表达NDV NP、P、L 蛋白的辅助质粒共转染BHK-21 细胞。收获细胞及上清液接种9 日龄~11 日龄SPF 鸡胚,培养5 d 后收取HA 检测阳性的尿囊液(含有拯救重组病毒)命名为rL-RVGTC。

2.2 重组病毒的RT-PCR鉴定 提取血凝阳性的尿囊液总RNA,利用RT-PCR 方法扩增出约800 bp的片段(图1)。序列分析结果显示,重组病毒基因组的预期位点正确插入了RVGTC 基因及所引入的转录调控序列。

图1 RT-PCR 鉴定重组病毒的RVGTC 基因Fig.1 Identification of recombinant virus of rL-RVGTC by RT-PCR

2.3 RVGTC 蛋白表达的检测 将rL-RVGTC、rL-RVG 和亲本株rL 分别感染BHK-21 细胞,培养24 h 后固定细胞。以鸡抗NDV 和犬抗RV 高免血清为一抗,羊抗鸡IgG-TIRTC 和兔抗犬IgG-FITC 为二抗,DAPI 进行细胞核染色制备共聚焦样品。结果显示以抗NDV 高免血清为一抗,3 株病毒感染的细胞均为阳性,而以犬抗RV 高免血清为一抗,只有rL-RVG 和rL-RVGTC 感染的细胞为阳性。这表明rL 感染的细胞内只有NDV 蛋白表达,而在rL-RVG和rL-RVGTC 感染的细胞内既有NDV 蛋白又有RV G 蛋白的表达(图2)。

分别将rL、rL-RVG 和rL-RVGTC 感染BHK-21细胞72 h 后,刮取细胞裂解处理后以鼠抗β-actin,鸡抗NDV 和兔抗RV 高免血清为一抗,兔抗鸡和羊抗兔IgG-HRP 为二抗,经western blot 分析。并通过测定蛋白浓度确定rL、rL-RVG 和rL-RVGTC 相同的上样量,结果显示rL 感染细胞蛋白样品只检查到一条NDV 特异性条带,而rL-RVG 和rL-RVGTC 感染细胞的蛋白样品能够同时检测到NDV 和RVGTC两条特异性条带,并且rL-RVG 和rL-RVGTC G 蛋白在细胞中的表达量无明显的区别(图3)。

图2 激光共聚焦观察RVGTC 蛋白在重组病毒感染细胞内的表达Fig.2 Immunofluorescence analysis of RVGTC protein expression and subcellular localization examed by LSM

图3 RVGTC 在BHK-21 细胞中表达的western blot 检测Fig.3 Analysis of RVGTC protein expression by western blot

2.4 rL-RVGTC蚀斑形成能力检测 rL、rL-RVG和rL-RVGTC 分别感染BHK-21 细胞,在感染后特定的时间点固定细胞进行IFA 观察其在细胞上的扩散形式。结果表明,rL-RVG 能够从最初感染的细胞扩散到临近细胞,形成病毒蚀斑,而rL-RVGTC与rL 的扩散方式相同,从感染后24 h 到84 h,细胞的感染密度未发生明显改变(图4)。

rL、rL-RVG 和rL-RVGTC 分别感染BHK-21 细胞,在特定的时间点收集感染细胞上清液经鸡胚测定其EID50,测定对比3 种病毒后代的毒力。结果显示,不同时间点上清液rL、rL-RVG 和rL-RVGTC的EID50无明显差异。rL-RVGTC 的滴度在感染后72 h 达到峰值,其病毒滴度与rL 相似,但1/5 log低于rL-RVG(图5)。将一部分上清液在细胞中进行病毒滴定,发现其不能感染细胞。表明RVGTC 没有改变rL-RVGTC 子代病毒的扩散能力。

图4 rL-RVGTC 病毒蚀斑形成的观察Fig.4 Observation of the ability of rL-RVGTC to form virus plaque

图5 重组病毒在感染BHK-21 细胞上清液的病毒滴度Fig.5 Titer of recombinant viruses in the supernatant of infected BHK-21 cells

2.5 重组病毒的致病性分析 重组病毒株rLRVGTC F3 代 的EID50为108.375/0.1 mL;MDT 大 于120 h,ICPI 和IVPI 均为0,该结果表明重组弱毒苗保持了rL 亲本疫苗株对鸡胚的高滴度生长适应和低致病的特性。

以104.375EID50的rL、rL-RVG 和rL-RVGTC 分别接种10 日龄的SPF 鸡胚,每12 h 分别收取5 个鸡胚的尿囊液测定其TCID50。各个时间点rL、rL-RVG和rL-RVGTC 生长滴度没有明显的差异,rL-RVGTC与rL 和rL-RVG 具有相似的生长动力学曲线和相似的病毒滴度。

2.6 rL-RVG与rL-RVGTC在诱导抗体水平的比较通过免疫小鼠血清检测,其中和抗体水平在一免和二免后,rL-RVG 和rL-RVGTC 诱导的相同水平的NDV 中和抗体。然而,rL-RVG 诱导的RV 抗体水平显著高于rL-RVGTC。一免后,免疫rL-RVG 的一组小鼠83.3 %以上中和抗体达到到有效提供免疫保护水平,而免疫rL-RVGTC 的一组小鼠只有33.3 %的小鼠的中和抗体达到免疫保护水平(图6)。

图6 rL-RVG 和rL-RVGTC 在小鼠体内诱导产生的病毒中和抗体水平Fig.6 VNA levels induced by recombinant viruses

3 讨论

本实验室前期构建了表达RV G 的重组新城疫病毒rL-RVG,结果表明在G 蛋白的作用下,rL-RVG 能够从感染细胞扩散到周围细胞,形成明显的病毒蚀斑[8]。同时,rL-RVG 能在小鼠体内引发针对RV 的剂量依赖性的有效的持久的保护[8]。此外,PV 株和CVS 株的RV G 蛋白替换其TM 和CT后只能以单聚体的形式存在,免疫原性下降[9]。

为研究TM 和CT 对ERA 株RV G 蛋白表达,病毒蚀斑形成和免疫原性的影响。在本研究中,我们将RV G 蛋白的TM 和CT 用NDV F 蛋白的相应部分进行替换,将嵌合RV G 蛋白插入到NDV 载体拯救病毒后进行检测。IFA 和western blot 结果显示RV G 和RVGTC 在BHK-21 细胞水平上表达量没有显著差异,表明TM 和CT 的替换对RVG 自身的表达影响不大。但TM 和CT 的替换改变了G 蛋白的融合能力,使rL-RVGTC 病毒失去了在BHK-21 细胞上形成病毒蚀斑的能力。这与文献中报道的RV G 替换TM 和CT 后以单体的形式存在,不能发生相应构象的变化的结果是一致的[9]。这进一步证明了RVG TM 和CT 对其三聚体的形成以及其扩散作用是必需的。

TM 和CT 的替换对rL-RVGTC 生长动力学几乎没有影响,无论是在鸡胚还是在细胞上的复制均无明显改变,但其免疫原性明显下降,这有可能是因为RVGTC TM 和CT 的替换影响了其膜外区的折叠[9],从而使有效的抗原表位减少。证明TM 和CT 对RV G 有效的免疫原性有重要作用。

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