费维新， 王淑芬， 胡宝成， 李强生， 侯树敏， 荣松柏， 吴晓芸

（1.安徽省农业科学院作物研究所，国家油料作物改良中心合肥分中心，安徽省农作物品质改良重点实验室，合肥 230031；2.安徽省黄山市农业科学研究所，黄山 245000）

不同杀菌剂对油菜根肿病的防效及对油菜产量损失的影响

费维新1， 王淑芬2， 胡宝成1， 李强生1， 侯树敏1， 荣松柏1， 吴晓芸2

（1.安徽省农业科学院作物研究所，国家油料作物改良中心合肥分中心，安徽省农作物品质改良重点实验室，合肥 230031；2.安徽省黄山市农业科学研究所，黄山 245000）

本研究使用5种杀菌剂和1种微肥于油菜苗期2～3片真叶期进行灌根处理，以传统的石灰处理方法比较，评价不同处理对油菜根肿病的防治效果和对油菜产量损失的影响。5种杀菌剂处理、微肥以及石灰处理均对油菜根肿病有较好的防效，其中50%多菌灵可湿性粉剂防效达90.82%；从产量损失方面比较，10%氰霜唑悬浮剂、50%多菌灵可湿性粉剂，75%百菌清可湿性粉剂和60%硫磺·敌磺钠可湿性粉剂处理可显著减少根肿病引起的产量损失；50%氟啶胺悬浮剂处理较对照增产不显著，而且对油菜生长有抑制作用；油菜根肿病的病情指数与油菜产量呈显著的负相关性，相关系数r＝－0.796 2，油菜产量（y）与病情指数（x）的回归方程为y＝－32.65x+2 372。

甘蓝型油菜； 根肿病菌； 杀菌剂； 防治效果； 产量损失

油菜根肿病主要发生在苗期。油菜幼苗时期（2～6片真叶）植株根部的表皮层较薄，根肿病菌易侵染危害并且快速发展，6叶期以后病菌侵染速度减慢，当土壤温度在10℃以下时不会发生皮层细胞的侵染［9-10］。根肿病的综合防治主要利用抗病品种、生物防治、化学防治等方法。抗病品种的利用是防治根肿病最经济有效的措施，但我国油菜根肿病抗病育种起步晚，尚未育成抗根肿病的油菜品种［11］；生物防治如根肿病生防菌枯草芽胞杆菌等的利用在大白菜等蔬菜作物上取得了很好的防治效果［12］；目前根肿病化学杀菌剂主要是在十字花科蔬菜作物上应用，但在油菜上的报道较少。本文根据油菜根肿病的发病特点，利用不同药剂对油菜根肿病进行苗期灌根处理和播种前土壤石灰处理相比较，研究药剂对油菜苗期根肿病防效及与油菜产量损失的关系，筛选出适合控制油菜根肿病、减少油菜产量损失的有效药剂，提出相应的防病技术措施，保障油菜的安全生产。

1 材料与方法

1.1 试验设计

试验地点位于安徽省休宁县齐云山镇张村的油菜根肿病病圃，试验病圃面积为1 000 m2，上茬为水稻；试验品种为‘核优56’（安徽省农业科学院作物研究所选育，经田间鉴定为根肿病感病品种），试验处理为氟啶胺、氰霜唑、多菌灵、百菌清、硫磺·敌磺钠、微肥水剂和石灰等7个，另设空白对照，共8个处理，试验小区面积20 m2，设4次重复，按照随机区组排列，密度为15万株/hm2，在病害调查取样后定苗。

播种与药剂施用方法：采用直播穴播方式播种。石灰处理的小区采用整地前每小区均匀撒施石灰4 kg于土壤中，然后再整地打穴。药剂灌根处理的小区自苗期（2叶期）开始进行药剂灌根处理，药剂浓度按照生产厂家推荐用量配制；先将药剂稀释成母液，再稀释成药液，用水舀沿油菜根部浇灌，淋水深度达到15 cm，每小区用药液量85 L，每隔10 d灌根1次，连续4次，药液浓度详见表1。

表1 试验所用杀菌剂的浓度及其生产厂家Table 1 The concentration and manufacturers of fungicides used in this study

1.2 测产与病害调查方法

产量测定：油菜成熟期分小区按实际收获进行测产，并折合成单位面积产量（kg/hm2）。病害调查：油菜出苗后90 d，在每小区采用5点取样法，每点取样50株，调查油菜根肿病的发病情况。

油菜根肿病分级标准：采用郭向华的方法［13］，分级标准如下。

0级：根部无肿大；

1级：主根肿大，其直径小于2倍茎基，或须根有小肿瘤；

3级：主根肿大，其直径为茎基的2～3倍；

5级：主根肿大，其直径为茎基的3～4倍；

7级：主根肿大，其直径为茎基的4倍以上。

1.3 数据统计方法

病株率（%）＝发病株数/调查总株数×100；

病情指数＝∑（病株数×相应级别）/（调查总株数×最高级别）×100；

防治效果（%）＝（对照区病情指数－药剂处理区病情指数）/对照区病情指数×100。

比较各小区病情指数，计算防治效果。采用Excel软件整理试验原始数据并进行相关回归统计分析；利用SAS 9.1软件对试验数据进行方差分析和显著性分析。

2 结果与分析

2.1 不同药剂处理对油菜苗期根肿病发病的影响

油菜苗期根肿病发病情况调查结果表明，7个处理对油菜根肿病均有较好的防治效果。经多重比较5种杀菌剂苗期灌根处理的油菜根肿病发病率和病情指数与空白对照达极显著差异，其中50%多菌灵可湿性粉剂处理的发病率为（6.28± 5.24）%，病情指数为2.43±1.80，防治效果达90.82%，防效最好。传统的石灰处理法的病情指数为14.95±4.80，防治效果达43.57%，与对照的病情指数差异极显著。50%氟啶胺悬浮剂灌根处理的病情指数16.61±5.83，与石灰处理的防效相当，在5种杀菌剂处理中防效较差。MO1微肥水剂灌根处理对油菜根肿病的发病率和病情指数均无显著影响（表2）。

表2 不同处理的油菜根肿病发病与防治效果的差异1）Table 2 Differences in disease incidence and control effect of different treatments

2.2 不同药剂处理对油菜产量与株高的影响

根据小区试验产量与株高测定的结果，7个处理小区的产量较空白对照区表现增产，药物处理对油菜的株高有一定影响（表3）。从产量损失的测定结果来看，4种杀菌剂氰霜唑、多菌灵、百菌清和硫磺·敌磺钠处理的油菜产量达2 000 kg/hm2以上，极显著高于空白对照（1 440±79.9）kg/hm2的小区产量，10%氰霜唑灌根处理小区的产量高达（2 427±462.2）kg/hm2。MO1微肥对感病油菜有提高产量的作用。50%氟啶胺灌根处理的小区产量（1 556±90.6）kg/hm2略高于空白对照，但是差异未达到显著水平；从药剂对植株生长的影响来看，氟啶胺对油菜植株有一定的抑制作用，该处理平均株高仅158.3 cm，较对照（CK）株高174.5 cm低16.2 cm，比百菌清处理株高185.7 cm低27.4 cm。

表3 不同药剂处理对油菜产量及株高的影响1）Table 3 Effect of different treatment on rapeseed yield and plant height

2.3 油菜根肿病发病率、病情指数与产量损失的关系

对油菜产量与根肿病发病率、病情指数的回归相关分析结果（表4）表明，产量与发病率、病情指数均呈负相关，相关系数分别为r＝－0.768 1、r＝－0.796 2，均达到显著水平。不同处理间病情指数与发病率呈正相关，相关系数r＝0.993 0，r0.01＝0.834 3，达极显著水平。由于目前药剂对根肿菌主要是起到保护性杀菌作用，药剂处理对根肿菌侵入根部后的影响较小，因此控制油菜根肿病的发病率是控制油菜根肿病危害的关键。发病率与病情指数是判定油菜根肿病发病情况的2个重要指标，发病率的判断比较直观，实际操作中易于量化掌握，因此在生产实际中可以通过发病率这个指标来初步 预测评估产量损失。

表4 回归方程相关系数的显著性检测1）Table 4 Significance analysis of correlation coefficient of regression equation

3 讨论与结论

油菜根肿病的侵染主要发生在油菜幼苗期，幼苗的根系表皮细胞容易被根肿菌休眠孢子萌发形成的游动孢子侵入定殖，同时根肿病的发生危害易受环境的影响，苗期降雨少、土壤干旱、温度低都不利于根肿菌休眠孢子的萌发侵染。因此根据油菜苗期的环境变化，在苗期油菜根肿病的关键侵染发病时期，开展药剂防治有利于控制油菜根肿病。孙道旺等［14］发现在苗期应用75%百菌清灌根2次对白菜根肿病有效。陈坤荣等［15］报道氟啶胺和氰霜唑拌种对直播油菜根肿病的防病效果分别为75.4%～95.3%和35.1%～49.8%。康晓慧等［16］报道了用50%多菌灵可湿性粉剂于油菜3叶期进行灌窝处理，防效可达82.5%～87.6%，增产效果好。本试验采用的5种杀菌剂于油菜苗期2～3片真叶期进行灌根处理，均有很好的防治效果，其中10%氰霜唑悬浮剂和50%多菌灵可湿性粉剂在防效和提高产量方面表现最好；50%氟啶胺悬浮剂对油菜生长有一定的抑制作用，对产量影响不显著，不推荐在油菜生产中使用；MO1微肥对油菜根肿病的控制效果不显著，但可以促进油菜的生长减少病害危害带来的产量损失。

在根肿病防治中石灰处理是农户普遍使用的传统防治方法，起到改良酸性土壤与控制病害的作用，在发病区域可起到减少产量损失的作用，方法简便成本低廉，但长期使用可带来土壤板结。杀菌剂的防治效果要明显好于石灰处理，但是杀菌剂使用方法繁琐成本较高。因此建议在油菜根肿病重病区以杀菌剂为主结合传统方法石灰处理，而在油菜根肿病较轻的发病区应以石灰处理为主和杀菌剂处理相结合在生产上交替使用以减轻油菜根肿病带来的损失，同时避免长期使用石灰造成土壤板结。对根肿病发病后的油菜苗可通过使用微肥促进油菜生长，减少产量损失。另外在实行油菜移栽的区域采用苗床上药剂灌根，以减少移栽后大田油菜的发病率；针对直播油菜区可以考虑药剂拌种和种子包衣技术相结合，减少用药成本和人工投入，在早期防治油菜根肿病发生，减少后期油菜的产量损失。

［1］ Dixon G R.Clubroot（Plasmodiophora brassicaeWoronin）-an agricultural and biological challenge worldwide［J］.Canadian Journal of Plant Pathology，2014，36（S1）：5 18.

［2］ Tommerup I C，Ingram D S.The life-cycle ofPlasmodiophora brassicaeWor.inBrassicatissue cultures and intact roots［J］. New Phytologist，1971，70：327 332.

［3］ Buczacki S T，Ockendon J G，Freeman G H.An analysis of some effects of light and soil temperature on clubroot disease［J］.Annals of Applied Biology，1978，88（2）：229 238.

［4］ 孙保亚，沈向群，郭海峰，等.十字花科植物根肿病及抗病育种研究进展［J］.中国蔬菜，2005（4）：34 37.

［5］ Tewari J P，Strelkov S E，Orchard D，et al.Identification of clubroot of crucifers on canola（Brassicanapus）in Alberta［J］. Canadian Journal of Plant Pathology，2005，27（1）：143 144.

［6］ Srelkov S E，Manolili V P，Rennie D C，et al.The occurrence of clubroot on canola in Alberta in 2010［J］.Canadian Plant Disease Survey，2011，91：109 111.

［7］ 唐文华.北京十字花科蔬菜根肿病的发生和鉴定［J］.植物保护，1990，16（1）：17 18.

［8］ 袁永凯.油菜根肿病发生及防治研究［J］.植物医生，1995，8（5）：25 27.

［9］ Kageyama K，Asano T.Life cycle ofPlasmodiophora brassicae［J］.Journal of Plant Growth Regulation，2009，28（3）：203 211.

［10］Sharma K，Gossen B D，McDonald M R.Effect of temperature on cortical infection byPlasmodiophora brassicaeand clubroot severity［J］.Phytopathology，2011，101（12）：1424 1432.

［11］刘勇，黄小琴，柯绍英，等.四川主栽油菜品种根肿病抗性研究［J］.中国油料作物学报，2009，31（1）：90 93.

［12］何月秋，熊国如，范成明.十字花科根肿病的生物防治［C］∥中国植物病理学会2008年学术年会论文集.北京：中国植物病理学会，2008：568.

［13］郭向华.甘蓝根肿病菌的生物学特性及致病研究［D］.重庆：西南农业大学，2001.

［14］孙道旺，杨家莺，杨明英，等.75%达克宁防治白菜根肿病产量损失测定及残留分析［J］.西南农业学报，2002，17（2）：189 191.

［15］陈坤荣，任莉，刘凡，等.三种杀菌剂防治油菜根肿病技术研究［J］.中国油料作物学报，2013，35（4）：424 427.

［16］康晓慧，张梅，路少林，等.油菜根肿病的药剂防治及其保护效果试验分析［J］.中国植保导刊，2009，29（12）：36 37.

Control effect of different fungicides on clubroot and yield loss caused byPlasmodiophora brassicaeinBrassica napus

Fei Weixin1， Wang Shufen2， Hu Baocheng1， Li Qiangsheng1， Hou Shumin1， Rong Songbai1， Wu Xiaoyun2
（1.Crop Research Institute of Anhui Academy of Agricultural Sciences，Hefei Branch of National Center
of Oilseed Crops Improvement，Anhui Key Laboratory of Crop Quality Improvement，Hefei230031，
China；2.Huangshan Institute of Agricultural Sciences，Huangshan245000，China）

In this study，five fungicides and one micro element fertilizer，by root-drenching method during rapeseed seedling stage（2 to 3 true leaves），and lime treatment，a traditional control method，were chosen to evaluate the control effect on clubroot and yield loss caused byPlasmodiophora brassicaeinBrassica napus.Five fungicides，microelement fertilizer and lime treatments have good control effect on clubroot.Control efficacy of 50% carbendazim WP reached 90.82%.10%cyazofamid SC，50%carbendazim WP，75%chlorothalonil WP and 60% sulfur·fenaminosulf WP could significantly reduce the yield loss caused by rapeseed clubroot，while 50%fluazinam SC had no effect，but inhibited the growth of rapeseed plants.There was significantly negative correlation between rapeseed production and disease index（r＝－0.796 2），and the regression equation of yield（y）and disease index（x）wasy＝－32.65x+2 372.

Brassica napus；Plasmodiophora brassicae； fungicide； control effect； yield loss布，尤以温带地区发生严重［4］。如澳大利亚的维多利亚地区，甘蓝受根肿病危害面积达70%，病害引起甘蓝型油菜产量降低50%以上。加拿大油菜根肿病蔓延发展很快，在阿尔伯特省2003年仅发现800 hm2的油菜感染根肿病［5］，到2010年已扩展为35 000 hm2，其根肿病发病地块油菜产量损失可达到30%以上，严重发病地块甚至达100%，造成油菜绝收［6］。根肿病在我国大部分省、市、自治区均有分布，长期以来主要发生在十字花科蔬菜上［7］，近年来油菜根肿病的危害程度上升和发生区域不断扩大，四川、贵州、湖北、安徽等地油菜根肿病呈逐年加重的趋势［8］。

S 435.654

B

10.3969/j.issn.0529 1542.2015.01.042

2014 01 22

2014 06 08

科技部国家科技支撑计划课题（2010BAD01B04）；国家油菜现代产业技术体系（CARS-13）；安徽省重点实验室绩效考核补助（1306c083011）；安徽省财政专项学科建设（13A0208）

联系方式E-mail：feiweixin@foxmail.com

根肿病（clubroot disease）是由专性寄生菌芸苔根肿菌（Plasmodiophora brassicae）侵染引起的一种土传病害，主要危害十字花科作物［1-2］，温暖（土温10～30℃，适温19～25℃）、湿润（相对含水量60%～98%）的弱酸性土壤有利于根肿病的发生［3］。该病最早发现于地中海西岸和欧洲南部，现世界各地均有分