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酶联免疫法测定鸡肉中尼卡巴嗪残留

2014-11-29王鹤佳刘智宏黄耀凌

中国兽药杂志 2014年3期
关键词:卡巴缓冲液鸡肉

王鹤佳,刘智宏,汪 霞,黄耀凌,孙 雷

(中国兽医药品监察所,北京,100081)

尼卡巴嗪(Nicarbazine)又名球虫净,是一种广谱抗球虫药物,其为 4,4’-二硝基均二苯脲(DNC)和2-羟基-4,6-二甲基嘧啶(HDP)的等分子复合体,其中DNC含量为 67.4% ~73.0%。DNC-HDP复合体的抗球虫活性约为DNC的10倍。尼卡巴嗪对鸡、火鸡等禽类球虫病均有很好的预防和治疗效果,但蛋鸡使用尼卡巴嗪后,可导致蛋壳色素沉着,孵化率降低[1]。我国农业部公告第235号《动物性食品中兽药最高残留限量》规定,尼卡巴嗪的标志残留物为DNC,在鸡肌肉、肝脏、肾脏、皮/脂肪中的最高残留限量均为 200 μg/kg,,同时还明确规定蛋鸡产蛋期禁用[2]。

尼卡巴嗪在畜禽产品中的测定方法主要有酶联免疫检测法[3-5]、高效液相色谱法、高效液相色谱-质谱法[6]和高效液相色谱 - 串联质谱法[7]。国内尚无商品化的酶联免疫检测试剂盒。试验通过人工抗原制备、动物免疫,获得抗DNC的抗体,并在基础上建立了鸡肉中尼卡巴嗪残留酶联免疫检测方法,其在灵敏度、准确度和精密度等方面能够满足鸡肉中尼卡巴嗪残留检测要求。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 试剂 牛血清白蛋白、兔血清白蛋白、弗氏完全佐剂,弗氏不完全佐剂、碳二亚胺(Carbodiimide),N-琥珀酰-L-丙氨酰-L-丙氨酰-L-丙氨酸-4-硝基苯胺(N-succinyl-L-alanyl-L-ananyl-L-alanine-4-Nitroanilide,SAN),均购自 sigma公司;酶标羊抗兔抗体为本实验室自制;DNC标准品,德国WITEGA公司;其他化学试剂均为分析纯。

1.1.2 溶液 洗涤缓冲液:0.05 mol/L磷酸盐缓冲液,0.05%Tween -20,pH7.2。封闭液:5% 脱脂奶磷酸盐缓冲液。包被缓冲液:0.05 mol/L碳酸盐缓冲液(pH9.5)。标准溶液:0、0.2、1、5、25、125 μg/L DNC标准品溶液。底物溶液:0.01%TMB,以0.1 mol/L磷酸盐-柠檬酸缓冲液(pH5.0)配制。样品稀释液:20%甲醇水溶液。

1.1.3 仪器 酶标读数仪,型号SUNRISE,TECAN公司;台式高速冷冻离心机,型号Biofuge stratos,Heraeus公司;漩涡振荡器,型号MS2,IKA公司;电子天平,型号AE240,梅特勒公司。

1.1.4 动物 新西兰大耳白兔,北京维通利华实验动物技术有限公司提供。

1.2 方法

1.2.1 DNC人工抗原的合成 用碳二亚胺法分别将SAN与牛血清白蛋白和兔血清白蛋白偶联作为免疫抗原及检测抗原[8],于-20℃保存。采用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定免疫抗原分子量,由公式(Ma-Mp)/Mt计算蛋白与药物结合比,其中Ma为合成抗原分子量,Mp为载体分子量,Mt为DNC分子量。

1.2.2 DNC抗体的制备和鉴定 以免疫抗原免疫白兔,首次免疫用2 mg/mL免疫抗原(以载体蛋白计)1 mL,加等量弗氏完全佐剂乳化,背部皮内多点注射。每隔2~3周加强免疫一次,用1 mg/mL免疫抗原加等量弗氏不完全佐剂,肌肉注射。最后一次免疫后10 d采血,用竞争ELISA法测定抗体效价和对100 μg/L尼卡巴嗪的抑制率。抗体效价和抑制率达到要求后,兔颈动脉放血,提取血清,于-20℃保存。

1.2.3 竞争ELISA的建立 将检测抗原用包被缓冲液稀释,包被酶联板,每孔150 μL,2~8℃放置过夜。倾去孔内液体,拍干,每孔加入封闭液250 μL,室温放置2 h,倾去孔内液体,拍干备用。每孔加入50 μL标准(或样品)溶液和50 μL抗体溶液,室温孵育1 h。倾去孔内液体,拍干,洗液洗板3次,每孔加入酶标抗体溶液100 μL,室温孵育30 min。倾去孔内液体,拍干,洗液洗板3次。加入底物溶液100 μL,避光显色20 min。每孔加入终止液100 μL,在450 nm波长处测定吸光度值。

1.2.4 标准曲线 选择从0到1000 μg/L系列浓度的标准溶液,按.1.2.3方法测定。采用R-biopharm软件,以抑制率为纵坐标,以DNC浓度为横坐标,绘制样条标准曲线,确定标准曲线工作范围。

1.2.5 50%抑制浓度(IC50) 确定合适的标准曲线工作浓度范围后,重复测定标准曲线15次,确IC50范围。

1.2.6 交叉反应率 选择尼卡巴嗪同类药物、类似物或可能联合使用药物,按1.2.3方法测定IC50,计算交叉反应率。交叉反应率=DNC IC50/待测药物IC50×100%。

1.2.7 样品前处理方法 鸡肉匀质后,称取2±0.02 g,置于50 mL 离心管内,加乙腈8.0 mL,涡旋,超声10 min,5000 r/min 离心 10 min。取上清液 4.0 mL于40~50℃下氮气吹干,加正己烷1.0 mL,加75%甲醇水溶液1.0 mL,充分涡旋混合,2000 r/min离心10 min,取下层溶液,用样品稀释液5倍稀释后供酶联免疫法测定。

1.2.8 检测限 取经确认不含待测药物的20个不同来源的鸡肉样品作为空白鸡肉样品,计算测定值的平均值和标准差,鸡肉中DNC检测限为平均值加3倍标准差。

1.2.9 准确度与精密度 取空白鸡肉样品,加入DNC标准溶液,使其添加浓度分别为50、100和200 μg/kg。每个浓度制备样品6份,测定样品浓度,重复3次。计算回收率和相对标准偏差。

2 结果

2.1 抗原和抗体的制备与鉴定 本试验合成的SAN-人血清白蛋白经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定,分子量约为70 kD,SAN与蛋白结合比约为12∶1。根据报道,免疫抗原中半抗原与载体蛋白的结合比一般以5∶1~25∶1为宜,因此本抗原适宜作为免疫抗原。抗体效价为1∶2000倍。

2.2 检测方法的确定 用方阵滴定法对ELISA方法条件进行优化,检测抗原以4000倍稀释、抗DNC抗体以2000倍稀释、酶结合物以2000倍稀释、抗体与药物反应时间为1 h、酶结合物反应时间为30 min、底物反应时间为10~30 min、、抗体与药物体积比为50 μL∶50 μL、反应温度在 25℃时,最大吸光度值在1.5左右。

2.3 标准曲线 标准曲线浓度点确定为0、0.2、1.0、5.0、25.0、125 μg/L。标准曲线见图1。图中抑制率为纵坐标,DNC 浓度为横坐标,IC50为10.3μg/L。

2.4 50%抑制浓度(IC50) 统计15次IC50测定结果,其变动范围为10.0 ~19.3 μg/L(表1)。

表1 标准曲线50%抑制浓度(IC50)测定结果(μg·L-1)

2.5 检测限 鸡肉中DNC测定平均值为1.34 μg/kg,标准差为 2.62 μg/kg,检测限为 9.20 μg/kg。

2.6 特异性 测定DNC、尼卡巴嗪原料药、地克珠利、盐霉素等8种药物的IC50,计算交叉反应率,结果见表2。

表2 DNC抗体与尼卡巴嗪原料药等8种药物的交叉反应率

特异性试验结果表明,抗体对DNC和尼卡巴嗪原料药均有反应,与尼卡巴嗪原料药的交叉反应率为50%,这与原料药中约含有50%的DNC相一致。2.7 准确度与精密度 DNC以50、100和200 μg/kg三个浓度水平添加至空白鸡肉样品中,回收率范围在49.4% ~118%之间,批内、批间变异系数均小于20%。

表3 鸡肉中DNC准确度和精密度结果

3 讨论

3.1 半抗原的选择 农业部公告第235号规定尼卡巴嗪的残留标志物为DNC,但DNC分子中不具有与载体蛋白偶联的活性基团,故选择与DNC结构类似且具有活性基团的谷氨酸-γ-ρ-硝基苯胺[glutamic acid gamma-(ρ-nitroanilide),GAN]和SAN两种化合物作为半抗原,分别对其结构进行改造后,再与大分子蛋白偶联。免疫动物后获得两种抗体,结果表明由SAN免疫获得的抗体效价远高于GAN,故选择SAN抗体进行后续试验。

3.2 溶剂的选择 DNC标准品溶解性差,不溶于甲醇、乙腈等溶剂,仅能溶解于N,N-二甲基甲酰胺(DMF)和二甲亚砜(DMSO)中,由于DMSO具有刺激性气味,故选择DMF做为溶剂。此外,通过对多种试剂的摸索,最终选择20%甲醇水溶液作为样品稀释液,既能满足样品溶解性的要求,又可将有机溶剂对酶联免疫反应的影响降至最低。

[1] 中国兽药典委员会.中华人民共和国兽药典兽药使用指南[M].北京:中国农业出版社,2011:179-180.

[2] 中华人民共和国农业部公告235号.动物性食品中兽药最高残留限量[S].

[3] Huet A,Mortier L,Daeseleire E,et al.Screening for the coccidiostats halofuginone and nicarbazine in egg and chicken muscle:development of an ELISA[J].Food Additives and Contaminants,2005,22(2):128-134.

[4] Lisa C,Terence L F,Steven R H,et al.The production and characterisation of dinitrocarbanilide antibodies raised using antigen mimics[J].Journal of Immunological Methods,2002(264):45-51.

[5] Hagren V,Crooks S,Elliott R H,et al.An all-on- line dry chemistry immunoassay for the screening of coccidiostat nicarbazin in poultry eggs and liver[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2004,52(9):2429 -2433.

[6] 章 虎,吴俐勤,杨彩梅,等.尼卡巴嗪残留量测定和安全性分析[J].现代科学仪器,2005,1:58-60.

[7] 孙 雷,张 骊,刘智宏,等.鸡蛋和鸡肉中尼卡巴嗪残留检测高效液相色谱-串联质谱法研究[J].中国兽药杂志,2008,42(5):1-4.

[8] 杨利国,胡少昶,魏平华,等.酶免疫测定技术[M].南京:南京大学出版社,1998:395-400.

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