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野生和栽培金铁锁抗氧化活性比较

2013-06-23黄建华肖建青刘锡葵

中国医药指南 2013年2期
关键词:铁锁正丁醇乙酸乙酯

黄建华肖建青刘锡葵*

(1 中国科学院昆明植物研究所植物化学与西部植物资源持续利用国家重点实验室,云南 昆明 650201;2 中国科学院研究生院,北京 100049)

野生和栽培金铁锁抗氧化活性比较

黄建华1,2肖建青1刘锡葵1*

(1 中国科学院昆明植物研究所植物化学与西部植物资源持续利用国家重点实验室,云南 昆明 650201;2 中国科学院研究生院,北京 100049)

目的 野生和栽培金铁锁抗氧化活性比较。方法 以 Vc 和 BHA 为参照,采用 DPPH 方法对野生和栽培金铁锁根乙醇、石油醚、乙酸乙酯、正丁醇和水提取物抗氧化活性进行测试。结果 野生和栽培金铁锁根乙酸乙酯、正丁醇提取物抗氧化活性 IC50 值分别为443μg/mL、1265μg/mL 和 378μg/mL、1877μg/mL。结论 ①野生和栽培金铁锁各提取物抗氧化活性基本一致;②无论野生还是栽培金铁锁抗氧化作用都比较弱;③无论栽培还是野生金铁锁,抗氧化活性物质基本都集中在乙酸乙酯提取物和正丁醇提取物之中,均以乙酸乙酯提取物最强;④虽然栽培金铁锁乙酸乙酯提取物抗氧化活性要强于野生金铁锁、野生金铁锁正丁醇提取物抗氧化活性要强于栽培金铁锁,但相对于阳性对照 Vc和BHA来说均很小,差异并不是很明显。

金铁锁;DPPH;抗氧化活性

金铁锁(Psammosilene tunicoides W.C. Wuet C.Y.Wu)为石竹科单属单种植物,别名独定子、小霸王、昆明沙参、金丝矮陀陀、土人参、对叶七、麻参等,主要分布于我国云南的大部分地区、贵州西北部、四川西南部和西藏东南部,为我国西南地区特有物种[1]。始载于《滇南本草》,以根入药,有散瘀定痛、止血、消痈排脓散瘀、祛风除湿的功效[2]。味苦、辛,性温,有小毒。归肝经。用于治疗跌扑损伤、风湿痹痛、胃寒痛、疮疖及创伤出血等症[3],是多种著名中药的组成成份,如:云南白药系列、云南红药胶囊、贵州金骨莲胶囊、福建痛血康胶囊等[4]。化学研究表明金铁锁主要含有齐墩果烷型五环三萜皂苷、环肽及有机酸等化合物[5-13]。药理研究证明,金铁锁水煎浸膏及其总皂苷对实验性类风湿性关节炎大鼠灌胃后具有显著的镇痛、抗炎作用[14-16];对慢性增殖性炎症、抑菌有一定的作用[3];对免疫细胞具有一定的增强和调节作用[17]。

中药的抗菌、消炎和增强免疫调节作用,一般与抗氧化活性具有一定的相关性,具有重要的作用,通过清除人体内自由基,还原氧化物质,从而达到保护和促进机体的作用[18,19]。关于金铁锁的抗氧化活性未见文献报道,本文采用DPPH方法,应用Vc和BHA为参照,通过对野生和栽培金铁锁根的抗氧化作用进行比较分析,探讨野生和栽培金铁锁活性的差异,为金铁锁的人工栽培提供科学依据。

1 材料与仪器

1.1 仪器与试剂

722 S型可见分光光度计:上海精密科学仪器有限公司生产;FA 2004型电子天平:上海精密科学仪器有限公司生产。DPPH(1,1-二苯基-2-苦基肼自由基)和BHA(叔丁基羟茴香醚):为Sigma-Fluka公司产品;Vc:国产分析纯试剂;95%乙醇,分析纯,天津化学试剂有限公司;其他溶剂均为国产分析纯。

1.2 药材

栽培金铁锁于2010年10月采自云南武定县,野生金铁锁根于2010年11月购于云南白药集团,经鉴定均为金铁锁(Psammosilene tunicoides W. C. Wu et C. Y.Wu),标本均保存于中国科学院昆明植物研究所植物化学与西部植物资源持续利用国家重点实验室。

2 方 法

2.1 样品的提取

野生金铁锁根部5kg、栽培金铁锁根部2kg分别粉碎后用80%乙醇浸提6次,每次浸提时间1d,减压回收至无乙醇味,分别得到乙醇提取物1370g、184g。乙醇提取物分别用2倍体积的蒸馏水混悬后依次用等体积石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取3~5次,合并相同萃取溶剂分别减压回收溶剂得石油醚提取物5.6g、1.0g,乙酸乙酯提取物22.4g、3.4g,正丁醇提取物257g、60.3g,水提取物886g、102g,作为待测样品。

2.2 抗氧化活性测定[20]

2.2.1 DPPH液的配制

准确称取DPPH试剂25mg,用95 %分析纯的乙醇溶解,并定量转入250mL容量瓶中,用95%乙醇定容,摇匀,得质量浓度为100mg/L(约2.5×10-4mol/L)的DPPH储备液,置于冰箱中冷藏备用。

2.2.2 样品溶液的配制

准确称取以上待测试的样品10.0mg,溶解在分析纯的乙醇中,并转入25mL的容量瓶中,用乙醇定容,摇匀,得质量浓度为400mg/L的样品溶液,置于冰箱中冷藏备用。

2.2.3 BHA标准溶液的配制

准确称BHA样品2.5mg,溶解在分析纯的乙醇中,并转入100 mL的容量瓶中,用乙醇定容,摇匀,得质量浓度为25mg/L的样品溶液,置于冰箱中冷藏备用,作为阳性对照样品。

2.2.4 VC标准溶液的配制

准确称Vc样品1.5mg,溶解在分析纯的乙醇中,并转入100mL的容量瓶中,用乙醇定容,摇匀,得质量浓度为15mg/L的样品溶液,置于冰箱中冷藏备用,作为阳性对照样品。

2.2.5 清除DPPH自由基能力的测定

准确量取1.2mLDPPH液,加入2.8mL 95%乙醇溶液,混匀,在λ=520nm测吸光度Ac(自由基清除率为0)。分别准确量取各样品溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.4、1.8、2.2mL,加入1.2 mL DPPH液及2.6、2.4、2.2、2.0、1.8、1.4、1.0、0.6mL的95 %乙醇溶液混合均匀,在λ=520nm测吸光度Ai。另外分别准确量取各样品溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.4、1.8、2.2mL,加入3.8、3.6、3.4、3.2、3.0、2.6、2.2、1.8mL的95 %乙醇溶液后混合均匀,在λ=520nm测吸光度Aj(空白校正因子)。同时以BHA和Vc作为阳性对照。按式K=[1-(Ai-Aj)/Ac]×100%计算自由基清除率K值,并进一步计算其自由基清除率IC50值。

3 结 果

3.1 野生金铁锁根、栽培根各部分提取物的DPPH自由基清除率

3.1.1 野生金铁锁根各提取物对DPPH自由基清除率的测得结果(表1)。

表1 野生金铁锁根部提取物对DPPH自由基清除率

从表1可以看出:野生金铁锁根各提取物对DPPH自由基的清除率随着浓度增大呈现逐步增强的趋势;但不同提取物对自由基的清除差别较大,同样浓度下乙酸乙酯提取物对自由基的清除率最强,其次是正丁醇提取物。乙醇、石油醚和水提取物对自由基的清除率比较弱,其中,水提取物对DPPH自由基的清除率最弱,其次是乙醇提取物;并且乙醇提取物、石油醚提取物和水提取物随着浓度加大对自由基的清除率没有明显变化。实验结果表明野生金铁锁根对自由基清除物质主要集中在乙酸乙酯提取物和正丁醇提取物中。

3.1.2 栽培金铁锁根各提取物对DPPH自由基清除率的测得结果(表2)。

表2 栽培金铁锁根部提取物清除DPPH自由基清除率

3.2 金铁锁野生根、栽培根各部分提取物的DPPH自由基清除活性IC50值及其比较(表3)。

表3 野生和栽培金铁锁抗DPPH自由基氧化活性(IC50)

从表3可看出,野生和栽培金铁锁各提取物抗氧化活性基本一致:①无论野生还是栽培金铁锁抗氧化作用都比较弱;②无论栽培还是野生金铁锁,抗氧化活性物质基本都集中在乙酸乙酯提取物和正丁醇提取物之中,均以乙酸乙酯提取物最强;③虽然栽培金铁锁乙酸乙酯提取物抗氧化活性要强于野生金铁锁、野生金铁锁正丁醇提取物抗氧化活性要强于栽培金铁锁,但相对于阳性对照Vc和BHA来说均很小,差异并不是很明显。

4 讨 论

金铁锁野生资源分布比较狭窄,同时生长比较缓慢,已严重限制了药材资源的应用和开发利用。开展金铁锁人工栽培繁殖已成为缓解金铁锁资源的重要途径和手段,同时也有利于野生资源的保护。然而栽培金铁锁和野生金铁锁是否存在差异?差异有多大?是否具有于野生药材同等的药效?已成为金铁锁人工栽培的关键,必须进行全面的比较分析和评价。本文采用DPPH自由基清除法对栽培和野生金铁锁抗氧化活性进行了初步的快速比较评价,结果表明野生金铁锁和栽培金铁锁的抗氧化活性和部位基本一致,栽培金铁锁具有与野生金铁锁同样的作用,为金铁锁的人工栽培提供了初步的依据;为下一步进一步深入的化学成分和活性比较评价提供了一定的依据和基础。

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R961

:B

:1671-8194(2013)02-0060-03

*通讯作者:E-mail:liuxikui@mail.kib.ac.cn

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