王秋影，廖美德

（华南农业大学天然农药与化学生物学教育部重点实验室，广州 510642）

木材、禾本科植物、农作物残留物等木质纤维素类生物质的细胞壁由纤维素、半纤维素和木质素组成[1]。木聚糖是除纤维素外含量最为丰富的天然细胞壁多糖，是存在于植物细胞壁和胞间层中的半纤维素成分[2]。木聚糖是一种由木糖、葡甘聚糖、半乳甘露聚糖、阿拉伯半乳聚糖组成的异质多糖，其主链骨架由多个D-木糖残基通过β-1,4 糖苷键连接而成[1]。在众多可降解木聚糖的酶中，内切β-1,4-D-木聚糖酶（EC 3.2.1.8）起主要作用，木聚糖酶通过随机水解β-1,4糖苷键产生不同长度的低聚木糖[3]。木聚糖的完全降解，可以产生多种形式的纤维素类物质，从而有利于提高麦秸、玉米芯、杂粕等非常规、低成本原料的工业利用率和饲料转化效率[2]。研究表明，木聚糖酶可以提高畜禽饲料利用率，促进养分的消化吸收，有利于维持肠道微生态并可降低污染[4]。木聚糖酶在许多工业化生产中起着至关重要的作用，并且在改善焙烤食品、动物饲料以及漂白纸浆中作为一种添加剂使用，充分显示了其广阔的应用前景[3]。本文针对木聚糖酶的分类、分子结构、生化特性、发酵调控技术及应用研究进展作以综述，以期为相关研究提供参考。

1 木聚糖酶的分类

木聚糖酶是指可以催化水解多糖——木聚糖为低聚木糖或木糖的一类多功能酶的总称。主要包括内切-β-1,4-D-木聚糖酶（EC 3.2.1.8），可随机切开木聚糖主链骨架的1,4-β-D 木糖苷键，将其酶解为低聚木糖，主要生成木二糖和木三糖等木寡糖，很少生成木糖；外切-β-1,4-D-木聚糖酶（EC 3.2.1.92）的目标位点在木聚糖和低聚木糖的非还原端，产物是木糖；β-木糖苷酶（EC 3.2.1.37）的目标位点在低聚木糖的还原端，水解产物是木糖残基，是唯一的可以催化降解木二糖的酶，其通过酶解低聚木糖末端而释放木糖残基。狭义的木聚糖酶仅限于内切-β-1,4-D-木聚糖酶[5]。

木聚糖是来源于木材、谷物以及其他植物的杂合多聚分子，支链较多且取代基各不相同，因此完全催化水解木聚糖就需要具有不同催化性能的特异性酶类即支链酶的作用[3]。这些酶主要有乙酰木聚糖酯酶（EC 3.2.1.6）、α-D-葡萄糖醛酸苷酶（EC 3.2.1.1）和α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶（EC 3.2.1.55）等。其中，乙酰木聚糖酯酶的功能是催化水解乙酰化木聚糖，协同作用于内切木聚糖酶；后两者催化水解木聚糖的侧链，加速低聚木糖的产生[6]。

2 木聚糖酶的分子结构

木聚糖酶的分子结构和理化性质随其来源不同而有较大差别，一些木聚糖酶只含有单一的催化结构域，另一些则同时具有催化和其他多种非催化结构域。多结构域木聚糖酶分子中含有承载不同生理生化功能的催化结构域、热稳定结构域、锚定结构域、木聚糖结合结构域、纤维素结合结构域、重复序列、连接序列及其他未知功能的非催化结构域等，这些结构域共同完成该酶对底物的催化降解。作为木聚糖酶分类基础的催化结构域承担着酶的催化水解功能。不同木聚糖酶分子的氨基酸组成种类和数目差异较大，但其催化结构域大小基本一致；决定催化特性的主导因素是天冬氨酸和谷氨酸在催化区的特定位置。研究表明，同一族的木聚糖酶其催化结构域具有同源性[7-8]。

3 木聚糖酶的生化特性

不同来源的木聚糖酶在相对分子质量、酸碱稳定性、热稳定性、等电点、氨基酸组成、糖基化学理化性质存在相似性。微生物木聚糖酶多数是简单的单亚基蛋白；不同来源的木聚糖酶通常在pH 3～10 保持稳定，最佳反应pH 4～7；细菌和真菌木聚糖酶的最佳反应温度为40～60℃，作用温度较温和，不易对原材料中的营养物质造成破坏，来源不同的木聚糖酶其等电点在3～10；木聚糖酶的氨基酸组成之间差异不是非常显著，氨基酸主要有苏氨酸、丙氨酸、谷氨酸、甘氨酸和丝氨酸等；真核微生物木聚糖酶通常为糖基化酶，糖类与蛋白质共价连接或与木聚糖酶形成可解离的复合体。糖基化是对蛋白质的重要修饰，有调节蛋白质功能的作用，同时糖基化也是酶应对非常环境并保持稳定的手段之一[9-10]。

4 木聚糖酶的发酵调控技术研究

影响木聚糖酶发酵生产的关键因素有产酶菌株的性能、诱导物、培养条件和培养基组成；其他次要影响因素包括诱导物的水平、底物的易接近性、释放低聚木糖的速率、酶与底物结合的紧密度、菌体本身代谢所产生的酶等[11]。

按照发酵形式的不同，真菌木聚糖酶的发酵分为固体和液体发酵两种。一般采用未经精制的农副产品为底物进行固体发酵，现在多采用价格低廉的半纤维素，如麦麸、稻草、玉米轴穗、米糠、甘蔗渣和玉米秸秆等；使用的菌种为木霉、曲霉、青霉、耐碱嗜温性杆菌等[7]。

Kumar等在无菌条件下，利用水稻秸秆为底物对原小单孢菌属MARS进行固态发酵生产木聚糖酶的研究，其木聚糖酶产量为85.0 U·g-1[12]。Nawel 等利用分离自阿尔及利亚土壤中的反硝化琼斯氏菌BN-13生产胞外木聚糖酶，在温度为50℃、pH 7.0时酶活性最佳，在存在金属离子时（如Mn2+）酶活性将增加，该菌株所产的胞外木聚糖酶具有很好的热稳定性，在50℃处理7 h后仍可保持50%酶活性[13]。Garai 等利用麦麸作为基质对白色曲霉进行了固体发酵研究，研究表明，在试验氮源中，硝酸铵是最佳氮源，培养时间、温度、含水量等物理参数利用Box-Behnken 法进行优化，在最佳发酵条件下木聚糖酶的最大活性为770 U·g-1（底物干重），将木聚糖粗酶制剂作用于硫加氨水的木质纤维素材料，如玉米芯、麦秸、甘蔗渣以及银胶菊，进行糖化，结果表明，玉米芯产糖量最大，经过响应面分析法优化后，其还原糖产量为438.47 mg·g-1[14]。Walia等从蘑菇堆肥中分离到纤维菌属（Cellulosimicrobium sp.）CKMX1，在35℃，pH 8.0 的条件下可以产生木聚糖酶，用苹果渣作为固体发酵基质，经过对培养类型、苹果渣的颗粒大小、培养时间、培养温度、起始pH 以及接种量进行优化后，其木聚糖酶最高活性为535.6 U·g-1（菌体+苹果渣干重），又采用中心组合设计和响应面分析法对酵母提取物、尿素、吐温20 以及羧甲基纤维素4个独立的变量进行优化，此步骤优化后木聚糖酶活性有了很大提高，达到861.90 U·g-1[15]。

5 木聚糖酶的应用研究

5.1 木聚糖酶在饲料工业中的应用

饲料中一般含有阿拉伯木聚糖、β-葡聚糖、α-半乳糖苷、果胶、纤维素等非淀粉多糖。研究发现，木聚糖是小麦、小麦麸以及黑麦中非淀粉多糖（NSP）的主要成分，单胃动物不能正常消化分解这种多糖，从而使其成为一种抗营养因子[4]。NSP能够结合大量的水，使采食动物消化道中的食糜体积增大，黏度增加，形成凝胶，严重干扰内源消化酶的功能，导致食糜在消化道中的滞留时间延长，改变肠道微生物菌群（部分有害微生物异常繁殖）、抑制动物生长、饲料消化率降低，表观代谢能受抑制。据报导，向饲料中添加木聚糖酶，可有效改善饲料性能，降低或消除非淀粉多糖引起的抗营养作用[16-17]。唐胜球等研究结果表明，饲料中通常含有多种抗营养成分，所以添加的酶一般是含有β-葡聚糖酶、纤维素酶和半乳糖酶等的复合酶，前两者协同作用，效果显著[18]。

在饲料中添加木聚糖酶能有效提高饲料利用率和动物的生产性能。王利等研究表明，小麦基础饲粮中添加木聚糖酶可显著改善饲喂小麦基础饲粮生长猪的生长性能和营养物质表观消化率（P＜0.05），平均日增重和平均日采食量分别提高了26.0%和16.5%，此外，还可维持肠道微生物菌群的平衡，在木聚糖含量为11.2%的生长猪小麦基础饲粮中，木聚糖酶的适宜添加水平为2000 U·kg-1[19]。郝瑞荣等报导，在低磷饲粮中添加木聚糖酶，能促进断奶仔猪对钙、磷的消化利用及骨骼生长[20]。徐骏等报导，添加木聚糖酶0.05%使试验仔鸡增重提高，料重比降低[21]。

5.2 木聚糖酶在食品工业中的应用

木聚糖酶能从富含半纤维素类的玉米芯、甘蔗渣、小麦麸、秸秆等农林废弃物分解得到低聚木糖。由于低聚木糖具有低热量、低糖度的特性，食用后不会导致血糖浓度的大幅上升，因而可作为糖尿病或者肥胖症患者的甜味剂[22]。另外，低聚木糖是难发酵性糖，不易造成龋齿。采用木聚糖酶水解法生产低聚木糖具有易于控制水解速度及程度、反应专一性强、所得产物易分离、精制较为容易等优点、并逐渐成为生产高品质低聚木糖的主要方法。随着人们生活质量的提高，低聚木糖在保健品市场将具有很好的前景[23]。

目前，应用于食品工业领域中有关低聚木糖的商业木聚糖酶有荷兰吉斯特-布罗卡德斯公司的Rapidase Pomaliq、丹麦诺维信公司的Shearzyme和中国新华扬生物技术有限公司的Sunzymes 等[24-26]。Yuan 等分离纯化出两个来自枯草芽孢杆菌的木聚糖酶xyl Ⅰ和xyl Ⅱ，研究了内切木聚糖酶xyl Ⅱ对不溶性膳食纤维——麦麸的降解活性，色谱分析结果表明，酶解产物中含有麦麸低聚木糖[27]。Fang 等分离纯化出肉色曲霉M34 胞外木聚糖酶，选用稻壳半纤维素作为产低聚木糖的原料，用该木聚糖酶进行降解，降解产物中可检测到麦麸低聚木糖，结果表明，此麦麸木糖具有潜在的抗氧化活性，并且具有很好的双歧菌增殖活性[28]。

此外，木聚糖酶在果汁生产、面包品质改良、香料和色素的提取、咖啡生产、植物油生产、淀粉生产及酿酒工业中也有广阔的应用前景。

5.3 木聚糖酶在造纸工业中的应用

木聚糖酶可应用于纸浆漂白、生物制浆、废纸二次纤维回收、纸张表面处理及二次纤维脱墨处理等，用木聚糖酶作为纸浆漂白剂助剂，不但能减少氯用量减少环境污染，还可增强其漂白性能[6,29]。慕娟等研究表明，将碱性木聚糖酶应用于麦草浆造纸中，可以减少氯用量20%，并且可以改善纸张品质，提高纸浆白度3%～6%[30]。陈艳希等利用碱性木聚糖酶辅助漂白马尾松硫酸盐浆的研究表明，有效氯用量减少了31%，漂白废水中可吸附有机卤化物（AOX）可降低25%[31]。随着技术的发展，结合漂白工艺的改革，相信未来可进一步实现无氯漂白，解决纸浆工业中的环境污染问题，使造纸技术更环保、更高效。

5.4 木聚糖酶在能源转化方面的应用

能源是人类活动的物质基础，人类社会的发展离不开先进能源技术的使用和优质能源的开发。当今世界能源短缺问题日益严峻，寻找新能源迫在眉睫。燃料乙醇代替传统化石能源被认为是解决能源危机和排放污染问题的有效方法之一[6]。生产燃料乙醇的原料主要是甘蔗、玉米等，而目前人类面临着粮食危机，因此应用粮食生产燃料乙醇没有太大的实际意义[32]。我国是农业大国，有丰富的农产品废弃物，其可再生纤维素资源作物秸秆可用来开发燃料乙醇，这将产生巨大的经济效益，同时也可减轻工业对环境造成的污染，促进自然界中的碳素循环[33]。木聚糖酶可与其他酶协同作用，将植物纤维降解为戊糖和己糖，然后将其作为发酵底物，进一步通过微生物作用产生乙醇[34-36]。构建乙醇发酵用工程菌、开发秸秆纤维酶法降解工艺、优化相关发酵工艺的研究等都为其工业化生产奠定了基础。周振利用木聚糖酶和纤维素酶协同降解玉米秸秆，使糖化率达到54.79%[37]。

6 展 望

随着生物技术的不断发展，木聚糖酶的研究开发备受关注。木聚糖酶具有巨大的潜在应用价值，但存在诸多问题，其中最受关注的问题是木聚糖酶的生产成本较高。我国对木聚糖酶的研究起步较晚，对其分子机理的研究与国外还有一定差距；难以获得优良的高产菌株，原菌产酶量低等问题也使其应用受到很大限制。随着对菌种选育方法的不断改善以及基因工程、蛋白质工程等现代生物技术手段在木聚糖酶上的应用，将会有性能更加稳定、活性特质更多、作用活性更高和使用范围更加宽松的木聚糖酶产生，从而有利于推动商业化应用的健康快速发展。

[1]Song Y,Lee Y G,Choi I S,et al.Heterologous expression of endo-1,4-β-xylanase A from Schizophyllum commune in Pichia pastoris and functional characterization of the recombinant enzyme[J].Enzyme and Microbial Technology,2013,52（3）:170-176.

[2]Liu M Q,Dai X J,Liu G F,et al.Obtaining cellulose binding and hydrolyzing activity of a family 11 hybrid xylanase by fusion with xylan binding domain[J].Protein Expression and Purification,2013,88（1）:85-92.

[3]Shi H,Zhang Y,Li X,et al.A novel highly thermostable xylanase stimulated by Ca2+from Thermotoga thermarum:cloning,expression and characterization[J].Biotechnology for Biofuels,2013,6(26):2-9.

[4]石军,陈安国.木聚糖酶的应用研究进展[J].中国饲料,2002（4）:10-12.

[5]方洛云,邹晓庭,许梓荣.木聚糖酶基因的分子生物学与基因工程[J].中国饲料,2002（7）:11-13.

[6]郑晗.低温木聚糖酶对面包品质的影响[D].济南:山东师范大学,2010.

[7]周平发,史宝军,崔细鹏,等.木聚糖酶的研究进展及在生产上的应用[J].广东饲料,2011,20（5）:24-27.

[8]梁永,陈中平,杨洪森.木聚糖酶在饲料应用上的研究进展[J].饲料研究,2012（4）:30-31.

[9]丁强.饲用木聚糖酶的研究进展及应用[J].中国饲料,2010（3）:22-25.

[10]朱由彩,李吕木,钱坤.木聚糖酶在肉仔鸡日粮中的应用[J].中国饲料,2012（15）:23-26.

[11]张王照,王亚茹,杨浩萌.饲用木聚糖酶的研究进展[J].饲料广角,2005（15）:27-28,30.

[12]Kumar M,Joshi A,Kashyap R,et al.Production of xylanase by Promicromonospora sp.MARS with rice straw under non sterile conditions[J].Process Biochemistry,2011,46（8）:1614-1618.

[13]Nawel B,Said B,Estelle C,et al.Production and partial characterization of xylanase produced by Jonesia denitrificans isolated in Algerian soil[J].Process Biochemistry,2011,46（2）:519-525.

[14]Garai D,Kumar V.A Box-Behnken design approach for the production of xylanase by aspergillus candidus under solid state fermentation and its application in saccharification of agro residues and Parthenium hysterophorus L[J].Industrial Crops and Products,2013(44):352-363.

[15]Walia A,Mehta P,Chauhan A,et al.Optimization of cellulasefree xylanase production by alkalophilic Cellulosimicrobium sp CKMX1 in solid-state fermentation of apple pomace using central composite design and response surface methodology[J].Annals of Microbiology,2013,63（1）:187-198.

[16]白雪峰.木聚糖酶在饲料中的应用进展[J].中国畜牧兽医,2004,31（12）:11-13.

[17]方微,单玉萍,李峰,等.木聚糖酶的作用机理及其在饲料中的应用[J].中国饲料,2011（21）:21-24.

[18]唐胜球,董小英,邹晓庭,等.木聚糖酶的研究及其在动物饲料中的应用[J].中国畜牧杂志,2004,40（2）:42-44.

[19]王利,何军,余冰,等.小麦基础饲粮中添加木聚糖酶对生长猪生长性能、血清生化指标及肠道微生物菌群的影响[J].动物营养学报,2012,24（10）:1920-1927.

[20]郝瑞荣,高俊杰.植酸酶和木聚糖酶对仔猪钙、磷代谢及骨骼发育的影响[J].饲料博览,2009（6）:1-5.

[21]徐骏,袁华根,高峰.小麦日粮中添加木聚糖酶对肉仔鸡生长性能的影响[J].饲料研究,2007（4）:70-72.

[22]Díaz A B,Caro I,de Ory I,et al.Evaluation of the conditions for the extraction of hydrolitic enzymes obtained by solid state fermentation from grape pomace[J].Enzyme and Microbial Technology,2007,41（3）:302-306.

[23]高艳秀,陈复生,丁长河.微生物木聚糖酶及其应用[J].中国酿造,2012,31（3）:10-12.

[24]Yoon K Y,Woodams E E,Hang Y D.Enzymatic production of pentoses from the hemicellulose fraction of corn residues[J].Food Science and Technology,2006,39（4）:388-392.

[25]Rantanen H,Virkki L,Tuomainen P,et al.Preparation of arabinoxylobiose from rye xylan using family 10 Aspergillus aculeatus endo-1,4-β-d-xylanase[J].Carbohydrate Polymers,2007,68（2）:350-359.

[26]Wang J,Sun B,Cao Y,et al.Enzymatic preparation of wheat bran xylooligosaccharides and their stability during pasteurization and autoclave sterilization at low pH[J].Carbohydrate Polymers,2009,77（4）:816-821.

[27]Yuan X,Wang J,Yao H,et al.Separation and identification of endoxylanases from Bacillus subtilis and their actions on wheat bran insoluble dietary fibre[J].Process Biochemistry,2005,40（7）:2339-2343.

[28]Fang H Y,Chang S M,Lan C H,et al.Purification and characterization of a xylanase from Aspergillus carneus M34 and its potential use in photoprotectant preparation[J].Process Biochemistry,2008,43（1）:49-55.

[29]周秀梅.木聚糖酶生产及酶学性质的研究[D].杭州:浙江大学,2005.

[30]慕娟,问清江,党永,等.木聚糖酶的开发与应用[J].陕西农业科学,2012,58（1）:111-115.

[31]陈艳希,黄六莲,吴姣平,等.碱性木聚糖酶辅助漂白马尾松硫酸盐浆的研究[J].福建林学院学报,2013（1）:93-96.

[32]曲音波.纤维素乙醇产业化[J].化学进展,2007,19（7）:1098-1108.

[33]Saha B C,Iten L B,Cotta M A,et al.Dilute acid pretreatment,enzymatic saccharification and fermentation of wheat straw to ethanol[J].Process Biochemistry,2005,40（12）:3693-3700.

[34]Öhgren K,Bura R,Saddler J,et al.Effect of hemicellulose and lignin removal on enzymatic hydrolysis of steam pretreated corn stover[J].Bioresource Technology,2007,98（13）:2503-2510.

[35]He X,Miao Y,Jiang X,et al.Enhancing the enzymatic hydrolysis of corn stover by an integrated wet-milling and alkali pretreatment[J].Appl Biochem Biotechnol,2010,160（8）:2449-2457.

[36]Geng X,Henderson W A.Pretreatment of corn stover by combining ionic liquid dissolution with alkali extraction[J].Biotechnol Bioeng,2012,1099（1）:84-91.

[37]周振.木聚糖酶强化纤维素酶对植物纤维的水解[D].南京:南京林业大学,2008.