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无溶剂体系酶催化酯化反应合成1,3-甘油二酯的研究

2013-02-19黄健花王兴国

食品与生物技术学报 2013年4期
关键词:油酸酯化脂肪酶

鲁 珊, 黄健花, 王兴国

(江南大学 食品学院,江苏 无锡214122)

甘二酯,也称为脂肪酸甘油二酯(DAG),是由丙三醇(甘油)与两个脂肪酸酯化得到的产物,按空间异构分为 1,3-甘二酯(1,3-DAG)和 1,2-甘二酯(1,2-DAG)。其中,天然食用油脂中的甘二酯以1,3-DAG为主,占甘二酯总量的70%左右。1,3-DAG具有很好的乳化性能,可作为乳化剂广泛应用于食品、药品和化妆品等行业;另一方面还具有许多生理功能,可用于预防与治疗高脂血症及与高脂血症密切相关的心脑血管疾病,近年来受到人们的广泛关注[1-3]。

目前合成1,3-DAG主要有化学法和酶法。化学法得到高纯度的产品比较困难,往往需要多步骤的反应以及繁琐的纯化操作[4]。酶法反应条件温和,且由于酶的选择性,较易得到高纯度的1,3-DAG。角田昭等人研究了在脱水条件下利用碱性脂肪酶进行的酯化反应,反应48h酯化率达到96%,甘油二酯质量分数为60%[5]。Masakatsu[6]等人利用固定化脂肪酶作为催化剂进行酯化反应,酯化率能达到86%左右,甘油二酯质量分数可达65%,但是反应是使用的是非特异性脂肪酶,所以得到的DAG是1,3-DAG和1,2-DAG的混合物。邱寿宽等人用Lipozyme RM IM做催化剂,以大豆和甘油为底物,在最适条件下,甘二酯得率为51.7%。

作者选用特异性酶Lipozyme RM IM做催化剂,以脂肪酸、甘油为原料直接酯化生成1,3-DAG,不仅反应方便,可一步完成,且产物纯度较高,反应时间较短,为进一步放大和商业化提供技术基础。

1 材料与方法

1.1 试验材料与仪器

Lipozyme RM IM(物理吸附大孔阴离子交换树脂):诺维信生物技术有限公司产品;甘油(AR级):国药化学试剂有限公司产品;油酸(AR级):国药化学试剂有限公司产品。

Re-52型旋转蒸发器:上海亚荣生化仪器厂产品;集热式恒温磁力搅拌水浴锅:金坛市医疗仪器厂产品;Waters 1525高效液相色谱:美国Waters公司产品;TGL-16B离心机:上海安亭科学实验仪器厂产品。

1.2 试验方法

1.2.1 酯化方法 取16.14 g油酸,然后将油酸与甘油按一定摩尔比混合,于一定温度、80 r/min搅拌均匀,添加一定量的固定化酶于真空反应器(真空度0.07 MPa)或常压反应器反应一定时间。反应过程中,按一定时间间隔取样分析反应物组成。

1.2.2 酸值的测定 按GBT 5530-2005进行。

1.2.3 酯化率的计算

酯化率(%)=[(反应起始酸价-反应物的酸价)/反应起始酸价]×100%

1.2.4 甘油酯组成分析 酯化产物用正己烷萃取,加少量水离心收集油相,吹氮气除溶剂,HPLC分析。分析条件:Waters Spherisorb Silica色谱柱(2.0 mm×250 mm);流动相 A:正己烷-异丙醇(体积比99∶1);流动相 B:正己烷-异丙醇-乙酸(体积比 1∶1:0.01)进行梯度洗脱,柱温:35 ℃;进样量:5 μL;漂移管温度:75℃;流动相流量:0.5 mL/min。检测器:蒸发光散射检测器,面积归一化法定量。

2 结果与讨论

2.1 反应产物组成

甘油与油酸反应后的产物组分有TAG、FFA、1,3-DAG、1,2-DAG 和 MAG,如图 1 所示:

图1 反应产物的高效液相图Fig.1 HPLC chromatograms of reaction products

2.2 真空脱水对酯化率的影响

适宜的水分含量是维持酶活力所必须的。但当水分含量超过一定量后,脂肪酶的酯化活力会大大降低,而表现为较高的水解活力。在酶催化酯化反应过程中,会生成水,水的存在不利于平衡向酯化方向进行。因此,采用一定措施去除体系中过量的水使反应平衡向合成方向移动,不仅可以提高酶活,也可以增加酯化率。作者考察了常压及真空条件下进行的酯化反应的进程曲线。

图2 脱水对1,3-DAG质量分数和酯化率的影响Fig.2 Effect of water removal on 1,3-DAG yield and conversion rate

由图 2可知,在常压下,反应 2h,1,3-DAG含量和酯化率分别是48%和52%;在真空条件下,反应2h,1,3-DAG含量和酯化率分别为62%和78%。之所以有这样的差距,可能是因为甘油是极性分子,在常温常压条件下甘油和脂肪酸供体之间的相容性很差,当甘油和脂肪酸供体混合后与脂肪酶接触时,极性的甘油分子倾向于包裹在脂肪酶上而造成酶的催化效率降低[8]。由此可见,在酯化生产1,3-DAG反应中除去反应生成的水分是十分必要的。

2.3 底物摩尔比的影响

任何一种底物摩尔数的改变,都会影响体系的稳定性及产物的扩散速率与含量,从理论上脂肪酸与甘油的摩尔比例在化学计量比 (2∶1)会使1,3-DAG质量分数达到最佳。如果脂肪酸质量分数过高,则底物利用率不高;如果甘油质量分数过高,不仅使体系的黏度加大,不利于反应的进行,而且体系极性增加,甘油与脂肪酶易沉积在底部,难以与脂肪酸有效的混合,使反应速率降低[9-10]。

作者以1,3-DAG质量分数及酯化率为指标,研究了反应温度65℃,Lipozyme RM IM添加量6%(以底物总质量计),真空脱水(0.07MPa)的条件下,油酸、甘油的摩尔比对酯化合成1,3-DAG的影响,结果如图3所示。

图3 底物摩尔比对1,3-DAG质量分数和酯化率的影响Fig.3 Effect of the molar ratio on 1,3-DAG yield and conversion rate

由图3可知,1,3-DAG质量分数随着底物摩尔比(油酸与甘油的摩尔比)的增加而出现先上升后下降的趋势。在底物摩尔比为2∶1时,反应2 h,1,3-DAG得率最高,可达到62%,酯化率为78%。当油酸与甘油的摩尔比例大于2∶1而小于3∶1(理论上生成TAG的比例)时,1,3-DAG得率和酯化率都会下降,这可能是因为体系中更多的油酸会趋向于转化为TAG,所以造成DAG的得率下降,进而1,3-DAG得率会下降。因此,反应体系中底物摩尔比采用2∶1为宜。

2.4 酶量的影响

在油酸与甘油摩尔比为2∶1,反应温度为65℃, 真空脱水 (0.07 MPa),4%、6%、8%(底物总质量计)作为酶量研究的变量条件下,考察了加酶量对1,3-DAG质量分数和酯转化率的影响,结果见图4。

图4 酶量对1,3-DAG质量分数和酯化率的影响Fig.4 Effect of enzyme load on 1,3-DAG yield and conversion rate

由图4可知,当酶量从2%增加到6%时,反应到2h时,1,3-DAG质量分数从50%上升到62%;酯化率从52%上升到78%,当继续增加酶量到10%时,1,3-DAG的质量分数和酯化率都是呈下降趋势的,这可能是由于酶底物数量有限,达到饱和,并且固体脂肪酶量过大,反应体系流动性差,反应一定程度受阻[11]。同时发现,随着反应时间的增加,1,3-DAG含量呈下降趋势,而酯转化率呈上升趋势,当反应时间到4 h后,酯化率为94%后,基本保持不变,由此可见酯化率最高时,1,3-DAG含量并非最高,这可能是由于体系反应过程中的酰基转移产物中1,2-DAG和TAG含量增加存在所致,因此以后的研究中酶添加量采用6%为宜。

2.5 温度的影响

适宜的温度控制对酶催化反应是重要的。脂肪酶来源不同,最适温度也各不相同。一般而言温度升高,有利于酯化反应副产物水的脱除,加快反应速率,但温度过高,则会影响酶的空间结构和构象,从而降低酶活力。所以实验需控制适宜的反应温度。研究了不同的温度对反应产物中1,3-DAG含量及酯化率的影响。如图5所示。其他反应参数为:油酸与甘油底物摩尔比2∶1,Lipozyme RM IM添加量6%(以底物总质量计),真空脱水(0.07 MPa)。

由图5可知,随着温度的升高,1,3-DAG的含量和反应初速度都是增加的,当温度为65℃时,反应时间为2 h时,1,3-DAG的质量分数最高达到61%,酯化率为78%。当温度高于60℃时,1,3-DAG的质量分数和反应初速度则降低。这可能是由于反应温度升高时,物质在反应体系中的溶解度会有很大提高,体系黏度低,传质速率就快,进而反应速度快。然而,随着温度的进一步升高 (温度高于65℃),热力学平衡占据主导地位,酰基位移增加(1,2-DAG由4.1%上升至8.9%),使1,3-DAG质量分数下降[12]。另外可以看到,随着反应时间的增加,1,3-DAG的质量分数呈下降趋势,当5 h后趋于平衡,而酯化率则缓慢增加,当4 h后保持不变。综合考虑以上因素,选择65℃作为反应温度较佳。

图5 温度对1,3-DAG质量分数和酯化率的影响Fig.5 Effect of temperature on 1,3-DAG yield and conversion rate

3 结语

采用RM IM酶催化脂肪酸与甘油合成1,3-DAG,利用真空脱水,油酸与甘油的摩尔比为2∶1,温度为65℃,酶量为底物总质量的6%时,1,3-DAG得率最高为62%。

[1]Yang T,Zhang H,Mu H,et al.Diacylglycerols from butterfat:production by glycerolys is and short-path distillation and analysis of physical properties[J].J Am Oil Chem Soc,2004,81:979-987.

[2]Lo S K,Cheong L Z,Arifin N,et al.Diacylglycerol and triacylglycerol as responses in a dual response surface·-optimized for diacylglycerol production by lipase-catalyzed esterification in a pilot packed-bed enzyme reactor[J].J Agric Food Chem,2007,55:5595-5603.

[3]LIU Ning,WANG Yong,ZHAO Qiang-zhong,et al.Fast synthesis of 1,3-DAG by Lecitase Ultra-catalyzed esterification in solvent-free system[J].Eur J Lipid Sci Technol,2011,113:973-979.

[4]Ikeda I,Gu X P,Miyamoto I,et al.Preparation of 1,3-diacylglycerols and 1-alky-3-acylglycerols in the presence of quaternary ammonium salt[J].J Am Oil Chem Soc,1989,66:822-824.

[5]陈福明,孙登文.双甘酯的生产及应用[J].中国油脂,1997,22(5):49-51.CHEN Fu-ming,SUN Deng-wen.The production and application of diglyceride[J].China Oils and Fats,1997,22(5):49-51.(in Chinese)

[6]翟丹丹,张建法,蒋鹏举,等.甘油二酯的制备、纯化及分析[J].河南化工,2004,5:4-6.ZHAI Dan-dan,ZHANG Jian-fa,JIANG Peng-ju,et al.Preparation,purification and analysis of diglyceride[J].China Oils and Fats,2004,5:4-6.(in Chinese)

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