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在线固相萃取液相色谱-串联质谱法同时测定猪饲料中沙丁胺醇、莱克多巴胺及克伦特罗

2022-10-28文俊萍罗达龙

粮食与饲料工业 2022年5期
关键词:瘦肉精响应值甲酸

文俊萍,罗达龙

(梧州市食品药品检验所,广西 梧州 543002)

沙丁胺醇、莱克多巴胺及克伦特罗(俗称瘦肉精),是能够抑制动物脂肪生成,促进瘦肉生产的药物。瘦肉精对人体的危害极大,如长期食用有瘦肉精残留的肉,会有很严重的毒副作用[1-4]。近年来,不少非法商家为了降低饲养成本,提高利润,将瘦肉精添加到喂养猪的饲料中,从而残留在肉内,这将危害广大人民群众的身体健康,如2017年央视“315”晚会曝光江苏某企业非法添加瘦肉精以及2021年央视“315”晚会报道河南省某县养殖户在饲料中非法添加瘦肉精事件,瘦肉精相关事件屡禁不止,因此,检测动物性食品中瘦肉精残留具有重要意义。

有关瘦肉精的检测方法[5]主要有液相色谱-串联质谱法[6-10]、气相色谱质谱法[11]、胶体金免疫层析法、液相芯片技术[12]。目前,液相色谱-串联质谱法技术(GB/T 22147—2008)检测饲料中瘦肉精残留量,样品目标物用磷酸甲醇溶液多次提取,经过滤后离心,水浴氮吹近干,上清液用固相萃取柱净化后测定,实验过程繁琐,耗时长,且容易造成回收率低。因此,有必要开发一种简单、快速的方法用于测定猪饲料中瘦肉精残留量。在线固相萃取技术是近年全新发展的全自动样品前处理技术,现已被成功用于饮用水和生物检测、以及食品中药物残留的高通量检测方法构建,本实验研究就是利用在线固相萃取液相色谱-串联质谱技术[13]建立猪饲料中瘦肉精的分析方法,为猪饲料中非法添加瘦肉精的快速检测提供参考。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

YP6002电子天平(d=0.01 g),常州市衡正电子仪器有限公司;XA205DU电子分析天平(d=0.01 mg),梅特勒-托利多;LC-1290/QQQ-6470三重四极杆液相质谱联用仪,Agilent technology。

沙丁胺醇、莱克多巴胺及克伦特罗(纯度均大于95%),来源于Dr.Ehrenstorfer GmbH。

超纯水(电阻率18.2MΩ.cm,Millipore纯水机制备),甲酸(色谱纯),美国Fisher公司;乙腈(色谱纯),美国OMIN公司。

1.2 标准储备溶液配制

精密称取上述3种标准物质,用乙腈配制成1 mg/ml的储备液,备用。

1.3 混合标准中间液的配制

分别量取上述3种标准储备溶液适量,用超纯水稀释定容,配制成浓度为1 μg/ml的混合标准中间液,备用。

1.4 色谱条件

1.4.1液相部分

在线SPE:富集柱(TurboFlow Cyclone P 0.5 mmid×50 mm)在线萃取泵为安捷伦 1260四元泵,流动相A为水,B为乙腈。分析色谱柱:ACE Ecelx C18150 mm×2.1 mm 2.6 μm,分析泵:安捷伦1290二元泵,流动相A为0.1%甲酸水,B为乙腈。柱温:40℃,进样量:10 μl,六通阀切换,在线SPE上样以及洗脱梯度程序见表1,SPE流路图见图1。

图1 SPE流路图

表1 SPE上样以及洗脱梯度、六通阀切换程序

1.4.2质谱条件

3种目标化合物的质谱检测条件见表2。

表2 3种目标化合物的质谱检测条件

离子源(AJS ESI+),多反应监测模式(MRM),干燥气温度:200℃,干燥气流速:15 L/min,雾化器压力:25 psi,毛细管电压:3 500 V,鞘气温度:350℃,鞘气流速:12 L/min。

1.5 供试品溶液制备

称取试样2.0 g(精确至0.01 g)至50 ml具塞离心管中,加入15 ml稀释剂,超声提取15 min,冷却至室温,用稀释剂定容至20 ml,转速4 000 r/min离心5 min,取上清液过0.22 μm滤膜,待分析(稀释剂:0.1%甲酸水∶乙腈=1∶9)。

1.6 空白基质样品溶液制备

准确称取不含沙丁胺醇、莱克多巴胺以及克伦特罗成分的样品4.0 g(精确至0.01 g),按上述1.5制备,上清液待用,定容体积为40 ml。

2 结果与讨论

2.1 SPE柱的选择

在各优化条件下,分别使用3根柱子对对照溶液(50 ng/ml)中瘦肉精3个目标物进行测定,考察其对目标物的保留效果。色谱柱1:CAPCELL PAK MF C8 2.00 mmid×50 mm 5 μm(以下简称 资生堂C8)、色谱柱2:Turbolflow Cyclone P 0.5 mmid×50 mm(以下简称 Cyclone P)、色谱柱3:Turbolflow Cyclone 0.5 mmid×50 mm(以下简称 Cyclone)。从峰型和响应值来看,Cyclone P最优,其次是资生堂C8,Cyclone柱对沙丁胺醇近乎毫无保留,因此综合以上因素,最终选择Cyclone P柱子作为瘦肉精SPE柱。

2.2 基质效应的影响考察

两位实验人员分别用超纯水和空白基质提取液(见上述1.6)配制标准曲线,线性浓度范围均为0.5~50 ng/ml,通过比较两位实验人员配制的标准曲线各浓度响应值发现,无论是高浓度50 ng/ml,还是低浓度0.5 ng/ml,本实验中均不存在基质效应影响。

2.3 提取溶剂的优化

本研究分别用0.1%甲酸-乙腈、0.5%甲酸-乙腈和1.0%甲酸-乙腈3种溶液对样品进行提取。称取2.0 g样品,加标量为100 μg/kg,每种提取溶剂做3个平行样品,按1.5所述进行处理,上机测定,分别考察平均回收率。通过比较,发现使用0.1%甲酸-乙腈溶液的3个平行样品实验回收率高于其他两种溶液,同时比较其峰形,最终决定选择0.1%甲酸-乙腈作为样品提取液。

2.4 提取溶剂有机相比例的选择

确定提取液甲酸水的浓度后,为筛选出相对好的提取液并且提高样品回收率,我们通过改变0.1%甲酸水与乙腈的比例,分别是0.1%甲酸-乙腈9∶1、0.1%甲酸-乙腈5∶5、0.1%甲酸-乙腈1∶9,3种比例提取溶剂来观察其回收率,确定样品提取溶液有机相比例为0.1%甲酸-乙腈1∶9。

2.5 SPE柱色谱条件的优化

2.5.1涡流流速的选择

基于Cyclone P 最佳涡流速度为0.5~4 ml/min,为选取SPE柱在冲洗阶段适宜的涡流流速,将基质排阻最大化。我们分别比较了流速为 0.5、1、2、3 ml/min,以对照溶液(50 ng/ml)的响应值作为评价,结果发现响应值最高为1 ml/min,次之是2 ml/min和3 ml/min,最低响应值为0.5 ml/min。因此,为保证尽可能去杂、且不影响目标物的截留,选用1 ml/min作为SPE柱涡流流速。

2.5.2冲洗有机相的优化

为了提高目标物的响应,检测限可以做到更低,通过改变SPE柱冲洗流动相比例来观察其目标物响应值变化,考察流动相为水-乙腈,比例分别为97∶3、90∶10、80∶20、70∶30、60∶40,由于乙腈比例大于10时,沙丁胺醇基本无保留,所以最终选择水-乙腈比例为97∶3和90∶10来比较,根据两者对3种目标的响应值来看,SPE柱冲洗流动相比例水-乙腈90∶10的响应值比水乙腈97∶3高出1倍多,因此,最终确定选择其流动相为水-乙腈90∶10。

2.6 六通阀切换时间的优化

为确保样品杂质的冲洗测定以及目标物质富集在SPE柱更完全,称取2.0 g样品,加标量在100 μg/kg,分别考察0.3、0.5、1、1.5、2 min 5个阀切换时间,结果发现,1 min切换阀能让目标物富集在柱子上更多,同时能将大分子杂质冲洗更完全(见图2)。

图2 3种目标物的TIC图

2.7 SPE柱冲洗后的物质残留考察

在SPE柱采集了溶剂空白、样品空白、回收样品后,分别对其进行全扫描,冲洗时间设置为3 min。结果发现虽然在进行了样品空白以及回收样品后在m/z 400~500范围存在干扰,但对3种目标物不存在影响,无基质效应,该方法保证了色谱柱内杂质冲洗干净,保护色谱柱与质谱,且对目标物的回收不造成残留影响。

2.8 标准工作曲线和检出限

吸取1.3 混合标准中间液,用水稀释得到0.5、1、5、10、20、50 ng/ml系列浓度的加标样品溶液,以定量离子峰面积对目标物浓度进行线性回归,建立工作曲线。实验表明该方法相关系数R2均大于0.999,检出限按3倍信噪比确定,定量限按10倍信噪比确定,结果如表3所示。

表3 3种目标物的线性回归方程及检出限、定量限

2.9 方法重复性及回收率

在空白饲料中添加5.0、10.0、50.0、100.0、200.0、500.0 μg/kg标准物质进行回收率试验,采用本研究方法与国标GB/T 22147—2008 进行比较,测得回收率和重复性RSD如表4所示。

表4 3种目标物回收率以及重复性(n=6)

由表4可见,本研究方法中饲料瘦肉精在5.0~500.0 μg/kg加标水平,回收率在85%~100%,重复性均小于5%(n=6),与国标GB/T 22147—2008高级别加标浓度回收率接近,且低浓度加标回收率以及重复性优于国标方法,可能是本研究方法减少了萃取液吹干,过固相萃取净化柱等过程,减少了目标化合物的损失,提高了准确度以及方法重复性。

3 结论

本研究采用On-line SPE-LC-MS/MS技术相结合,通过优化提取溶剂,在线SPE色谱柱条件的优化,建立了猪饲料中瘦肉精的检测方法,该方法能够自动完成样品的在线净化富集,回收率、灵敏度高,适用于猪饲料中沙丁胺醇、莱克多巴胺以及克伦特罗的确证和定量分析,为相关物质的检测提供了有效便捷的技术手段。

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