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2型糖尿病大鼠非酒精性脂肪肝模型的建立

2022-08-25李会芳吕琼花杜思成杨秋萍

中国当代医药 2022年20期
关键词:酒精性胰岛素脂肪

赵 燕 谭 洪 李会芳 吕琼花 杜思成 杨秋萍▲

1.昆明医科大学第一附属医院糖尿病科,云南昆明 650032;2.昆明医科大学第一附属医院老年医学科,云南昆明 650032

随着物质生活的不断改善,糖尿病已成为影响人类健康的主要疾病之一,其发展趋势每年都在增加,已成为全球公共卫生问题。根据国际糖尿病联合会(International Diabetes Federation,IDF),到2025年,全世界将有大约3 亿人患糖尿病,糖尿病是一种慢性疾病,治疗周期长,而亚洲是迅速出现的2 型糖尿病(type 2 diabetic mellitus,T2DM)全球流行病的主要地区。2015—2017年对慢性病和风险因素的监测显示,18 岁及以上人口中糖尿病的发病率由2013年的10.4%上升至11.2%。且肥胖、超重人群患病率显著增加,肥胖人群糖尿病患病率升高了2 倍,体重指数≥30 者患病率为21.2%。非酒精性脂肪肝病(nonalcoholic fatty liver disease,NAFLD)和T2DM 的发病风险因素较高,NAFLD 与代谢综合征的成具有双重关联,它增加了T2DM 及其并发症的发生风险,肥胖和糖代谢异常使NAFLD 患者的肝病死亡率增加了10 倍。因此,为2 型糖尿病大鼠建立NAFLD 模型对于结合NAFLD 深入研究T2DM 非常重要。

1 对象与方法

1.1 实验动物

昆明种健康雄性SD 大鼠40 只,由昆明医科大学动物实验中心提供,6~8 周龄,体重(200±24)g,SPF级,动物生产许可证号:SCXK 滇2011-0004,自由供应食物和饮用水。本研究经昆明医科大学动物实验伦理委员会审核通过。

1.2 饲料及试剂

普通饲料:由玉米粉、小麦粉、豆粉、鱼粉、鼓皮巧、骨粉等充分混合、压制成型、喂养(由昆明医科大学动物实验中心提供加工)。基础饲料的总热量为13.85 kJ,其中蛋白质占23%、碳水化合物占50%、脂肪占5%,其他占22%。自制高糖高脂饲料:10%猪油、20%蔗糖、2%胆固醇、1%胆酸钠、67%普通饲料(参照Guo 等的配方),由专业的人员加工生产,各种配料经过充分搅拌、压制和成型后,再进行喂养,每周临时配制。试剂:链脲佐菌素(streptozotocin,STZ)购自calbiochem 公司。

1.3 STZ 液配置

将STZ 300 mg 溶于30 ml 柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液(0.1 mmol/L,pH=4.3)中配制成STZ 液(浓度:10 mg/ml),现场配制,尽量避光,并在15 min 内使用。

1.4 模型的建立和分组

40 只SD 大鼠,适应性喂养1 周后按随机数字表法分为糖尿病(diabetes mellitus,DM)组和正常对照(normal control,NC)组,每组各20 只。NC 组给予普通饲料喂养5 周后禁食12 h,DM 组一次性左下腹腔注射STZ 35 mg/kg。STZ 腹腔注射后72 h 测大鼠随机血糖≥16.7 mmol/L(尾静脉血)为造模成功。DM 组共13只造模成功,另从NC 组中选取13 只进行数据统计,继续喂养4 周,每周记录其体重、血糖,喂养过程中DM 组死亡4 只。

1.5 观察指标及评价标准

1.5.1 生化指标检测 腹膜内注射3%戊巴比妥钠麻醉大鼠,从心房取血,以3500 r/min 离心15 min,离心半径为20 cm,取血清并置于无菌的电生理试管中并标记。OlympasAU2700 全自动生化分析仪检测三酰甘油(triacylglyceride,TG)、总胆固醇(total cholesterol,TC)、丙氨酸转氨酶(alanine aminotransferase,ALT)、天冬氨酸转氨酶(aspartate transaminase,AST)。

1.5.2 胰岛素抵抗指数 酶联免疫吸附法用于检测空腹胰岛素(fasting insulin,FINS)。通过稳态模式评估胰岛素抵抗指数(Homeostasismodel assessment insulin resistance index,HOMA-IR)=FINS×空腹血糖(fasting blood glucose,FPG)/22.5。胰岛 素敏感 指数(insulin sensitivity index,ISI)=1/(FINS×FPG)。

1.5.3 肝脏标本留取 大鼠麻醉取血后解剖取肝脏,天平称重,计算肝指数=肝重/体重×100%。部分放入10%福尔马林固定石蜡包埋,切片,HE 染色,光镜下观察。

1.5.4 HE 染色NAS 积分结果判断 每张切片随机选取5 个视野,进行图像的采集。NAFLD 活动的常规积分是根据NAFLD 诊断和治疗手册(修订本)中规定的组织学诊断标准进行的(表1)。非酒精性脂肪肝病活动度积分(non-alcoholic fatty liver disease srore,NAS)<3 分可排除非酒精性脂肪性肝炎(nonalcoholic steatohepatitis,NASH),NAS >4 分则可诊 断NASH,NAS 3~4 分为NASH 可能。

表1 NAS 积分(分)

1.6 统计学方法

2 结果

2.1 两组大鼠造模成功后血糖及体重的比较

造模成功6、7、8、9、10 周后,DM 组的体重低于NC 组,血糖高于NC 组,差异有统计学意义(P<0.05)(表2~3)。

表2 两组大鼠造模成功后血糖的比较(mmol/L,±s)

表3 两组大鼠造模成功后体重的比较(g,±s)

2.2 两组大鼠血脂及肝指数的比较

DM 组的TG、TC、ALT、肝指数高于NC 组,差异有统计学意义(P<0.05);两组的AST 比较,差异无统计学意义(P>0.05)(表4)。

表4 两组大鼠血脂及肝指数的比较(±s)

2.3 两组大鼠造模成功6、10 周后FINS、ISI、HOMA-IR的比较

造模成功6、10 周后,DM 组的FINS、HOMA-IR高于NC 组,ISI 低于NC 组,差异有统计学意义(P<0.05)(表5)。

表5 两组大鼠造模成功6、10 周后FIS、ISI、HOMA-IR 的比较(±s)

2.4 两组大鼠肝组织切片HE 染色结果及NAS 积分的比较

NC 组大鼠肝小叶形态规则,肝细胞排列整齐中央细胞核大而圆,细胞质均匀,无脂肪变性和炎症细胞侵袭。DM 组大鼠肝细胞水肿、脂肪变性、肝细胞分布不规则、炎性细胞浸润、局部点状、坏死。DM 大鼠的NAS 积分为(4.29±0.95)分,高于NC 组的(0.92±0.64)分且>4 分,差异有统计学意义(P<0.01)(图1,封三)。

图1 肝组织HE 染色(400×)(见内文第50页)

3 讨论

NAFLD 包括单纯性脂肪肝、非酒精性脂肪性肝炎、肝硬化和肝细胞癌。是代谢性应激性肝损害,与胰岛素抵抗(insulin resistance,IR)和遗传易感性密切相关。有报道显示全球普通成人NAFLD 患病率为6.3%~45%(中位数25.2%),包括中国在内的亚洲多数国家NAFLD 患病率处于中上水平(>25%)。T2DM与NAFLD 关系密切,世界上最常见的慢性肝病是NAFLD。研究表明DM 与肝纤维化评分间有显著相关性。近年来,T2DM 的发病率一直在上升,因此构建T2DM 大鼠NAFLD 模型对NAFLD 早期诊治的进一步研究有重要意义。

目前主要有自发性动物模型、动物遗传模型和动物实验模型方法为T2DM 建立NAFLD 模型。然而,前两种方法在科学研究中没有得到广泛应用,原因是成本高、喂养和繁殖条件高、周期长等。本研究大鼠用10%猪油、20%蔗糖等制作的高糖高脂饮食喂养5 周后,腹膜注射小剂量的STZ(35 mg/kg),以建立T2DM的NAFLD 模型。DM 组SD 大鼠的血糖水平显著提高(>16.7 mmol/L),并逐渐出现“三多”(多尿、多食、多饮)症状和体重减轻。血糖、血脂、ALT 升高,提示造模成功且出现血脂、肝功能异常。本研究结果显示,造模成功6、10 周后,DM 组大鼠的FIS、HOMA-IR 高于NC 组,ISI 低于NC 组,差异有统计学意义(P<0.05),与T2DM 合并NAFLD 的临床特征一致。胰岛素抵抗既是T2DM 的发病机制,也是NAFLD 的主要发病机制,T2DM 和NAFLD 在发病机制上存在“共同土壤”,且T2DM 是NAFLD 患者疾病进展的危险因素。国内外指南均指出需高度警惕T2DM 患者可能存在NAFLD 和NASH。并且在治疗中也提出不管患者有无T2DM,胰岛素增敏剂吡咯列酮都可以用来治疗肝活检证实的NASH 患者。

本研究建立的T2DM 合并NAFLD 模型具有胰岛素抵抗及血脂、肝功能异常。肝组织HE 染色光镜下观察可见DM 组大鼠肝细胞破坏,细胞位置不规则,有脂肪变性和炎症细胞浸润,部分见点状、局部坏死;NS 组大鼠肝叶形态规律,细胞排列整齐,细胞质均匀,无脂肪变性和炎症细胞侵袭。本研究结果还显示,DM 组的NAS 积分高于NC 组,差异有统计学意义(P<0.05),提示T2DM 大鼠已经有脂肪肝或脂肪肝炎的病理特征。

综上所述,本研究采用高糖高脂饲料喂养大鼠5 周联合小剂量STZ 腹腔内注射能成功诱导建立T2DM 合并NAFLD 大鼠模型,为T2DM 合并NAFLD进一步研究奠定基础。

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